Summary

Kromatin sprida preparat för analys av mus äggcellen Progression från profas till metafas II

Published: February 26, 2018
doi:

Summary

Oogenes hos däggdjur är känt för att vara felbenägna, särskilt på grund av kromosom missegregation. Detta manuskript beskriver kromatin sprida beredningsmetoder för mus profas, metafas I och II-iscensatt oocyter. Dessa grundläggande tekniker möjliggör studier av kromatin-bundna proteiner och kromosom morfologi i hela däggdjur oogenes.

Abstract

Kromatin spridning tekniker har använts att bedöma dynamisk localizationen av olika proteiner under könscellsbildning, särskilt för spermatogenesen. Dessa tekniker möjliggör visualisering av protein och DNA lokalisering mönster under meiotiska evenemang såsom homologa kromosom ihopkoppling, mås och DNA reparation. Medan några protokoll har beskrivits i litteraturen, är allmänna kromatin spridning tekniker använder däggdjur profas oocyter begränsad och svårt på grund av tidpunkten för meios inledande i fostrets äggstockarna. I jämförelse, kan profas spermatocyter samlas från juvenil hanmöss med högre avkastning utan behovet av lokalt. Det är dock svårt att få en ren synkroniserade population av celler i specifika stadier på grund av heterogenitet meiotiska och efter meiotiska bakteriecellen populationer i juvenil och adult testiklarna. För senare stadier av meios är det fördelaktigt att bedöma oocyter som genomgår meios jag (MI) eller meios II (MII), eftersom grupper av mogna äggceller kan samlas från vuxna kvinnliga möss och stimuleras för att återuppta meios i kultur. Här metoder för meiotiska kromatin sprida förberedelser använda oocyter från fostrets, dissekeras neonatal och vuxen äggstockarna beskrivs med tillhörande videodemonstrationer. Kromosom missegregation händelser i däggdjur oocyter är vanliga, särskilt under MI. Dessa tekniker kan användas för att bedöma och karakterisera effekterna av olika mutationer eller miljöexponering under olika stadier av oogenes. Eftersom det finns tydliga skillnader mellan oogenes och spermatogenes, är de tekniker som beskrivs inom ovärderlig för att öka vår förståelse av däggdjur oogenes och könsdimorfisk funktioner i kromosom och protein dynamics under meios .

Introduction

Under spermatogenes fylls stor semi-synkron vågor av meiotiska könsceller snabbt och kontinuerligt på i testiklarna vid uppkomsten av puberteten och under hela vuxenlivet1. I motsats till män initieras meios hos kvinnor enbart under fosterutvecklingen. Efter födseln, oocyter förbli greps i en långvarig dictyate skede av profas I med en intakt germinal vesikler (GV; kärn kuvert) fram till puberteten. På uppkomsten av puberteten, en delmängd av oocyter väljs cykliskt genomgå tillväxt och mognad, märkning inledandet av meiotiska återupptagande. Meiotiska återupptagande i fullvuxen oocyter manifesteras av försvinnandet av GV i en process som kallas germinal vesikler uppdelning (GVBD). Äggcellen genomgår sedan kromosom kondens och segregation, följt av polar kroppen extrudering. Oocyter bli arresterad vid progression till MII och stimuleras att slutföra andra och sista meiotiska divisionen endast efter befruktningen.

Kvinnlig fertilitet är starkt beroende av framgången av meiotiska profas jag progression. Nyckeln till detta är bildandet av en fysisk koppling mellan homologa kromosomer kallas de chiasmata, som medieras av reparation av inducerad DNA double strand breaks (DSBs) via crossover rekombination2. Denna process sker inom ramen för en dynamisk proteinrika byggnadsställning kallas komplexet synaptonemal (SC) som bildar mellan homologa kromosomer för att underlätta deras synapsis3. SC är en dragkedja-liknande tredelad struktur som består av två parallella laterala delar ansluten genom centrala regionen proteiner som håller homologs tillsammans under pågående DNA-reparation. Innan synapsis bildar prekursorer av de laterala element, kallas axiell element, mellan syster kromatider. Synaptonemal komplexa proteiner såsom SYCP2 och SYCP3 bildar axiella element som colocalize till syster-kromatida sammanhållning axlarna under tidig profas. Dessa senare utgöra bindande platser för proteinet tvärgående glödtråd, SYCP1, vilket underlättar central del montering och mås mellan justerad homologs4. I mus oocyter anges komplett synapsis av närvaron av 20 helt överlappande SYCP3 och SYCP1 sträckor, vilket kan visualiseras med hjälp av kromatin sprida preparat. Synapsis slutförs vid inträdet i pachytene undre fokalplanet, whereby mogen delningsfilter som är avsedda att bilda chiasmata mellan homologs är inredda med mutL homolog (MLH1/3) dimerer att främja deras korrekt bearbetning5,6 , 7. det strukturella underhållet av kromosomer (SMC) komplex, inklusive cohesin, condensin och SMC5/6-komplexet, är viktiga för regleringen av kromosom dynamics och struktur i hela meios8,9, 10,11,12. Sammantaget säkerställa dessa händelser korrekt bi-riktning av homologa kromosomer till motsatta spindeln polacker efter demontering av SC.

