Summary

Tecniche chirurgiche per la disposizione del catetere e 5/6 di nefrectomia nei modelli murini di dialisi peritoneale

Published: July 19, 2018
doi:

Summary

Questo articolo viene illustrato il metodo per l’inserimento chirurgico in topi di un catetere intraperitoneale collegata a una porta di accesso che è posizionata nella parte posteriore dell’animale. Inoltre, spiega la procedura per 5/6 di nefrectomia assomigliare lo stato uremico di pazienti del Palladio.

Abstract

La dialisi peritoneale (PD) è una terapia di sostituzione renale coerenza sulla gestione e recupero posteriore di un fluido iperosmotico nella cavità peritoneale per drenare acqua e tossici dei metaboliti che funzionalmente insufficienti reni non sono in grado di eliminare. Purtroppo, questa procedura si deteriora il peritoneo. Danno tissutale innesca l’inizio di infiammazione per guarire la ferita. Se la lesione persiste e l’infiammazione diventa cronica, può portare alla fibrosi, che è un evento comune in molte malattie. Nel PD, infiammazione cronica e fibrosi, insieme ad altri processi specifici relazionati a queste ultime, provocare un deterioramento capacità di ultrafiltrazione, che significa il fallimento e la conseguente cessazione della tecnica. Lavorare con campioni umani fornisce informazioni su questo deterioramento ma presenta limiti tecnici ed etici per ottenere biopsie. Modelli animali sono essenziali per studiare questo deterioramento in quanto essi superare queste carenze.

Un modello di infusione cronica del mouse è stato sviluppato nel 2008, che beneficia della vasta gamma di topi geneticamente modificati, aprendo la possibilità di studiare i meccanismi coinvolti. Questo modello si avvale di un dispositivo su misura progettato per topi, che consiste di un catetere collegato a una porta di accesso che viene inserita per via sottocutanea nella parte posteriore dell’animale. Questa procedura evita il continua puntura del peritoneum durante gli esperimenti a lungo termine, riducendo le infezioni e l’infiammazione a causa di iniezioni. Grazie a questo modello, il danno peritoneale indotto tramite l’esposizione cronica di fluido del PD è stato caratterizzato e modulato. Questa tecnica permette l’infusione di grandi volumi di fluidi e poteva essere utilizzata per lo studio di altre malattie in cui è necessario l’inoculazione di farmaci o altre sostanze per lunghi periodi di tempo.

Questo articolo viene illustrato il metodo per l’inserimento chirurgico del catetere in topi. Inoltre, spiega la procedura per 5/6 di nefrectomia simulare lo stato di insufficienza renale presente nei pazienti del Palladio.

Introduction

Funzione del rene e malattie renali

I reni sono organi essenziali coinvolti nell’omeostasi, filtrazione del sangue e la produzione dell’ormone. Ci sono diverse condizioni che portano ad insufficienza renale e alla successiva comparsa dell’uremia, che è stato definito come il gruppo di sintomi sistemici dovuti all’accumulo di rifiuti prodotti nel sangue conservato a causa di disordini del rene funzione1. Inoltre, poiché la capacità omeostatica viene influenzata anche quando c’è un’insufficienza renale, ipertensione a causa di sovraccarico di volume può verificarsi, che è anche pericoloso in quanto può portare a insufficienza cardiaca1. Quando la capacità funzionale dei reni è meno di 10% – 15%, il paziente deve sottoporsi ad una delle seguenti opzioni terapeutiche: emodialisi, dialisi peritoneale (PD) o trapianto renale.

PD è un’opzione interessante che permette ai pazienti di continuare il trattamento dalla comodità della propria casa o praticamente ovunque, evitando così la necessità per l’ospedale frequenti visite e soggiorni. La tecnica di PD Elimina piccole molecole tossiche e l’acqua in eccesso generato dal corpo2 attraverso l’instillazione di un liquido osmotico (dialisi peritoneale liquido, PDF) nella cavità peritoneale. Questo instillazione genera il gradiente osmotico necessario per lo scambio di soluti e acqua fra il capillare peritoneale e PDF, un processo noto come ultrafiltrazione (UF).

