Summary

天然物に対するモノクローナル抗体の作製

Published: April 06, 2019
doi:

Summary

準備および様々 なイムノアッセイ用天然物に対するモノクローナル抗体の評価のための詳しいプロトコルを説明します。この手順には、予防接種、細胞融合、スクリーニング、肯定的なクローンとモノクローナルハイブリドーマ準備のため間接競合 elisa 法が含まれています。MALDI TOF MS と ELISA 解析を使用して抗体の特性の仕様もあります。

Abstract

食品や天然物の生理活性成分の分析は、伝統的な中国医学や食品安全/毒物学を含む多くの分野で研究の人気のエリアになっています。古典的な分析の技術の多くは高価な機器や専門知識を必要とします。特に、酵素抗体法 (Elisa) 食品や天然物の分析のための新たな方法となっています。このメソッドは、ターゲット コンポーネントの抗体検出に基づいています。しかし、天然の生理活性成分の多くが小さい (< 1,000 Da) と免疫反応を誘発しない、それらに対するモノクローナル抗体 (Mab) を作成するは困難です。このプロトコルでは、複数のサンプルの化合物の迅速分析に関連する間接競争 (ic) ELISA を作成に必要なものだけでなく、標的分子に対する抗体を生成するために必要な手順の詳細な説明を提供します。手順では、(すなわち、ハプテン キャリア共役) 人工抗原の合成、免疫、細胞融合、モノクローナルハイブリドーマ準備、モノクローナル抗体のキャラクタリゼーションと mAb の elisa 法を用いたアプリケーションについて説明します。ハプテン キャリア共役はナトリウムによって合成されたメソッドを過ヨウ素酸し、MALDI TOF MS によって評価されます。予防接種後脾細胞が最も高い抗体価と免疫マウスから分離したし、ヒポキサンチン アミノプテリン チミジン (帽子) – 敏感なマウス骨髄腫細胞ライン Sp2/0 – Ag14 と融合、ポリエチレング リコール (PEG) を使用しての手法します。ターゲット抗原に対する反応性抗体産生ハイブリドーマの特異性と交差反応性の icELISA で上映されました。さらに、限界希釈法は、モノクローナル ハイブリドーマの準備に適用されました。最終的な Mab icELISA によってさらに特徴づけられる、天然の例ハプテン (ナリンギン (NAR)) の迅速で簡便な検出のための elisa 法を用いたアプリケーションのために用いられる。

Introduction

モノクローナル抗体 (Mab)、として知られているモノラル特異的抗体、単一 b リンパ球クローンから生成され、すべてが同じエピトープ1にバインドすると 1 価の抗体で構成されています。近年、多く薬用植物由来の天然物は、様々 な病気の2の治療に使用されています。確かに、もともと天然物から派生した多くの小さな分子の化合物が癌2,3paciltaxel (タキソール) ・ マラリアのアルテミシニンなどの最初の行薬として適用されます。天然物の研究は主に途方もない開発と高速液体クロマトグラフィー (HPLC) や質量分析法 (MS) など、従来の解析手法の最適化のための急速な進歩をしました。ただし、まだ複雑な前処理プロトコルや時間、労働/専門知識、および必要な楽器4に関して関連するコストなど、これらの方法に関連付けられているいくつかの制限があります。

最近では、モノクローナル抗体を用いた酵素抗体法 (Elisa) は、定性的・定量的分析食品や天然物に適用されています。実際には、このメソッドの生体試料分析と臨床検査の両方に適用されているし、も関連付けられているその他の解析5、面倒な前処理手順を回避しながら、正確、敏感、かつ高効率に示されています。 6

モノクローナル抗体を用いた Elisa を使用して、複雑な天然物を研究する、モノクローナル抗体の調製は、主な手順の 1 つです。残念ながら、Mab は小さな生物活性成分物質6,7,8,9,1011,12 のこれらのタイプの存在に固有 ,13,14,15蛋白質の抗原と比較して限られています。この問題を回避するためには、具体的には小さな化合物に対して抗体を生成するプロトコルを開発しました。ここで提示されたプロトコルには、人工抗原の合成には、マウス免疫には、細胞融合には、間接競合 ELISA にはモノクローナルハイブリドーマ準備が含まれます。

