Summary

Chromatine verspreid preparaten voor de analyse van muis oöcyt progressie van profase naar metafase II

Published: February 26, 2018
doi:

Summary

Oögenese bij zoogdieren is bekend dat zij vergissing-geneigd, met name als gevolg van chromosoom missegregation. Dit manuscript chromatine verspreid voorbereiding worden methoden beschreven voor muis profase, metafase I en II-geënsceneerde eicellen. Deze fundamentele technieken toestaan voor de studie van chromatine-gebonden eiwitten en chromosoom morfologie in zoogdieren oögenese.

Abstract

Chromatine verspreiding technieken hebben wijd gebruikt om te beoordelen van de dynamische lokalisatie van verschillende eiwitten tijdens geslachtscel, met name voor de spermatogenese. Deze technieken kunnen voor visualisatie van eiwitten en DNA lokalisatie patronen tijdens Meiotische evenementen zoals homologe chromosomen in paren rangschikken, synapsis en DNA-reparatie. Terwijl een aantal protocollen zijn beschreven in de literatuur, zijn algemene chromatine verspreiding technieken met behulp van zoogdieren profase eicellen beperkt en moeilijk te wijten aan de timing van meiose Inleiding in de foetale eierstokken. In vergelijking, kunnen de profase spermatocyten worden verzameld van jonge mannelijke muizen met een hogere opbrengst zonder de behoefte aan microdissection. Het is echter moeilijk te verkrijgen van een zuivere gesynchroniseerde bevolking van cellen in specifieke stadia als gevolg van de heterogeniteit van Meiotische en post Meiotische geslachtscellen populaties in de jeugd- en volwassen testis. Voor de latere fases van de meiose is het voordelig om te beoordelen van oöcyten ondergaan meiose I (MI) of meiose II (MII), omdat groepen van rijpe eicellen kunnen worden verzameld van volwassen vrouwelijke muizen en gestimuleerd om te hervatten meiose in cultuur. Hier, methoden voor Meiotische chromatine verspreid preparaten met behulp van oöcyten ontleed van foetale, Neonatale en volwassen eierstokken worden beschreven met begeleidende video demonstraties. Chromosoom missegregation gebeurtenissen in zoogdieren eicellen zijn frequent, met name tijdens MI. Deze technieken kunnen worden gebruikt om te beoordelen en karakteriseren van de effecten van verschillende mutaties of milieu posities tijdens de verschillende fasen van de oögenese. Aangezien er duidelijke verschillen zijn tussen de oögenese en spermatogenese, zijn de technieken beschreven binnen onschatbare waarde voor het vergroten van ons begrip van zoogdieren ooegenese en de seksueel dimorphic kenmerken van chromosoom en eiwit dynamiek tijdens de meiose .

Introduction

Tijdens de spermatogenese, zijn grote halfsynchrone golven van Meiotische kiemcellen snel en voortdurend bijgevuld in de testis bij het begin van de puberteit en volwassenheid1. In tegenstelling tot mannen, wordt meiose bij vrouwtjes geïnitieerd uitsluitend tijdens de foetale ontwikkeling. Na geboorte, eicellen blijven gearresteerd in een fase van de langdurige dictyate van de profase I met een intact germinal Vesikel (GV; nucleaire envelop) tot de puberteit. Bij het begin van de puberteit, een subset van eicellen worden cyclisch geselecteerd om het ondergaan van de groei en rijping, markering van de inleiding van Meiotische hervatting. Meiotische hervatting in volgroeide eicellen manifesteert zich door het verdwijnen van de GV in een proces dat bekend staat als germinal vesikel verdeling (GVBD). De oöcyt ondergaat vervolgens chromosoom condensatie en segregatie, gevolgd door polar lichaam extrusie. Eicellen op de progressie naar MII worden gearresteerd en worden gestimuleerd om te voltooien van de tweede en laatste Meiotische divisie alleen na de bevruchting.