Peritoneale lesione indotta da dialisi peritoneale

La cavità peritoneale è coperto da una membrana (PM) composta da un monostrato di cellule mesoteliali che riposa su una matrice, che ospita anche alcuni vasi sanguigni, fibroblasti, macrofagi e altre popolazioni cellulari. Purtroppo, la membrana peritoneale soffre sempre alcune alterazioni durante il trattamento di PD, quali apoptosi e perdita di cellule mesoteliali, transizione mesenchimale di mesothelial (MMT) e cellule endoteliali (fine-MT), reclutamento di cellule infiammatorie e fibrociti, alterazioni vascolari, angiogenesi, linfoangiogenesi e/o fibrosi3,4,5,6,7,8,9. Queste alterazioni sono responsabili dello sviluppo di un UF capacità guasto10, che preclude il proseguimento della terapia, che richiedono che il paziente deve ricevere un trattamento alternativo per sopravvivere (emodialisi o trapianto renale) . Pertanto, per questi pazienti, è essenziale per ritardare o controllare lo sviluppo di queste alterazioni peritoneale.

È stato ipotizzato che uremia da solo può causare infiammazione11, ma il fattore più importante locale è bioincompatibility PDF. Maggior parte dei file PDF utilizzare il glucosio come l’agente osmotico, che provoca l’infiammazione. A causa di tempi di conservazione PDF e sterilizzazione, glucosio subisce un processo di degradazione, e appaiono nuovi prodotti da questa reazione, generando più infiammazione, MMT e apoptosi12,13. Inoltre, c’è anche la possibilità di danni meccanici a causa del metodo di instillazione. Tutti questi fattori, che agiscono continuamente, possono generare uno stato infiammatorio persistente e ricorrente, che conducono all’infiammazione cronica, che spinge a deterioramento della membrana e, conclusivamente, UF fallimento. Come potrebbe essere ridotto o evitato questo danno è ancora una questione di studio.

Analizzando lo sviluppo delle lesioni: dai campioni umani ai modelli animali

Lavorare con biopsie umane è un fattore limitante per la difficoltà di ottenere campioni di tessuto. Questi esempi possono essere ottenuti soltanto da interventi chirurgici eseguiti a causa di malfunzionamento del catetere o trapianto, di solito dopo anni di trattamento di PD. Questo approccio è utile per l’analisi delle mutazioni patologiche ha sofferto da una membrana peritoneale esposta in PDF, ma non è sufficiente per studiare lo sviluppo del processo. Un’altra possibilità è quella di analizzare cellule drenate da un effluente di dialisi, ma questo ancora non riesce a fornire uno scenario completo. L’Unione di entrambe le tecniche è possibile solo con modelli animali. La struttura peritoneale è simile tra i mammiferi, e quindi ci sono modelli con diverse specie animali. Ci sono pochi studi basati sulle pecore (Rodela et al. 14 e Barrell et al. 15) e coniglio16,17 modelli; Tuttavia, gli animali più piccoli sono preferibili in quanto essi sono più facili da casa e mantenere e sono anche più economici. L’uso di ratti18,19,20,21,22,23,24 offre un tempo più breve di trattamento necessario per osservare alterazioni morfo-funzionali. Ha rappresentato un modello molto utile per esplorare diverse questioni quali l’effetto delle droghe anti-fibrotici come ad esempio BMP-7 (osso morfogenetico protein-7)25 e RAS (sistema renina-angiotensina) targeting26,27 , 28.

Tuttavia, il modello murino è emerso come un modello ideale con molti vantaggi rispetto ad altri. Il vantaggio più interessante è la possibilità di utilizzare geneticamente modificati topi per studiare le basi molecolari e cellulari di danno peritoneale. Infatti, i topi sono spesso impiegati per l’analisi di numerose malattie, come ci sono molti diversi ceppi con vari ambiti di provenienza genetici ben noti. Altri vantaggi includono lo spazio ridotto necessario per alloggiamento, ridotto costo di esperimenti (a causa di dimensioni ridotte degli animali), la maneggevolezza, la disponibilità dei reagenti e la crescente quantità di informazioni disponibili su diversi ceppi di topi dal momento che sono stati gli animali più comunemente usati nella ricerca.

Un modello basato su topi che impiegano un dispositivo impiantato è stato il modello più recente affermato per PD29,30ed è stato indicato per imitare peritoneale deterioramento ha sofferto dai pazienti del Palladio a causa dell’esposizione ai file PDF. Questo modello ha collaborato per comprendere che i processi patologici implicati31,32,33. Inoltre, è stato utilizzato per convalidare potenziali vari trattamenti per il miglioramento di questo deterioramento utilizzando modulatori immuni e farmaci anti-infiammatori e altri anti-fibrotico e agenti anti-angiogenici, quali gli inibitori di COX-2 (ciclo-ossigenasi-2) 34, di agonisti PPAR-γ (peroxisome proliferator-attivato del ricevitore-γ)35, Tamoxifen36, Paricalcitol (un attivatore di recettore della vitamina D che modula la reazione immunitaria)37, rapamicina38 e Nebivolol 39.

