Summary

小鼠骨髓基质细胞与骨破骨祖的分离、培养及分化

Published: January 06, 2018
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Summary

本文介绍了从小鼠长骨分离分化骨髓基质细胞和造血干细胞的方法。两种不同的协议, 产生不同的细胞群体, 适合扩展和分化成成骨细胞, 脂肪和破骨。

Abstract

骨髓基质细胞是一种细胞群, 通常用于骨髓间充质干细胞的表达,体外.他们居住在骨髓腔内的造血干细胞 (干细胞), 它可以产生红细胞, 免疫祖细胞和破骨。因此, 从骨髓中提取细胞的数量会导致不同细胞群的混杂, 从而在实验设计和混淆数据解释方面提出挑战。为了获得更多或较不均匀的骨髓基质干细胞和干细胞, 实验室开发了几种分离和培养技术。在这里, 我们提出两种方法分离骨髓基质干细胞和干细胞从小鼠长骨: 一种方法, 产生混合的人口骨髓基质干细胞和干细胞和一种方法, 试图分离的两个细胞的人口为基础的坚持。这两种方法都提供适合于成骨和脂分化实验的细胞以及功能性的化验。

Introduction

小鼠骨髓间充质干细胞在二十世纪八十年代早期的1中被发现, 通常被作为一个体外细胞模型。事实上, 从长骨的骨髓腔中冲出的塑料黏附细胞的培养, 在许多研究中保持着分化成成骨、破骨、软骨或脂肪的能力2,3,4,5. 然而, 骨髓是一种独特的组织, 由许多不同的细胞组成, 包括但不限于骨髓基质干细胞、干细胞、内皮细胞和免疫干细胞。因此, 分离和培养技术可以产生不同均匀性的细胞群。使用这种技术来测试细胞的分化潜能可能是有挑战性的。例如, 当比较不同基因型的小鼠的细胞时, 从混合细胞的数量开始限制对数据的解释。相反地, 获得骨髓基质干细胞和干细胞的同源种群在技术上是困难的, 可能不代表体模型。

在我们的实验室里, 我们主要关注骨髓基质干细胞的利用, 因为它们有可能被分化成成骨细胞、破骨和脂肪。在这里, 我们提出了骨髓基质干细胞和干细胞分离和培养技术, 用于评估 osteoblastogenesis 或成的体外, 以及干细胞的培养, 以分化为破骨细胞。一种方法是利用混合的骨髓细胞 (bmc), 其中含有骨髓基质干细胞和干细胞直接适合成, osteoblastogenesis 和破 (称为总 bmc)。这种方法更接近于在骨髓微环境的细胞中发现的异质性的活体。另一种方法是将黏附在换药细胞中, 试图培养 “更纯净” 的骨髓基质干细胞和干细胞 (称为黏附骨髓基质干细胞) 的种群。后来的方法允许细胞培养实验开始与更准确的数量的骨髓基质干细胞或干细胞, 并降低潜在的复杂的间接影响的其他细胞的人口留在文化中。这两种方法以前都已发布, 用于解决不同的研究问题6,7,8,9

Protocol

所有实验程序均由缅因州医学中心研究所的机构动物保育和使用委员会批准。 1. 收集管制备 用10% 胎牛血清和1% 的青霉素/链霉素补充最低必需培养基α (骨髓) 来制作培养基。 在1.5 毫升离心管中放置100µL 骨髓培养基。3骨通常适合在一个单一的管, 所以准备相应。 削减200µL 吸管的两端足够的技巧, 使他们适合在离心管。插入管内的提示, 确保盖子可以关?…

Representative Results

细胞培养概述这两种培养技术允许对由骨髓基质细胞和干细胞 (总 bmc,图 1A) 或由干细胞 (黏附的骨髓基质细胞,图 1B) 分裂的骨髓基质干细胞的混合种群的 bmc 进行鉴别。48小时在细胞从骨髓被隔绝了并且被镀 (图 1C) 之后, 他们迅速地附有在塑料文化板材的底部并且倾向于形成单层。一旦细胞?…

Discussion

本文介绍了两种骨髓基质细胞的培养方法及其优点和局限性。从骨髓中分离出来的细胞是一个相对轻松的过程。然而, 由于骨髓腔的细胞环境的多样性, 获得细胞间充质干细胞或破祖先的代表可能具有挑战性。

培养完整的骨髓的内容提供了一个密切的表示,在体内微环境。然而, 分离细胞从不同的小组小鼠 (基因型, 治疗, 年龄,) 可能导致一个非常不同数量的骨髓?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了国家卫生研究院 (R01 AR061164-01A1) 的支持。

