Summary

Chromatin spre forberedelser for analyse av musen Oocyte progresjon fra Prophase til Metaphase II

Published: February 26, 2018
doi:

Summary

Oogenesis i pattedyr er kjent for å være utsatt for feil, spesielt på grunn av kromosom missegregation. Denne oppgaven beskriver chromatin spre forberedelse metoder for mus prophase, metaphase jeg og II-trinnvis oocytes. Disse grunnleggende teknikkene tillater for studier av chromatin-bundet proteiner og kromosom morfologi gjennom pattedyr oogenesis.

Abstract

Chromatin spredning teknikker har vært mye brukt til å vurdere den dynamiske lokaliseringen av under gametogenesis, spesielt for spermatogenesis. Disse teknikkene tillater for visualisering av protein og DNA lokalisering mønstre under meiotic hendelser som homologe kromosomer sammenkobling, Adept og DNA reparasjon. Mens noen protokoller har blitt beskrevet i litteraturen, er generelle chromatin spredning teknikker bruker pattedyr prophase oocytes begrenset og vanskelig på grunn av tidspunktet av meiose i fosterets eggstokkene. Til sammenligning kan prophase spermatocytes hentes fra unge mannlige mus med høyere avkastning uten behov for microdissection. Det er imidlertid vanskelig å få en ren synkronisert populasjon av celler på bestemte stadier på grunn av heterogenitet av meiotic og etter meiotic bakterie celle populasjoner i juvenile og voksen testikkel. Senere stadier av meiose er det en fordel å vurdere oocytes gjennomgår meiose jeg (MI) eller meiose II (MII), grupper av eldre oocytes kan være samlet inn fra voksne kvinnelige mus og stimuleres til å gjenoppta meiose i kultur. Her metoder for meiotic chromatin spre preparater med oocytes dissekert fra fosterets, neonatal og voksen eggstokkene er beskrevet med tilhørende video demonstrasjoner. Kromosom missegregation hendelser i pattedyr oocytes er hyppig, spesielt under MI. Disse teknikkene kan brukes til å vurdere og beskrive effekten av ulike mutasjoner eller miljømessige eksponeringer i ulike stadier av oogenesis. Som det er tydelige forskjeller mellom oogenesis og spermatogenesis, er teknikkene innen uvurderlig å øke vår forståelse av pattedyr oogenesis og dekket av hvit funksjonene i kromosom og protein dynamics under meiose .

Introduction

Under spermatogenesis, er store halvsynkron bølger av meiotic bakterie celler raskt og fortløpende fornyes i testikkel ved utbruddet av puberteten og hele voksenlivet1. I motsetning til menn startes meiose i kvinner utelukkende under fosterets utvikling. Etter fødselen, oocytes fortsatt arrestert i en langvarig dictyate fase av prophase med en intakt germinal vesicle (GV, kjernefysiske konvolutten) før puberteten. Ved utbruddet av puberteten, et delsett av oocytes er syklisk valgt å gjennomgå vekst og modning, merking initiering av meiotic gjenopptakelse. Meiotic gjenopptakelse i fully-grown oocytes er manifestert av forsvinningen av GV i en prosess kalt germinal vesicle nedbryting (GVBD). Oocyte gjennomgår deretter kromosom kondens og segregering, etterfulgt av polar kroppen ekstrudering. Oocytes bli arrestert på progresjon til MII og stimuleres til å fullføre den andre og siste meiotic divisjonen bare etter befruktning.

Kvinnelig fertilitet er svært avhengig av suksessen til meiotic prophase jeg progresjon. Nøkkelen til dette er dannelsen av en fysisk kobling mellom homologe kromosomer kjent som chiasmata, som er formidlet av reparasjon av indusert DNA dobbel-strand bryter (DSBs) via crossover rekombinasjon2. Dette skjer innenfor rammen av en dynamisk proteinrik stillaset kalles synaptonemal komplekset (SC) som danner mellom homologe kromosomer å lette deres Adept3. SC er en glidelås som tre struktur som består av to parallelle lateral elementer forbundet med sentrale regionen proteiner som holder homologs sammen gjennom pågående DNA-reparasjon. Før Adept danne forløpere for sideveis elementer, kalt aksial elementer, mellom søster chromatids. Synaptonemal kompleks proteiner som SYCP2 og SYCP3 danner aksial elementer som colocalize til søster-chromatid samhold aksene under tidlig prophase. Disse senere være bindende områder for tverrgående filament protein, SYCP1, som sentralt element montering og Adept mellom justert homologs4. I mus oocytes angis komplett Adept av tilstedeværelsen av 20 helt overlappende SYCP3 og SYCP1 strekninger, som kan visualiseres med chromatin spredt forberedelser. Adept er fullført ved inngåelse av pachytene substage, der modne overganger som skal sendes til skjemaet chiasmata mellom homologs er dekorert med mutL homolog (MLH1/3) dimers å fremme deres nøyaktige behandling5,6 , 7. strukturelle vedlikehold av kromosomer (SMC) komplekser, inkludert cohesin, condensin og SMC5/6 komplekse, er viktig for regulering av kromosom dynamikk og struktur gjennom meiose8,9, 10,11,12. Samlet sikre disse hendelsene riktig bi-retning av homologe kromosomer til motstridende spindel polakkene etter demontering av SC.

