Qui descriviamo un metodo innovativo per determinare i polimorfismi di lunghezza del recettore del recettore 1 (CR1) per l'uso in diverse applicazioni, in particolare la valutazione della suscettibilità a malattie come la malattia di Alzheimer (AD). Questo metodo potrebbe essere utile per comprendere meglio il ruolo delle isoforme CR1 nella patogenesi dell'AD.
Il recettore complementare 1 (CR1), una glicoproteina transmembrana che svolge un ruolo chiave nel sistema immunitario innato, è espressa in molti tipi di cellule, ma in particolare nei globuli rossi (RBCs). Come un recettore per i componenti complementari C3b e C4b, CR1 regola l'attivazione della cascata del complemento e promuove la fagocitosi di complessi immunitari e detriti cellulari, nonché il peptide beta-amiloide (Aβ) nella malattia di Alzheimer (AD). Diversi studi hanno confermato i polimorfismi singoli nucleotidi associati ad AD (SNPs), nonché una variazione di numero di copia (CNV) nel gene CR1 . Qui descriviamo un metodo innovativo per determinare il polimorfismo di lunghezza del recettore CR1. Il recettore comprende tre domini, chiamati lunghi omologhi ripetizioni (LHR) -LHR-A, LHR-C e LHR-D e un dominio n, LHR-B, dove n è un intero compreso tra 0 e 3. Utilizzando una singola coppia Di primer specifici, il materiale genetico viene utilizzato per amplificare un primo frammento del dominio LHR-B (thE l'amplicone B) e un secondo frammento del dominio LHR-C (l'amplicone invariante). L'amplicone B e l'amplicone invariante presentano differenze a cinque nucleotidi al di fuori delle aree di ibridazione di detti primer. I numeri di ampliconi B e degli ampliconi invarianti vengono dedotti utilizzando uno strumento quantitativo (curve di fusione ad alta risoluzione (HRM)) e il rapporto tra l'amplicone B e l'amplicone invariante differisce in base al polimorfismo della lunghezza CR1. Questo metodo offre diversi vantaggi rispetto al metodo del fenotipo canonico, in quanto non richiede materiale fresco ed è più economico, più veloce e quindi applicabile a popolazioni più grandi. Pertanto, l'uso di questo metodo dovrebbe essere utile per comprendere meglio il ruolo delle isoforme CR1 nella patogenesi delle malattie come AD.
L'AD, la causa più comune di demenza, colpisce più di 30 milioni di persone in tutto il mondo ed è un grave problema di sanità pubblica 1 . Clinicamente, l'AD è caratterizzata da disturbi neurocognitivi che portano ad una progressiva perdita di autonomia 2 . L'AD è caratterizzato da due distintivi neuropatologici, vale a dire i depositi amiloidi extracellulari e i tangoli neurofibrillari intracellulari 3 .
Tradizionalmente, secondo l'età dell'insorgenza della malattia, l'AD è classificata in due forme. In primo luogo è l'inizio precoce AD (EOAD), dove l'inizio si verifica più spesso prima dell'età di 65 anni; Questo modulo rappresenta meno del 5% dei casi AD. È una rara forma autosomica dominante dell'AD, che produce mutazioni completamente penetranti sia nella proteina del precursore amiloide ( APP) 4 , in presenilina 1 ( PSEN1 ) 5 , sia in presenilina 2 ( PSEN2 )> 6 geni. In secondo luogo, la forma più comune della malattia (> 90% dei casi AD) è chiamata AD sporadica (LOAD) "sporadica" e più spesso si verifica nei soggetti di età compresa tra i 65 anni. Risulta da molti fattori di rischio genetici e ambientali 7 . In LOAD, il 4 allele del gene apolipoproteina E ( APOE ) è il principale fattore di rischio genetico 8 , 9 . Inoltre, più di 20 loci genici sono stati identificati da studi di associazione genome-wide (GWAS) come associati con il rischio di AD, una delle quali è la componente del complemento (3b / 4b) del recettore 1 (CR1) gene 10, situato Cromosoma 1q32 in un cluster di proteine correlate al complemento. Il gene CR1 codifica la proteina del recettore del complemento tipo 1 (CR1), un componente dei regolatori di attività complementare.