Vrouwelijke vruchtbaarheid is sterk afhankelijk van het succes van Meiotische profase ik progressie. Sleutel tot dit is vorming van een fysieke koppeling tussen homologe chromosomen, bekend als de chiasmata, die wordt gemedieerd door reparatie van geïnduceerde DNA dubbele strand einden (DSBs) via crossover recombinatie2. Dit proces vindt plaats binnen de context van een dynamische eiwitrijke steiger bekend als het synaptonemal-complex (SC) die tussen homologe chromosomen vormt om hun synapsis3. De SC is een rits-achtige tripartiete structuur die bestaat uit twee parallelle laterale elementen met elkaar verbonden door regio Midden eiwitten die in het bezit van homologen samen gedurende de lopende DNA-herstel. Voorafgaand aan de synapsis vormen voorlopers van de laterale elementen, axiale elementen, genoemd tussen zuster chromatiden. Synaptonemal complex eiwitten zoals SYCP2 en SYCP3 vormen axiale elementen die colocalize aan de zuster-chromatide cohesie assen tijdens de vroege profase. Deze later dienen als bindend sites voor de dwarse gloeidraad eiwit, SYCP1, die centraal element vergadering en synapsis tussen de uitgelijnde homologen4vergemakkelijkt. In muis eicellen, wordt volledige synapsis aangegeven door de aanwezigheid van 20 volledig preparaten overlappende SYCP3 en SYCP1 stukken, die kunnen worden gevisualiseerd met behulp van chromatine verspreid. Synapsis is voltooid bij binnenkomst in de pachytene substage, waarbij de volwassen crossovers die bestemd zijn om te formulier chiasmata tussen homologen zijn versierd met mutL homolog (MLH1/3) Dimeren ter bevordering van hun nauwkeurige verwerking5,6 , 7. de structurele handhaving van de chromosomen (SMC) complexen, met inbegrip van cohesin, condensin en de SMC5/6 complex, zijn belangrijk voor de regulering van chromosoom dynamiek en structuur in de gehele meiose8,9, 10,11,12. Collectief, zorgen deze gebeurtenissen voor goede bi-richting van homologe chromosomen naar tegengestelde Polen van de spindel na demontage van de SC.

De Meiotische celcyclus is een krachtig model te onderzoeken van de rol van verschillende eiwitten in het genoom onderhoud als gevolg van de geprogrammeerde inductie en latere reparatie van DNA-DSBs. Zoogdieren meiose is bovendien ook een relevante model voor de studie van de epigenetische aanpassingen en inprenting13. Het is echter technisch moeilijk in te schatten van deze gebeurtenissen tijdens vrouwelijke meiose, die in de foetale en neonatale eierstokken bij zoogdieren (Figuur 1 plaatsvindt). Profase ik kan worden onderverdeeld in 5 substages: leptonema, zygonema, pachynema, diplonema en dictyate. Hierin beschrijven we hoe u kunt isoleren en onderscheid maken tussen foetale en neonatale eierstokken en teelballen (Figuur 2). Aangepast van de eerder beschreven methoden, dit manuscript wordt ook uitgelegd welke een protocol (stap 1) met video demonstratie voor bereiding van vrouwelijke Meiotische profase ik chromatine verspreidt14,15,16,17 . Wanneer in combinatie met immunolabelling, zoals beschreven in stap 6-7, dit protocol maakt een gedetailleerde microscopische analyse van profase ik gebeurtenissen in eicellen.