Sviluppo del modello di Mouse con un catetere impiantato

L’obiettivo di questo modello è simile, per quanto possibile, la tecnica utilizzata nei pazienti affetti da PD, permettendo di eseguire trattamenti estesi di PD nei piccoli animali. Finora, sono state testate tre tecniche per instillazione di liquido di dialisi nel peritoneo nei topi. Quello primo, cieco puntura della parte anteriore della parete addominale, è controverso a causa dei rischi più che possono incorrere, quali danni peritoneali, sanguinamento e, come è puntura ciecamente svolte, viscerale. La seconda tecnica è il cosiddetto “open permanente system”, in cui il dispositivo per l’iniezione di fluido è posizionato all’esterno del corpo. Questa procedura è più simile a quello effettuato in esseri umani. Tuttavia, esso non consente lo sviluppo di esperimenti a lungo termine, come si possono aumentare le probabilità di infezione e generalmente richiede l’uso di anestesia per instillare PDF, che possono interferire con i risultati. La terza tecnica è il “sistema chiuso”. Con questo approccio, l’intero dispositivo utilizzato per instillazione fluido si trova all’interno del corpo dell’animale. Liquido viene iniettato con un ago attraverso una porta di accesso, che viene inserito per via sottocutanea. Questa procedura riduce il rischio di infezione peritoneale e sanguinamento, nonché la necessità di anestesia.

Per studiare l’effetto dell’uremia in PD, è stato anche un recente modello murino stituito40 sulla base del modello di infusione di PDF con catetere. Questo modello porta a una nuova tecnica per eseguire una nefrectomia nei topi, riducendo così la funzione renale. Nel presente articolo, è stata sviluppata una modifica del protocollo impiegato da Ferrantelli et nel 201540 . Questo nuovo protocollo permette l’impianto di catetere durante la nefrectomia, riduce la lunghezza della ferita inflitta durante la chirurgia e facilita l’accesso ai reni.

Protocol

Tutti i metodi descritti qui sono stati approvati dal comitato di uso di biologia molecolare centro Severo Ochoa (Madrid, Spagna) e istituzionali Animal Care. Nota: Sono stati utilizzati topi femminili C57BL/6J 12 a 14 settimane di età e peso di circa 20 grammi all’inizio dello studio. Tutti gli animali sono stati alloggiati in condizioni standard e ci hanno dato acqua e cibo ad libitum. Condizioni di salute sono state controllate tutti i giorni. Il materiale necessario, come guanti…

Representative Results

La figura 1 Mostra tutti i materiali necessari per seguire le procedure descritte nella sezione protocollo. In questo esempio, topi sottoposti o non a nefrectomia (8 animali per gruppo) (Figura 2) sono stati esposti durante 40 giorni (due iniezioni al giorno, in attesa di almeno 2 ore tra i due) ad una miscela di due diversi file PDF, comunemente usati nella pratica clinica: Extraneal (PDF basati su icodestrina) e Dianeal (PDF ba…

Discussion

I primi dati pubblicati analizzando le alterazioni PD utilizzando una tecnica di “chiudere il sistema” è stati effettuati nel 200929 . Questo sistema vicino significa che l’intero dispositivo è situato all’interno del corpo e liquido viene iniettato con un ago attraverso una porta di accesso. Il problema tecnico più importante nei modelli animali a lungo termine dell’infusione di fluidi attraverso un catetere è l’avvenimento dell’ostruzione. Le opzioni disponibili sono per eseguire omentectomi…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Autori ringraziano Ferrantelli E. e G. Liappas per il loro supporto impostazione del protocollo di 5/6 di nefrectomia, R. Sánchez-Díaz e P. Martín per l’assistenza con valutazioni di azoto ureico e Hevia E. e F. Núñez per l’assistenza con cura di topi. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni SAF2016-80648R dal “Ministerio de Economía y Competitividad” / Fondo Europeo de Desarrollo Regional (MINECO/FEDER) di Manuel López-Cabrera e PI 15/00598 da Fondo de Investigaciones Sanitarias (FIS)-fondi FEDER, a Abelardo Aguilera.