Meiotiska cellcykeln är en kraftfull modell för att undersöka olika proteiner i genomet underhåll tack vare programmerade induktion och efterföljande reparation av DNA DSBs roller. Dessutom är däggdjur meios också en relevant modell för studier av epigenetiska förändringar och imprinting13. Det är dock tekniskt svårt att bedöma dessa händelser under kvinnliga meios, som äger rum i fetal och neonatal äggstockarna hos däggdjur (figur 1). Profas jag kan delas in i 5 substages: leptonema, zygonema, pachynema, diplonema och dictyate. Häri, beskriver vi hur man isolera och skilja mellan fetal och neonatal äggstockar och testiklar (figur 2). Anpassad från tidigare beskrivna metoder, Detta manuskript beskriver också ett protokoll (steg 1) med video demonstration för beredning av kvinnliga meiotiska profas jag kromatin sprider14,15,16,17 . När den kombineras med immunolabelling, som beskrivs i steg 6-7, detta protokoll möjliggör detaljerad Mikroskopisk analys av profas jag händelser i oocyter.

Oogenes är felbenägen och kromosom missegregation händelser under första meiotiska divisionen utgör den vanligaste källan till genetisk sjukdom i avkomma18,19. I detta manuskript (protokoll steg 2) beskriver vi ett protokoll där mogna GV-iscensatt oocyter som utvinns ur primade äggstockarna av vuxen honmöss. Stödjande villkor genomgå fullvuxen oocyter luteiniserande hormon-oberoende återupptagandet av meios efter isolering och kulturen20. Efter meiotiska återupptagande, oocyter framsteg genom meios I och sedan gripa vid metafas II. Oocyter förblir greps vid metafas II, såvida inte befruktade. I steg 2 – 5, anpassar vi tidigare rapporterade protokoll med video demonstration att beskriva hur man samlar in, kultur och förbereda MI och MII oocyter för kromatin sprida preparat21. Detta kromatin sprida teknik möjliggör tydlig immunolabelling av proteiner associerade med kromosomer. Dessutom detta protokoll kan också användas för att skilja mellan bivalent och univalent kromosomer och ytterligare kan lösa ensamstående syster kromatiderna att underlätta bedömning av äggcell ploiditeten. Därför, förutom avslöjande lokalisering mönster av meiotiska proteiner, detta protokoll kan också fungera som ett ovärderligt verktyg för att belysa potentiella orsaker till kromosom missegregation under MI och MII.

Protocol

Alla metoderna som beskrivs här har godkänts av den institutionella djur vård och användning kommittén (IACUC) av Johns Hopkins University. Experimenten utfördes på vildtyp C57BL/6J möss. 1. avverkning Fetal- eller Neonatal äggstockarna och beredning av profas kromatin sprider För att extrahera embryon på 14,5 – 19,5 dagar post-intravenösa (dpc) offra de dräktiga honorna via cervikal dislokation eller CO2 kvävning enligt IACUC riktlinjer.Obs: För postn…

Representative Results

Vi har beskrivit två tekniker för att visualisera och bedöma meiotiska kromosomer i oocyter. Den första tekniken är tillgodoses mot bedömningen av profas progression i embryonala och neonatal äggstockarna. Profas kromatin spridning preparat är otroligt värdefulla för att visualisera många dynamiska processer under meios, inklusive kromosom ihopkoppling, mås och desynapsis, homolog rekombination och epigenetiska kromosom remodeling. Här, vi har visat nyttan av denna metod för…

Discussion

Kromatin spridning preparat kan forskare studera kronologiskt kvinnliga däggdjur meios och dynamiska localizationen av proteinerna som är inblandade. De embryonala och neonatal kromatin sprider möjliggör nära analys av händelser under hela meiotiska profas. Metafas jag och metafas II kromatin sprider kan användas för att skilja ensamstående syster kromatiderna från Parade systrar och Parade homologa kromosomer, samt bedöma ploiditeten. Som jämförelse kan av protokollet som beskrivs här vara fördelaktiga j?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete var stöds av NIGMS (R01GM11755) till P.W.J och ett utbildning bevilja stipendium från National Cancer Institute (NIH) (CA009110) att G.H. och J.H.