Oögenese is foutgevoelig en chromosoom missegregation gebeurtenissen tijdens de eerste Meiotische verdeling vertegenwoordigen de meest voorkomende bron van genetische ziekte in nakomelingen18,19. In dit manuscript (protocol stap 2) beschrijven we een protocol waarin volwassen GV-geënsceneerde eicellen worden gewonnen uit primer eierstokken van volwassen vrouwelijke muizen. Ondersteunende voorwaarden ondergaan volgroeide eicellen luteïniserend hormoon-onafhankelijke hervatting van meiose na isolatie en cultuur20. Na de hervatting van het Meiotische, eicellen vooruitgang door middel van meiose I, dan arresteren op metafase II. Eicellen blijven gearresteerd op metafase II, tenzij bevrucht. In stap 2 – 5, passen we eerder gemeld protocollen met video demonstratie om te beschrijven hoe te verzamelen, cultuur en MI en MII eicellen voorbereiden chromatine verspreid preparaten21. Deze techniek verspreidt chromatine zorgt voor duidelijke immunolabelling van eiwitten die zijn gekoppeld aan de chromosomen. Bovendien, dit protocol kan ook worden gebruikt om te onderscheiden tussen bivalente en univalent chromosomen en één zus verder kan oplossen chromatiden ter vergemakkelijking van de beoordeling van de oöcyt ploïdie. Daarom, naast onthullend lokalisatie patronen van Meiotische eiwitten, dit protocol kan ook dienen als een instrument van onschatbare waarde voor het ophelderen van de mogelijke oorzaken van chromosoom missegregation tijdens MI en MII.

Protocol

Alle methoden die hier worden beschreven zijn goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik Comité (IACUC) van de Johns Hopkins University. Experimenten werden uitgevoerd op wild-type C57BL/6J muizen. 1. het oogsten van foetale of neonatale eierstokken en voorbereiding van de profase chromatine verspreidt Om uit te pakken van de embryo’s op 14,5 – 19.5 dagen opofferen post-coitum (dpc) de zwangere vrouwtjes via cervicale dislocatie of CO2 verstikking volgens…

Representative Results

Wij hebben twee technieken voor het visualiseren en beoordeling van Meiotische chromosomen in eicellen beschreven. De eerste techniek wordt verzorgd naar profase progressie in embryonale en neonatale eierstokken te beoordelen. Profase chromatine verspreiding preparaten zijn ongelooflijk waardevol voor het visualiseren van tal van dynamische processen tijdens meiose, met inbegrip van de chromosomen in paren rangschikken, synapsis en desynapsis, homologe recombinatie, en epigenetische chrom…

Discussion

Chromatine verspreiding preparaten kunnen onderzoekers chronologisch studeren vrouwelijke zoogdieren meiose en de dynamische lokalisatie van eiwitten die betrokken zijn. De embryonale en neonatale chromatine spreads zorgen voor nauwe analyse van de gebeurtenissen in de gehele Meiotische profase. Metafase I en II metafase chromatine spreads kunnen worden gebruikt om te onderscheiden van één zuster chromatiden van gepaarde zusters en gepaarde homologe chromosomen, evenals ploïdie beoordelen. Ter vergelijking: het protoc…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door NIGMS (R01GM11755) te P.W.J en door een opleiding subsidie fellowship van het National Cancer Institute (NIH) (CA009110), G.H. en J.H.