特に、我々 の研究グループは中国の伝統薬から小さな生理活性物質に対するモノクローナル抗体の形成を勉強と長年彼らのアプリケーションを開発されています。当社の継続的研究では、baicalin16、puerarin17グリチルリチン酸18、ペオニフロリン19、ジンセノ サイド Re20、ジンセノ サイド Rh121、および他の多くの小さい分子に対して抗体を開発しました。これらの Mab に基づいて私達の ELISA のプロトコルは、その他の生理活性物質との相互作用と同様に、これらの小さな分子の薬物動態を評価する多くの研究で使用されています。さらに、これらのモノクローナル抗体を使用して、構築した immunoaffinity クロマトグラフィー法黒淵を含む構造の類似物の分離。最近では、この化合物、敷地内に急速な検出のために使用されました私たちの抗 puerarin モノクローナル抗体を用いた側方流動免疫測定法をご用意しました。モノクローナル抗体アッセイが生物学と伝統的な中国薬で使用される特にそれら天然由来製品化合物の質を研究するための不可欠なツールであることが示唆されました。

Protocol

本研究で動物の手続きのすべては、中国医学 (承認番号 2016BZYYL00109) の北京大学の倫理審査委員会によって承認されています。 注: 女性 BALB/c マウス (8 週齢) はハプテン キャリア蛋白抱合体で免疫しました。単独で、使用する小分子 (< 1,000 Da) 免疫反応を引き出すことはできません。しかし、抗原の合成高分子キャリアに小さな分子を活用します。この文脈では、小さな分…

Representative Results

モノクローナル ハイブリドーマの生成 Hapten-キャリアの複合体分子の重量は、MALDI TOF 質量分析によって確認されました。BSA と NAR の分子量は知られている、BSA を用いた共役分子の数を計算する可能性があります。図 1には、代表的なスペクトル NAR BSA22 m…

Discussion

ここでは、自然製品由来の低分子抗体の巧妙な生産のためのプロトコルを提案する.重要な手順が記載されているし、我々 は例小分子として NAR を使用してこのプロトコルの有用性を示しています。例スペクトル、反応性の解析と icELISA の結果は、代表実験と、このプロトコルを使用して取得コントロール データを表示します。ハイブリドーマの例の画像は、どのような研究者を探していな?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、中国の国家自然科学基金 (許可番号 81573573、81473338、および 81503344) および古典的な処方基本的な研究チームが北京大学で中国医学のサポートだった。

Materials

800 mesh (40 μm nylon) filter  FALCON 352340
24 well culture plate NUNC 119567
25 cm2 Flask Labserv 310109016
3,3’,5,5’-Tetramethylbenzidine(TMB) Sigma Aldrich 860336 1G
75 cm2 Flask Corning 430720
96 well culture plate NUNC 117246
bovine serum albumin AMRESCO 332
cell strainer FALCON 352340
centrifuge tube 15 mL Corning 430645
centrifuge tube 50 mL Corning 430828
cryotubes, 1 mL  Sigma Aldrich V7384-1CS
cultivator DRP-9082  Samsung
dialysis membrane (10kDa) Heng Hui 45-10000D
dimethylsulfoxide Sinopharm Chemical DH105-10
electronic balance  BS124-S  Sartorius
ELISA plates, 96 well NUNC 655101
ethanol, 96% Sinopharm Chemical
Fetal bovine serum Gibco 16000-044
fetal calf serum Invitrogen 10270106
Freund´s adjuvant, complete Sigma Aldrich SLBM2183V
Freund´s adjuvant, incomplete Sigma Aldrich SLBL0210V
Gelatin AMRESCO 9764-500g
Gradient cooler container Nalgene 5100-0001
HAT media supplement Sigma Aldrich H0262-10VL
HRP-conjugated goat-anti-mouse IgG antibody applygen C1308
HT media supplement Sigma Aldrich H0137-10VL
Inverted Microscope IX73 Olympus 
keyhole limpet hemocyanin Sigma Aldrich H8283
MALDI-TOF-MS  Axima-CFR  plus   Axima 
Microplate Reader BioTex ELX-800 
mouse Vital River  BALB/c
ovalbumin Beijing BIODEE 5008-25g
PEG Sigma Aldrich RNBC6325
Penicillin&Streptomycin solution Hyclone SV30010
Pipette 10 mL COSTAR 4488
Pipette 25 mL FALCON 357525
RPMI 1640 Corning 10-040-CVR
skim milk applygen P1622
sodium periodate Sinopharm Chemical BW-G0008
Sulfo-GMBS Perbio Science Germany 22324
TipOne Tips 1,000 µL Starlab S1111-2021