Meiotic celle syklusen er en effektiv modell undersøke rollene som ulike proteiner i genomet vedlikehold programmert induksjon og etterfølgende reparasjon av DNA DSBs. Videre er pattedyr meiose også en aktuelle modell for studiet av epigenetic endringer og preging13. Men er det teknisk vanskelig å vurdere disse hendelsene under kvinnelige meiose, som finner sted i fosterlivet og neonatal eggstokkene hos pattedyr (figur 1). Prophase jeg kan deles inn i 5 substages: leptonema, zygonema, pachynema, diplonema og dictyate. Her beskriver vi hvordan å isolere og skille mellom fosterets og neonatal eggstokker og testikler (figur 2). Tilpasset fra tidligere beskrevet metoder, dette manuskriptet også skisserer en protokoll (trinn 1) med video demonstrasjon for utarbeidelse av kvinnelige meiotic prophase jeg chromatin sprer14,15,16,17 . Når kombinert med immunolabelling, som beskrevet i trinn 6-7, denne protokollen gir detaljert mikroskopisk analyse av prophase jeg hendelser i oocytes.

Oogenesis er utsatt for feil, og kromosom missegregation hendelser i den første meiotic divisjonen representerer den vanligste kilden til genetisk sykdom i avkom18,19. I dette manuskriptet (protokollen trinn 2) beskriver vi en protokoll som modne GV-trinnvis oocytes trekkes ut fra primet eggstokkene voksne kvinnelige mus. Under støttende forhold gjennomgå fully-grown oocytes luteiniserende hormon-uavhengig gjenopptakelse av meiose etter isolasjon og kultur20. Etter meiotic gjenopptakelse, oocytes fremdrift gjennom meiose jeg og arrestere på metaphase II. Oocytes forblir arrestert på metaphase II, med mindre befruktet. I trinn 2 – 5: vi tilpasse tidligere rapportert protokoller med video demonstrasjon å beskrive hvordan å samle, kultur og forberede MI og MII oocytes chromatin spre forberedelser21. Denne chromatin spre teknikken gir klare immunolabelling proteiner tilknyttet kromosomer. Videre denne protokollen kan også brukes til å skille mellom bivalent og funksjonelle grupper som består kromosomer, og kan videre løse enkelt søster chromatids å lette vurdering av oocyte ploidy. Derfor, i tillegg til avsløre lokalisering mønstre av meiotic proteiner, denne protokollen kan også tjene som et uvurderlig verktøy for Klargjørende mulige årsaker til kromosom missegregation MI og MII.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet her er godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk Committee (IACUC) av Johns Hopkins University. Eksperimenter ble utført på vill-type C57BL/6J mus. 1. høsting fosterets eller Neonatal eggstokkene og forberedelse av Prophase Chromatin sprer seg For å pakke ut embryo 14.5-19,5 dager ofre innlegg-coitum (PPC) gravide kvinner via cervical forvridning eller CO2 kvelning i henhold IACUC retningslinjer.NOTE For postnatal dag 1 – 5 eg…

Representative Results

Vi har beskrevet to teknikker for å visualisere og vurdere meiotic kromosomer i oocytes. Den første teknikken er rettet mot vurdere prophase progresjon i embryonale og neonatal eggstokkene. Prophase chromatin spredning forberedelser er utrolig verdifull for å visualisere mange dynamisk prosesser under meiose, inkludert kromosom sammenkobling, Adept og desynapsis, homologe rekombinasjon, og epigenetic kromosom remodeling. Her har vi vist nytten av denne metoden for robust visualisering …

Discussion

Chromatin spredning forberedelser tillate forskere å studere kronologisk kvinnelige pattedyr meiose og den dynamiske lokaliseringen av proteiner involvert. Embryonale og neonatal chromatin oppslag gir omfattende analyse av arrangementer gjennom meiotic prophase. Metaphase jeg og metaphase II chromatin oppslag kan brukes til å skille enkelt søster chromatids fra sammenkoblet søstre og sammenkoblede homologe kromosomer, samt vurdere ploidy. Sammenligning kan protokollen beskrevet her være fordelaktig forhold til hele …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIGMS (R01GM11755) til P.W.J og en trening grant fellowship fra National Cancer Institute (NIH) (CA009110) G.H. og J.H.