Materials

10X Phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 Quality Biological 119-069-161
60 mm x 15 mm petri dishes Denville T1106
35mm x 12mm petri dishes Denville T1103
Fine forceps VWR 300-050
Micro dissection scissors Ted Pella 1340
Dissecting scissors, sharp tip, 41/2" VWR 82027-578
Watch glass square 1 5/8 Carolina Biological Supply Company 742300 Autoclave before each use
Sucrose Sigma S8501
Trisodium Citrate Dihydrate Sigma S1804
EDTA Sigma E6758
Trizma Base Sigma T1503
1,4-Dithiothreitol (DTT) Sigma 646563 Add to hypotonic buffer immediately before use
50x Protease Inhibitor Roche 11873580001 Add to hypotonic buffer immediately before use
Turberculin syringe with needle (1cc, 27 G x 1/2 in) Becton, Dickinson (BD) 309623
Gold seal ultra frost glass slides (25X75mm, 1mm thick) Thermo 3063-002
Super PAP pen, large (liquid blocker) Electron Microscopy Sciences (EMS) 71310
16% Paraformaldehyde aqueous Electron Microscopy Sciences (EMS) 15710
Triton X-100 Sigma T8787 Detergent in manuscript
Immuno stain moisture chamber Evergreen 240-9020-Z10
Coplin jars Fisher 08-815
Photo-flo 200 Electron Microscopy Sciences (EMS) 74257 Wetting agent in manuscript
Pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) Sigma G4877 Store aliquots at -20C
Human chorionic gonadotropin (HCG) Sigma C0434 Store aliquots at -20C
PYREX Spot Plates with nine concave cavities Fisher 13-748B Autoclave before each use
Glass capillary Fisher 22260943 For making oocyte collection needles
Brand Parafilm M Sigma BR701501 For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (3.2 mm inner diameter x 6.4 mm outer diameter) Fisher 14-178-5B For making oocyte collection needles
Latex rubber tubing (6.4 mm inner diameter x 11.1 mm outer diameter) Fisher 14-178-5D For making oocyte collection needles
Flexible silicone rubber nosepiece, hard plastic mouthpiece and 15 inches of latex tubing Sigma A5177-5EA For making oocyte collection needles
Mitutoyo micrometer head Mituoyo 150-208 For making oocyte collection needles
Syringe 5 mL BD Biosciences 309646 For making oocyte collection needles
Syringe filter 0.45 μm filter Corning 431220 For making oocyte collection needles
Glass Pasteur Pipette 5 3/4" Fisher 13-678-6A For making oocyte collection needles
83 x 0.5 mm pipette tip Denville P3080 For making oocyte collection needles
α-MEM Invitrogen 11415049
Waymouth's media Life Technologies 11220035
Fetal bovine serum Fisher A3160602
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A3311 For oocyte culture media
500ml filter units 0.22um Denville F5227
Hyaluronidase Sigma H3506
Tyrode’s solution Sigma T1788 Store aliquots at -20C
Horse serum Sigma H-1270 For ADB/wash buffer
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A1470 For ADB/wash buffer
VECTASHIELD antifade mounting medium with DAPI Vector Labs H-1200
Microscope cover slides (22mmx60mm) Fisher 12-544-G
Clear nail polish Amazon N/A
Name Company Catalog Number Comments
Microscopes
SteREO Discovery.V8 Zeiss 495015-0001-000
Observer Z1 Zeiss
Name Company Catalog Number Comments
Primary Antibodies
Mouse anti-MLH1 Life Technologies MA5-15431 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti-SYCP1 Life Technologies PA1-16763 Dilution factor- 1:1000
Goat anti-SCP3 Santa Cruz sc-20845 Dilution factor- 1:50
Human anti-centromere protein Antibodies Incorporated 15-235 Dilution factor- 1:100
Rabbit anti- TOPOII Abcam ab109524 Dilution factor- 1:100
Mouse anti-Histone H4 (di methyl K20, tri methyl K20) Abcam ab78517 Dilution factor- 1:500
Rabbit anti-Rec8 Courtesy of Dr. Karen Schindler N/A Dilution factor- 1:10,000
Name Company Catalog Number Comments
Secondary Antibodies
Donkey anti-goat IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11057 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 488 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-21202 Dilution factor- 1:500
Donkey anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 647 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-31573 Dilution factor- 1:500
Goat anti-mouse IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11004 Dilution factor- 1:500
Goat anti-Human IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 Thermo-Fisher Scientific A-11013 Dilution factor- 1:500
Goat anti-rabbit IgG (H+L) Alexa Fluor 568 conjugate Thermo-Fisher Scientific A-11011 Dilution factor- 1:500