Materials

Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes Access technologies MMP-4S-061108A
Posi-Grip Huber point needles 25 ga. X 1/2´´  Access technologies PG25-500
High Temperature Cautery Kit Bovie 18010-00
Forane abbVie 880393.4 HO
non absorbable suture 6/0 Laboratorio Agaró 6121
Scissors  Fine Science Tools 14079-10
forceps Fine Science Tools 11002-12
clamp Fine Science Tools 13002-10
Buprenorphine 0,3 mg/ml pharmaceutical product
cotton swabs pharmaceutical product
Dalsy (Ibuprofen) 20mg/mL oral suspension AbbVie S.R.L.  pharmaceutical product

Referências

  1. Meyer, T. W., Hostetter, T. H. Uremia. New England Journal of Medicine. 357 (13), 1316-1325 (2007).
  2. Pyper, R. A. Peritoneal Dialysis. Ulster Medical Journal. 17 (2), 179-187 (1948).
  3. Chaimovitz, C. Peritoneal dialysis. Kidney International. 45 (4), 1226-1240 (1994).
  4. Aguilera, A., Yanez-Mo, M., Selgas, R., Sanchez-Madrid, F., Lopez-Cabrera, M. Epithelial to mesenchymal transition as a triggering factor of peritoneal membrane fibrosis and angiogenesis in peritoneal dialysis patients. Current Opinion in Investigational Drugs. 6 (3), 262-268 (2005).
  5. González-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. , (2011).
  6. Mateijsen, M. A., et al. Vascular and interstitial changes in the peritoneum of CAPD patients with peritoneal sclerosis. Peritoneal Dialysis International. 19 (6), 517-525 (1999).
  7. Williams, J. D., et al. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. Journal of the American Society of Nephrology. 13 (2), 470-479 (2002).
  8. Dobbie, J. W. Pathogenesis of peritoneal fibrosing syndromes (sclerosing peritonitis) in peritoneal dialysis. Peritoneal Dialysis International. 12 (1), 14-27 (1992).
  9. Loureiro, J., et al. Blocking TGF-beta1 protects the peritoneal membrane from dialysate-induced damage. Journal of the American Society of Nephrology. 22 (9), 1682-1695 (2011).
  10. Aroeira, L., et al. Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (7), 2004-2013 (2007).
  11. Zhang, J., et al. Regulatory T cells/T-helper cell 17 functional imbalance in uraemic patients on maintenance haemodialysis: A pivotal link between microinflammation and adverse cardiovascular events. Nephrology. 15 (1), 33-41 (2010).
  12. Welten, A. G., et al. Single exposure of mesothelial cells to glucose degradation products (GDPs) yields early advanced glycation end-products (AGEs) and a proinflammatory response. Peritoneal Dialysis International. 23 (3), 213-221 (2003).
  13. De Vriese, A. S., Tilton, R. G., Mortier, S., Lameire, N. H. Myofibroblast transdifferentiation of mesothelial cells is mediated by RAGE and contributes to peritoneal fibrosis in uraemia. Nephrology Dialysis Transplantation. 21 (9), 2549-2555 (2006).
  14. Rodela, H., Yuan, Z., Hay, J., Oreopoulos, D., Johnston, M. Reduced lymphatic drainage of dialysate from the peritoneal cavity during acute peritonitis in sheep. Peritoneal Dialysis International. 16 (2), 163-171 (1996).
  15. Barrell, G. K., McFarlane, R. G., Slow, S., Vasudevamurthy, M. K., McGregor, D. O. CAPD in sheep following bilateral nephrectomy. Peritoneal Dialysis International. 26 (5), (2006).
  16. Schambye, H. T., et al. Bicarbonate- versus lactate-based CAPD fluids: a biocompatibility study in rabbits. Peritoneal Dialysis International. 12 (3), 281-286 (1992).
  17. Garosi, G., Gaggiotti, E., Monaci, G., Brardi, S., Di Paolo, N. Biocompatibility of a peritoneal dialysis solution with amino acids: histological evaluation in the rabbit. Peritoneal Dialysis International. 18 (6), 610-619 (1998).
  18. Elema, J. D., Hardonk, M. J., Koudstaal, J., Arends, A. Acute enzyme histochemical changes in the zona glomerulosa of the rat adrenal cortex. I. The effect of peritoneal dialysis with a glucose 5 percent solution. Acta endocrinologica (Oslo). 59 (3), 508-518 (1968).
  19. Liard, J. Influence of sodium withdrawal by a diuretic agent or peritoneal dialysis on arterial pressure in one-kidney Goldblatt hypertension in the rat. Pflügers Archives. 344, 109-118 (1973).
  20. Beelen, R. H., Hekking, L. H., Zareie, M., vanden Born, J. Rat models in peritoneal dilysis. Nephrology Dialysis Transplantation. 16 (3), 672-674 (2001).
  21. Sun, Y., et al. Treatment of established peritoneal fibrosis by gene transfer of Smad7 in a rat model of PD. American Journal of Nephrology. 30 (1), 84-94 (2009).