Materials

10X Phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 Quality Biological 119-069-161
60 mm x 15 mm petri dishes Denville T1106
35mm x 12mm petri dishes Denville T1103
Fine forceps VWR 300-050
Micro dissection scissors Ted Pella 1340
Dissecting scissors, sharp tip, 41/2" VWR 82027-578
Watch glass square 1 5/8 Carolina Biological Supply Company 742300 Autoclave before each use
Sucrose Sigma S8501
Trisodium Citrate Dihydrate Sigma S1804
EDTA Sigma E6758
Trizma Base Sigma T1503
1,4-Dithiothreitol (DTT) Sigma 646563 Add to hypotonic buffer immediately before use
50x Protease Inhibitor Roche 11873580001 Add to hypotonic buffer immediately before use
Turberculin syringe with needle (1cc, 27 G x 1/2 in) Becton, Dickinson (BD) 309623
Gold seal ultra frost glass slides (25X75mm, 1mm thick) Thermo 3063-002
Super PAP pen, large (liquid blocker) Electron Microscopy Sciences (EMS) 71310
16% Paraformaldehyde aqueous Electron Microscopy Sciences (EMS) 15710
Triton X-100 Sigma T8787 Detergent in manuscript
Immuno stain moisture chamber Evergreen 240-9020-Z10
Coplin jars Fisher 08-815
Photo-flo 200 Electron Microscopy Sciences (EMS) 74257 Wetting agent in manuscript
Pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) Sigma G4877 Store aliquots at -20C
Human chorionic gonadotropin (HCG) Sigma C0434 Store aliquots at -20C
PYREX Spot Plates with nine concave cavities Fisher 13-748B Autoclave before each use
Glass capillary Fisher 22260943 For making oocyte collection needles
Brand Parafilm M Sigma BR701501 For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (3.2 mm inner diameter x 6.4 mm outer diameter) Fisher 14-178-5B For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (6.4 mm inner diameter x 11.1 mm outer diameter) Fisher 14-178-5D For making oocyte collection needles
Flexible silicone rubber nosepiece, hard plastic mouthpiece and 15 inches of latex tubing Sigma A5177-5EA For making oocyte collection needles
Mitutoyo micrometer head Mituoyo 150-208 For making oocyte collection needles
Syringe 5 mL BD Biosciences 309646 For making oocyte collection needles
Syringe filter 0.45 μm filter Corning 431220 For making oocyte collection needles
Glass Pasteur Pipette 5 3/4" Fisher 13-678-6A For making oocyte collection needles
83 x 0.5 mm pipette tip Denville P3080 For making oocyte collection needles
α-MEM Invitrogen 11415049
Waymouth's media Life Technologies 11220035
Fetal bovine serum Fisher A3160602
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A3311 For oocyte culture media
500ml filter units 0.22um Denville F5227
Hyaluronidase Sigma H3506
Tyrode’s solution Sigma T1788 Store aliquots at -20C
Horse serum Sigma H-1270 For ADB/wash buffer
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A1470 For ADB/wash buffer
VECTASHIELD antifade mounting medium with DAPI Vector Labs H-1200
Microscope cover slides (22mmx60mm) Fisher 12-544-G
Clear nail polish Amazon N/A
Name Company Catalog Number Comments
Microscopes
SteREO Discovery.V8 Zeiss 495015-0001-000
Observer Z1 Zeiss
Name Company Catalog Number Comments
Primary Antibodies
Mouse anti-MLH1 Life Technologies MA5-15431 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti-SYCP1 Life Technologies PA1-16763 Dilution factor- 1:1000
Goat anti-SCP3 Santa Cruz sc-20845 Dilution factor- 1:50
Human anti-centromere protein Antibodies Incorporated 15-235 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti- TOPOII Abcam ab109524 Dilution factor- 1:100
Mouse anti-Histone H4 (di methyl K20, tri methyl K20) Abcam ab78517 Dilution factor- 1:500
Rabbit anti-Rec8 Courtesy of Dr. Karen Schindler N/A Dilution factor- 1:10,000
Name Company Catalog Number Comments
Secondary Antibodies
Donkey anti-goat IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11057 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 488 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-21202 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 647 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-31573 Dilution factor- 1:500
Goat anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11004 Dilution factor- 1:500
Goat anti-Human IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Thermo-Fisher Scientific A-11013 Dilution factor- 1:500
Goat anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11011 Dilution factor- 1:500