Referências

  1. Morelli, M. A., Cohen, P. E. Not all germ cells are created equal: aspects of sexual dimorphism in mammalian meiosis. Reproduction. 130 (6), 761-781 (2005).
  2. Keeney, S. Spo11 and the Formation of DNA Double-Strand Breaks in Meiosis. Genome Dyn Stab. 2, 81-123 (2008).
  3. Zickler, D., Kleckner, N. Recombination, Pairing, and Synapsis of Homologs during Meiosis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 7 (6), (2015).
  4. Vries, F. A., et al. Mouse Sycp1 functions in synaptonemal complex assembly, meiotic recombination, and XY body formation. Genes Dev. 19 (11), 1376-1389 (2005).
  5. Baker, S. M., et al. Involvement of mouse Mlh1 in DNA mismatch repair and meiotic crossing over. Nat Genet. 13 (3), 336-342 (1996).
  6. Lipkin, S. M., et al. Meiotic arrest and aneuploidy in MLH3-deficient mice. Nat Genet. 31 (4), 385-390 (2002).
  7. Kolas, N. K., et al. Localization of MMR proteins on meiotic chromosomes in mice indicates distinct functions during prophase I. J Cell Biol. 171 (3), 447-458 (2005).
  8. Rankin, S. Complex elaboration: making sense of meiotic cohesin dynamics. FEBS Journal. 282 (13), 2426-2443 (2015).
  9. Lee, J. Roles of Cohesin and Condensin in Chromosome Dynamics During Mammalian Meiosis. J. Reprod Dev. 59 (5), 431-436 (2013).
  10. Verver, D. E., Hwang, G. H., Jordan, P. W., Hamer, G. Resolving complex chromosome structures during meiosis: versatile deployment of Smc5/6. Chromosoma. 125 (1), 15-27 (2016).
  11. Hopkins, J., et al. Meiosis-specific cohesin component, Stag3 is essential for maintaining centromere chromatid cohesion, and required for DNA repair and synapsis between homologous chromosomes. PLoS Genet. 10 (7), e1004413 (2014).
  12. Hwang, G., et al. SMC5/6 is required for the formation of segregation-competent bivalent chromosomes during meiosis I in mouse oocytes. Development. 144 (9), 1648-1660 (2017).
  13. Kota, S. K., Feil, R. Epigenetic transitions in germ cell development and meiosis. Dev Cell. 19 (5), 675-686 (2010).
  14. Taketo, T. Microspread ovarian cell preparations for the analysis of meiotic prophase progression in oocytes with improved recovery by cytospin centrifugation. Methods Mol Biol. 825 (1), 173-181 (2012).
  15. Sun, X., Cohen, P. E. Studying recombination in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 1-18 (2013).
  16. Kim, J. H., Ishiguro, K., Kudo, N., Watanabe, Y. Studying meiosis-specific cohesins in mouse embryonic oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 47-57 (2013).
  17. Susiarjo, M., Rubio, C., Hunt, P. Analyzing mammalian female meiosis. Methods Mol Biol. 558, 339-354 (2009).
  18. Hassold, T., Hunt, P. To err (meiotically) is human: the genesis of human aneuploidy. Nat Rev Genet. 2 (4), 280-291 (2001).
  19. Hassold, T., Hall, H., Hunt, P. The origin of human aneuploidy: where we have been, where we are going. Hum Mol Genet. 16, R203-R208 (2007).
  20. Pincus, G., Enzmann, E. V. The Comparative Behavior of Mammalian Eggs In vivo and In vitro: I. The Activation of Ovarian Eggs. J Exp Med. 62 (5), 665-675 (1935).
  21. Chambon, J. P., Hached, K., Wassmann, K. Chromosome spreads with centromere staining in mouse oocytes. Methods Mol Biol. 957 (1), 203-212 (2013).
  22. Stein, P., Schindler, K. Mouse oocyte microinjection, maturation and ploidy assessment. J Vis Exp. (53), (2011).
check_url/pt/56736?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hwang, G. H., Hopkins, J. L., Jordan, P. W. Chromatin Spread Preparations for the Analysis of Mouse Oocyte Progression from Prophase to Metaphase II. J. Vis. Exp. (132), e56736, doi:10.3791/56736 (2018).

View Video