Materials

200μL pipet tips  Rainin 17014401
1.5mL centrifuge tubes USA Scientific 1615-5500
15mL conical tube  VWR 89039-668
50mL conical tube VWR 89039-660
Phosphate Buffered Saline (PBS)  Sigma-Aldrich 21-040-CM
Ethanol Fisher Science 04-355-451
Dissection tools
70μm filters BD Falcon 352350
0.25% trypsin Gibco 25200
Kimwipe VWR 82003-820
Paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Science 15710
Alkaline Phosphatase kit Sigma-Aldrich 86R
Silver Nitrate Sigma-Aldrich S6506
Sodium Thiosulfate Sigma-Aldrich S7026
Oil Red O Sigma-Aldrich O0625
Isopropanol Sigma-Aldrich 190764
10% Neutral Buffered Formalin Sigma-Aldrich F5554-4L
Whatman filter Grade 1 Sigma-Aldrich Z274852
Tartrate-Resistant Acid Phosphatase kit Sigma-Aldrich 387A
Glutaraldehyde Electron 16220
MEMα Gibco 12571
Fetal Bovine Serum VWR 97068-085
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122
β-glycerol phosphate Sigma-Aldrich G9891
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A4544
DMEM High Glucose  Sigma-Aldrich D5796
Rosiglitazone Cayman Chemical 717410
Insulin Sigma-Aldrich I6634
IBMX Sigma-Aldrich I5879
Dexamethasone Sigma-Aldrich D4902
RANKL Peprotech 310-01
mCSF Peprotech 315-02
Axio Observer inverter microscope Zeiss

Referências

  1. Friedenstein, A. J., Latzinik, N. W., Grosheva, A. G., Gorskaya, U. F. Marrow microenvironment transfer by heterotopic transplantation of freshly isolated and cultured cells in porous sponges. Exp Hematol. 10 (2), 217-227 (1982).
  2. Chen, T. L. Inhibition of growth and differentiation of osteoprogenitors in mouse bone marrow stromal cell cultures by increased donor age and glucocorticoid treatment. Bone. 35 (1), 83-95 (2004).
  3. Kokabu, S., et al. BMP3 suppresses osteoblast differentiation of bone marrow stromal cells via interaction with Acvr2b. Mol Endocrinol. 26 (1), 87-94 (2012).
  4. Ghali, O., et al. Dexamethasone in osteogenic medium strongly induces adipocyte differentiation of mouse bone marrow stromal cells and increases osteoblast differentiation. BMC Cell Biol. 16, 9 (2015).
  5. Kretlow, J. D., et al. Donor age and cell passage affects differentiation potential of murine bone marrow-derived stem cells. BMC Cell Biol. 9, 60 (2008).
  6. DeMambro, V. E., et al. Igfbp2 Deletion in Ovariectomized Mice Enhances Energy Expenditure but Accelerates Bone Loss. Endocrinology. 156 (11), 4129-4140 (2015).
  7. Maridas, D. E., et al. IGFBP-4 regulates adult skeletal growth in a sex-specific manner. J Endocrinol. 233 (1), 131-144 (2017).
  8. Nadri, S., et al. An efficient method for isolation of murine bone marrow mesenchymal stem cells. Int J Dev Biol. 51 (8), 723-729 (2007).
  9. Sreejit, P., Dilip, K. B., Verma, R. S. Generation of mesenchymal stem cell lines from murine bone marrow. Cell Tissue Res. 350 (1), 55-68 (2012).
  10. Abdallah, B. M., et al. CD34 defines an osteoprogenitor cell population in mouse bone marrow stromal cells. Stem Cell Res. 15 (3), 449-458 (2015).
  11. Akiyama, K., et al. Characterization of bone marrow derived mesenchymal stem cells in suspension. Stem Cell Res Ther. 3 (5), 40 (2012).
  12. Lin, C. S., Ning, H., Lin, G., Lue, T. F. Is CD34 truly a negative marker for mesenchymal stromal cells?. Cytotherapy. 14 (10), 1159-1163 (2012).

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Citar este artigo
Maridas, D. E., Rendina-Ruedy, E., Le, P. T., Rosen, C. J. Isolation, Culture, and Differentiation of Bone Marrow Stromal Cells and Osteoclast Progenitors from Mice. J. Vis. Exp. (131), e56750, doi:10.3791/56750 (2018).

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