Materials

10X Phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 Quality Biological 119-069-161
60 mm x 15 mm petri dishes Denville T1106
35mm x 12mm petri dishes Denville T1103
Fine forceps VWR 300-050
Micro dissection scissors Ted Pella 1340
Dissecting scissors, sharp tip, 41/2" VWR 82027-578
Watch glass square 1 5/8 Carolina Biological Supply Company 742300 Autoclave before each use
Sucrose Sigma S8501
Trisodium Citrate Dihydrate Sigma S1804
EDTA Sigma E6758
Trizma Base Sigma T1503
1,4-Dithiothreitol (DTT) Sigma 646563 Add to hypotonic buffer immediately before use
50x Protease Inhibitor Roche 11873580001 Add to hypotonic buffer immediately before use
Turberculin syringe with needle (1cc, 27 G x 1/2 in) Becton, Dickinson (BD) 309623
Gold seal ultra frost glass slides (25X75mm, 1mm thick) Thermo 3063-002
Super PAP pen, large (liquid blocker) Electron Microscopy Sciences (EMS) 71310
16% Paraformaldehyde aqueous Electron Microscopy Sciences (EMS) 15710
Triton X-100 Sigma T8787 Detergent in manuscript
Immuno stain moisture chamber Evergreen 240-9020-Z10
Coplin jars Fisher 08-815
Photo-flo 200 Electron Microscopy Sciences (EMS) 74257 Wetting agent in manuscript
Pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) Sigma G4877 Store aliquots at -20C
Human chorionic gonadotropin (HCG) Sigma C0434 Store aliquots at -20C
PYREX Spot Plates with nine concave cavities Fisher 13-748B Autoclave before each use
Glass capillary Fisher 22260943 For making oocyte collection needles
Brand Parafilm M Sigma BR701501 For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (3.2 mm inner diameter x 6.4 mm outer diameter) Fisher 14-178-5B For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (6.4 mm inner diameter x 11.1 mm outer diameter) Fisher 14-178-5D For making oocyte collection needles
Flexible silicone rubber nosepiece, hard plastic mouthpiece and 15 inches of latex tubing Sigma A5177-5EA For making oocyte collection needles
Mitutoyo micrometer head Mituoyo 150-208 For making oocyte collection needles
Syringe 5 mL BD Biosciences 309646 For making oocyte collection needles
Syringe filter 0.45 μm filter Corning 431220 For making oocyte collection needles
Glass Pasteur Pipette 5 3/4" Fisher 13-678-6A For making oocyte collection needles
83 x 0.5 mm pipette tip Denville P3080 For making oocyte collection needles
α-MEM Invitrogen 11415049
Waymouth's media Life Technologies 11220035
Fetal bovine serum Fisher A3160602
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A3311 For oocyte culture media
500ml filter units 0.22um Denville F5227
Hyaluronidase Sigma H3506
Tyrode’s solution Sigma T1788 Store aliquots at -20C
Horse serum Sigma H-1270 For ADB/wash buffer
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A1470 For ADB/wash buffer
VECTASHIELD antifade mounting medium with DAPI Vector Labs H-1200
Microscope cover slides (22mmx60mm) Fisher 12-544-G
Clear nail polish Amazon N/A
Name Company Catalog Number Comments
Microscopes
SteREO Discovery.V8 Zeiss 495015-0001-000
Observer Z1 Zeiss
Name Company Catalog Number Comments
Primary Antibodies
Mouse anti-MLH1 Life Technologies MA5-15431 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti-SYCP1 Life Technologies PA1-16763 Dilution factor- 1:1000
Goat anti-SCP3 Santa Cruz sc-20845 Dilution factor- 1:50
Human anti-centromere protein Antibodies Incorporated 15-235 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti- TOPOII Abcam ab109524 Dilution factor- 1:100
Mouse anti-Histone H4 (di methyl K20, tri methyl K20) Abcam ab78517 Dilution factor- 1:500
Rabbit anti-Rec8 Courtesy of Dr. Karen Schindler N/A Dilution factor- 1:10,000
Name Company Catalog Number Comments
Secondary Antibodies
Donkey anti-goat IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11057 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 488 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-21202 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 647 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-31573 Dilution factor- 1:500
Goat anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11004 Dilution factor- 1:500
Goat anti-Human IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Thermo-Fisher Scientific A-11013 Dilution factor- 1:500
Goat anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11011 Dilution factor- 1:500