Referências

  1. Kohler, G., Milstein, C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature. 256, 495-497 (1975).
  2. De Smet, P. A. Herbal remedies. The New England journal of medicine. 347, 2046-2056 (2002).
  3. Rowinsky, E. K., Donehower, R. C. The clinical pharmacology of paclitaxel (Taxol). Seminars in oncology. 20, 16-25 (1993).
  4. Yan, X., Zhao, Y., Zhang, Y., Qu, H. Monoclonal Antibodies and Immunoassay for Medical Plant-Derived Natural Products: A Review. Molecules. 22, (2017).
  5. Loungratana, P., Tanaka, H., Shoyama, Y. Production of monoclonal antibody against ginkgolic acids in Ginkgo biloba Linn. The American journal of Chinese medicine. 32, 33-48 (2004).
  6. Fujii, S., Morinaga, O., Uto, T., Nomura, S., Shoyama, Y. Development of a monoclonal antibody-based immunochemical assay for liquiritin and its application to the quality control of licorice products. Journal of agricultural and food chemistry. 62, 3377-3383 (2014).
  7. Ishiyama, M., Shoyama, Y., Murakami, H., Shinohara, H. Production of monoclonal antibodies and development of an ELISA for solamargine. Cytotechnology. 18, 153-158 (1995).
  8. Xuan, L., Tanaka, H., Xu, Y., Shoyama, Y. Preparation of monoclonal antibody against crocin and its characterization. Cytotechnology. 29, 65-70 (1999).
  9. Leu, J. G., Chen, B. X., Schiff, P. B., Erlanger, B. F. Characterization of polyclonal and monoclonal anti-taxol antibodies and measurement of taxol in serum. Cancer research. 53, 1388-1391 (1993).
  10. Zhu, S., Shimokawa, S., Shoyama, Y., Tanaka, H. A novel analytical ELISA-based methodology for pharmacologically active saikosaponins. Fitoterapia. 77, 100-108 (2005).
  11. Phrompittayarat, W., et al. Determination of pseudojujubogenin glycosides from Brahmi based on immunoassay using a monoclonal antibody against bacopaside I. Phytochemical analysis. 18, 411-418 (2007).
  12. Limsuwanchote, S., et al. Preparation of a monoclonal antibody against notoginsenoside R1, a distinctive saponin from Panax notoginseng, and its application to indirect competitive ELISA. Planta medica. 80, 337-342 (2014).
  13. Tanaka, H., et al. Isolation of ginsenoside Rb1 from Kalopanax pictus by eastern blotting using anti-ginsenoside Rb1 monoclonal antibody. Phytotherapy research. 19, 255-258 (2005).
  14. Morinaga, O., Nakajima, S., Tanaka, H., Shoyama, Y. Production of monoclonal antibodies against a major purgative component, sennoside B, their characterization and use in ELISA. The Analyst. 126, 1372-1376 (2001).
  15. Sakamoto, S., et al. Simultaneous determination of soy isoflavone glycosides, daidzin and genistin by monoclonal antibody-based highly sensitive indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay. Food chemistry. 169, 127-133 (2015).
  16. Shan, W., et al. Development of a Fluorescence-Linked Immunosorbent Assay for Baicalin. Journal of fluorescence. 25, 1371-1376 (2015).
  17. Qu, H., et al. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay based on anti-puerarin monoclonal antibody and its applications. Journal of chromatography B, Analytical technologies in the biomedical and life sciences. 953-954, 120-125 (2014).
  18. Zhang, Y., et al. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay and immunoaffinity chromatography for glycyrrhizic acid using an anti-glycyrrhizic acid monoclonal antibody. Journal of separation science. 38, 2363-2370 (2015).
  19. Zhao, Y., et al. Development of Fluorescence-Linked Immunosorbent Assay for Paeoniflorin. Journal of fluorescence. 25, 885-890 (2015).
  20. Qu, H., et al. Establishment of an enzyme-linked immunosorbent assay and application on determination of ginsenoside Re in human saliva. Planta medica. 80, 1143-1150 (2014).
  21. Qu, H., et al. Development of ELISA for detection of Rh1 and Rg2 and potential method of immunoaffinity chromatography for separation of epimers. Journal of chromatography B, Analytical technologies in the biomedical and life sciences. 985, 197-205 (2015).
  22. Qu, H., et al. Novel immunoassay and rapid immunoaffinity chromatography method for the detection and selective extraction of naringin in Citrus aurantium. Journal of separation science. 39, 1389-1398 (2016).
  23. Qu, H., et al. Rapid lateral-flow immunoassay for the quantum dot-based detection of puerarin. Biosensors & bioelectronics. 81, 358-362 (2016).

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Y., Cao, P., Lu, F., Yan, X., Jiang, B., Cheng, J., Qu, H. Generation of Monoclonal Antibodies Against Natural Products. J. Vis. Exp. (146), e57116, doi:10.3791/57116 (2019).

View Video