  22. Schilte, M. N., et al. Peritoneal dialysis fluid bioincompatibility and new vessel formation promote leukocyte-endothelium interactions in a chronic rat model for peritoneal dialysis. Microcirculation. 17 (4), 271-280 (2010).
  23. Peng, Y. M., et al. A new non-uremic rat model of long-term peritoneal dialysis. Physiological Research. 60 (1), 157-164 (2011).
  24. Stavenuiter, A. W., Farhat, K., Schilte, M. N., Ter Wee, P. M., Beelen, R. H. Bioincompatible impact of different peritoneal dialysis fluid components and therapeutic interventions as tested in a rat peritoneal dialysis model. International Journal of Nephrology. 2011, 742196 (2011).
  25. Loureiro, J., et al. BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrology Dialysis Transplantation. 25 (4), 1098-1108 (2010).
  26. Duman, S., et al. Does enalapril prevent peritoneal fibrosis induced by hypertonic (3.86%) peritoneal dialysis solution?. Peritoneal Dialysis International. 21 (2), 219-224 (2001).
  27. Duman, S., et al. Intraperitoneal enalapril ameliorates morphologic changes induced by hypertonic peritoneal dialysis solutions in rat peritoneum. Advances in Peritoneal Dialysis. 20, 31-36 (2004).
  28. Duman, S., Sen, S., Duman, C., Oreopoulos, D. G. Effect of valsartan versus lisinopril on peritoneal sclerosis in rats. International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 156-163 (2005).
  29. González-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritoneal Dialysis International. 29 (2), 227-230 (2009).
  30. González-Mateo, G. T., et al. Modelos animales de diálisis peritoneal: relevancia, dificultades y futuro. Nefrología. Supl. 6, 17-22 (2008).
  31. Rodrigues-Diez, R., et al. IL-17A is a novel player in dialysis-induced peritoneal damage. Kidney International. 86 (2), 303-315 (2014).
  32. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Pharmacological modulation of peritoneal injury induced by dialysis fluids: is it an option. Nephrology Dialysis Transplantation. 27 (2), 478-481 (2012).
  33. Liappas, G., et al. Immune-Regulatory Molecule CD69 Controls Peritoneal Fibrosis. Journal of the American Society of Nephrology. 27 (12), 3561-3576 (2016).
  34. Aroeira, L. S., et al. Cyclooxygenase-2 Mediates Dialysate-Induced Alterations of the Peritoneal Membrane. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (3), 582-592 (2009).
  35. Sandoval, P., et al. PPAR-[gamma] agonist rosiglitazone protects peritoneal membrane from dialysis fluid-induced damage. Laboratory Investigation. 90 (10), 1517-1532 (2010).
  36. Loureiro, J., et al. Tamoxifen ameliorates peritoneal membrane damage by blocking mesothelial to mesenchymal transition in peritoneal dialysis. PLoS One. 8 (4), e61165 (2013).
  37. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Paricalcitol reduces peritoneal fibrosis in mice through the activation of regulatory T cells and reduction in IL-17 production. PLoS One. 9 (10), e108477 (2014).
  38. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Rapamycin Protects from Type-I Peritoneal Membrane Failure Inhibiting the Angiogenesis, Lymphangiogenesis, and Endo-MT. BioMed Research International. 2015, 989560 (2015).
  39. Liappas, G., et al. Nebivolol, a beta1-adrenergic blocker, protects from peritoneal membrane damage induced during peritoneal dialysis. Oncotarget. 7 (21), 30133-30146 (2016).
  40. Ferrantelli, E., et al. A Novel Mouse Model of Peritoneal Dialysis: Combination of Uraemia and Long-Term Exposure to PD Fluid. Biomed Research International. 2015, 106902 (2015).
  41. Altmann, C., et al. Early peritoneal dialysis reduces lung inflammation in mice with ischemic acute kidney injury. Kidney International. 92 (2), 365-376 (2017).
  42. Peters, T., et al. Mouse model of foreign body reaction that alters the submesothelium and transperitoneal transport. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 300 (1), F283-F289 (2011).
  43. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).

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González-Mateo, G. T., Pascual-Antón, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., López-Cabrera, M. Surgical Techniques for Catheter Placement and 5/6 Nephrectomy in Murine Models of Peritoneal Dialysis. J. Vis. Exp. (137), e56746, doi:10.3791/56746 (2018).

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