Referências

  1. Morelli, M. A., Cohen, P. E. Not all germ cells are created equal: aspects of sexual dimorphism in mammalian meiosis. Reproduction. 130 (6), 761-781 (2005).
  2. Keeney, S. Spo11 and the Formation of DNA Double-Strand Breaks in Meiosis. Genome Dyn Stab. 2, 81-123 (2008).
  3. Zickler, D., Kleckner, N. Recombination, Pairing, and Synapsis of Homologs during Meiosis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 7 (6), (2015).
  4. Vries, F. A., et al. Mouse Sycp1 functions in synaptonemal complex assembly, meiotic recombination, and XY body formation. Genes Dev. 19 (11), 1376-1389 (2005).
  5. Baker, S. M., et al. Involvement of mouse Mlh1 in DNA mismatch repair and meiotic crossing over. Nat Genet. 13 (3), 336-342 (1996).
  6. Lipkin, S. M., et al. Meiotic arrest and aneuploidy in MLH3-deficient mice. Nat Genet. 31 (4), 385-390 (2002).
  7. Kolas, N. K., et al. Localization of MMR proteins on meiotic chromosomes in mice indicates distinct functions during prophase I. J Cell Biol. 171 (3), 447-458 (2005).
  8. Rankin, S. Complex elaboration: making sense of meiotic cohesin dynamics. FEBS Journal. 282 (13), 2426-2443 (2015).
  9. Lee, J. Roles of Cohesin and Condensin in Chromosome Dynamics During Mammalian Meiosis. J. Reprod Dev. 59 (5), 431-436 (2013).
  10. Verver, D. E., Hwang, G. H., Jordan, P. W., Hamer, G. Resolving complex chromosome structures during meiosis: versatile deployment of Smc5/6. Chromosoma. 125 (1), 15-27 (2016).
  11. Hopkins, J., et al. Meiosis-specific cohesin component, Stag3 is essential for maintaining centromere chromatid cohesion, and required for DNA repair and synapsis between homologous chromosomes. PLoS Genet. 10 (7), e1004413 (2014).
  12. Hwang, G., et al. SMC5/6 is required for the formation of segregation-competent bivalent chromosomes during meiosis I in mouse oocytes. Development. 144 (9), 1648-1660 (2017).
  13. Kota, S. K., Feil, R. Epigenetic transitions in germ cell development and meiosis. Dev Cell. 19 (5), 675-686 (2010).
  14. Taketo, T. Microspread ovarian cell preparations for the analysis of meiotic prophase progression in oocytes with improved recovery by cytospin centrifugation. Methods Mol Biol. 825 (1), 173-181 (2012).
  15. Sun, X., Cohen, P. E. Studying recombination in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 1-18 (2013).
  16. Kim, J. H., Ishiguro, K., Kudo, N., Watanabe, Y. Studying meiosis-specific cohesins in mouse embryonic oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 47-57 (2013).
  17. Susiarjo, M., Rubio, C., Hunt, P. Analyzing mammalian female meiosis. Methods Mol Biol. 558, 339-354 (2009).
  18. Hassold, T., Hunt, P. To err (meiotically) is human: the genesis of human aneuploidy. Nat Rev Genet. 2 (4), 280-291 (2001).
  19. Hassold, T., Hall, H., Hunt, P. The origin of human aneuploidy: where we have been, where we are going. Hum Mol Genet. 16, R203-R208 (2007).
  20. Pincus, G., Enzmann, E. V. The Comparative Behavior of Mammalian Eggs In vivo and In vitro: I. The Activation of Ovarian Eggs. J Exp Med. 62 (5), 665-675 (1935).
  21. Chambon, J. P., Hached, K., Wassmann, K. Chromosome spreads with centromere staining in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 203-212 (2013).
  22. Stein, P., Schindler, K. Mouse oocyte microinjection, maturation and ploidy assessment. J Vis Exp. (53), (2011).
check_url/pt/56736?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hwang, G. H., Hopkins, J. L., Jordan, P. W. Chromatin Spread Preparations for the Analysis of Mouse Oocyte Progression from Prophase to Metaphase II. J. Vis. Exp. (132), e56736, doi:10.3791/56736 (2018).

View Video