Referências

  1. Morelli, M. A., Cohen, P. E. Not all germ cells are created equal: aspects of sexual dimorphism in mammalian meiosis. Reproduction. 130 (6), 761-781 (2005).
  2. Keeney, S. Spo11 and the Formation of DNA Double-Strand Breaks in Meiosis. Genome Dyn Stab. 2, 81-123 (2008).
  3. Zickler, D., Kleckner, N. Recombination, Pairing, and Synapsis of Homologs during Meiosis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 7 (6), (2015).
  4. Vries, F. A., et al. Mouse Sycp1 functions in synaptonemal complex assembly, meiotic recombination, and XY body formation. Genes Dev. 19 (11), 1376-1389 (2005).
  5. Baker, S. M., et al. Involvement of mouse Mlh1 in DNA mismatch repair and meiotic crossing over. Nat Genet. 13 (3), 336-342 (1996).
  6. Lipkin, S. M., et al. Meiotic arrest and aneuploidy in MLH3-deficient mice. Nat Genet. 31 (4), 385-390 (2002).
  7. Kolas, N. K., et al. Localization of MMR proteins on meiotic chromosomes in mice indicates distinct functions during prophase I. J Cell Biol. 171 (3), 447-458 (2005).
  8. Rankin, S. Complex elaboration: making sense of meiotic cohesin dynamics. FEBS Journal. 282 (13), 2426-2443 (2015).
  9. Lee, J. Roles of Cohesin and Condensin in Chromosome Dynamics During Mammalian Meiosis. J. Reprod Dev. 59 (5), 431-436 (2013).
  10. Verver, D. E., Hwang, G. H., Jordan, P. W., Hamer, G. Resolving complex chromosome structures during meiosis: versatile deployment of Smc5/6. Chromosoma. 125 (1), 15-27 (2016).
  11. Hopkins, J., et al. Meiosis-specific cohesin component, Stag3 is essential for maintaining centromere chromatid cohesion, and required for DNA repair and synapsis between homologous chromosomes. PLoS Genet. 10 (7), e1004413 (2014).
  12. Hwang, G., et al. SMC5/6 is required for the formation of segregation-competent bivalent chromosomes during meiosis I in mouse oocytes. Development. 144 (9), 1648-1660 (2017).
  13. Kota, S. K., Feil, R. Epigenetic transitions in germ cell development and meiosis. Dev Cell. 19 (5), 675-686 (2010).
  14. Taketo, T. Microspread ovarian cell preparations for the analysis of meiotic prophase progression in oocytes with improved recovery by cytospin centrifugation. Methods Mol Biol. 825 (1), 173-181 (2012).
  15. Sun, X., Cohen, P. E. Studying recombination in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 1-18 (2013).
  16. Kim, J. H., Ishiguro, K., Kudo, N., Watanabe, Y. Studying meiosis-specific cohesins in mouse embryonic oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 47-57 (2013).
  17. Susiarjo, M., Rubio, C., Hunt, P. Analyzing mammalian female meiosis. Methods Mol Biol. 558, 339-354 (2009).
  18. Hassold, T., Hunt, P. To err (meiotically) is human: the genesis of human aneuploidy. Nat Rev Genet. 2 (4), 280-291 (2001).
  19. Hassold, T., Hall, H., Hunt, P. The origin of human aneuploidy: where we have been, where we are going. Hum Mol Genet. 16, R203-R208 (2007).
  20. Pincus, G., Enzmann, E. V. The Comparative Behavior of Mammalian Eggs In vivo and In vitro: I. The Activation of Ovarian Eggs. J Exp Med. 62 (5), 665-675 (1935).
  21. Chambon, J. P., Hached, K., Wassmann, K. Chromosome spreads with centromere staining in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 203-212 (2013).
  22. Stein, P., Schindler, K. Mouse oocyte microinjection, maturation and ploidy assessment. J Vis Exp. (53), (2011).
check_url/pt/56736?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hwang, G. H., Hopkins, J. L., Jordan, P. W. Chromatin Spread Preparations for the Analysis of Mouse Oocyte Progression from Prophase to Metaphase II. J. Vis. Exp. (132), e56736, doi:10.3791/56736 (2018).

View Video