CR1 (il recettore C3b / C4b, CD35), una glicoproteina transmembrana di approximatEly 200 kDa 11 , si lega al C3b, C4b, C3bi, C1q, alla lectina legante manna (MBL) e alle proteine complementari di ficolina 12 . La funzione biologica di CR1 varia con i tipi di cellule in cui viene espresso. Nell'uomo, il 90% della CR1 circolante totale si trova nei globuli rossi (RBC) 13 . Presente alla superficie di RBC, CR1 si lega ai microrganismi o ai complessi immunitari C3b- o C4b-opsonizzati, facilitando la loro clearance dalla circolazione. I complessi legati a CR1 sono infatti trasferiti a fagociti quando i RBC attraversano il fegato e la milza 11 , 14 . Limitando la deposizione di C3b e C4b, CR1 potrebbe prevenire l'attivazione eccessiva del complemento. Pertanto l'espressione di CR1 sui RBC è considerata un elemento essenziale nella protezione dei tessuti, come il sistema nervoso cerebrale, contro la deposizione del complesso immunitario e le malattie risultanti. Il CR1 su RBC è anche notoSvolgono un ruolo importante nell'infezione patogena 15 , 16 . Inoltre, CR1, come elemento chiave nell'immunità innata, è coinvolto nella regolazione della cascata di complemento e nel trasporto e nella clearance dei complessi immunitari. CR1 esercita questa attività vincolando i frammenti C3b e C4b e dissociando convergenze classiche e alternative (dissociazione di C2a dal complesso C4b2a e dissociazione di C3b dal complesso C3bBb). Come cofattore del fattore di proteina della serina plasmatica I (FI), CR1 inibisce i percorsi di complemento classico e alternativo aumentando la scissione di C4b e C3b da FI, una proprietà nota come attività cofattore (CA) e inibendo l'anello di amplificazione C3 , A sua volta impedisce l'ulteriore attivazione del complemento. Rogers e colleghi dimostrano che il peptide Aβ può legare e attivare il percorso del complemento in assenza di anticorpi 17 e suggerisce che il peptide Aβ sia clEared dalla circolazione tramite adesione complementare a CR1 espressa su RBCs 18 .
CR1 presenta tre tipi di polimorfismi: polimorfismi strutturali o lunghi, polimorfismi di densità e polimorfismi del gruppo ematico di Knops 11 , 19 . Il polimorfismo strutturale è legato a una variazione del numero di lunghe ricerche omologhe (LHRs) e quindi definisce quattro isoforme. Infatti, il dominio extracellulare della proteina CR1 è composto da una serie di unità ripetitive, chiamate ripetizioni di consenso brevi (SCR) o ripetizioni di controllo complementare (CCPs). Questi SCR sono stati dimostrati dall'acido deossiribonucleico complementare (cDNA) che codifica CR1. Gli SCR sono disposti in gruppi tandem di sette, conosciuti come LHR. CR1 è disposto in quattro LHR, designati come LHR-A, -B, -C e -D, derivanti dalla duplicazione di una unità a sette SCR 19 , 20 ,21 .
In ordine crescente di frequenza, queste isoforme CR1 determinate da Western blot (WB) sono CR1 * 1 (A / F) (migrazione rapida sull'elettroforesi a gel), CR1 * 2 (B / S) (migrazione lenta sull'elettroforesi a gel), CR1 * 3 (C / F`) e CR1 * 4 (D). Le due isoforme più comuni, CR1 * 1 (A / F) e CR1 * 2 (B / S), sono composte da quattro e cinque LHR rispettivamente, mentre CR1 * 3 (C / F`) e CR1 * 4 ) Sono composti da 3 e 6 LHR rispettivamente. L'isoforma più comune (CR1 * 1), composta da 30 SCR, contiene tre siti di legame C4b (SCRs 1-3, 8-10 e 15-17) e due siti di legame C3b (SCRs 8-10 e 15-17) , Mentre i SCR 22-28 legano C1q, ficolini e MBL 12 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24 , 25 . Così, CR1 * 2 contiene un ulteriore sito di rilegatura C3b / C4bD a CR1 * 1. La figura 1 illustra le strutture, le nomenclature ei pesi molecolari delle quattro diverse isoforme di CR1.
Il polimorfismo di densità corrisponde a un fenotipo stabile che rappresenta il livello dell'espressione costitutiva di CR1 sulle RBCs. Nei soggetti caucasici sani è stato dimostrato che il numero di molecole CR1 per RBC può variare fino ad un fattore di dieci (variabili da 150 a 1.200 molecole per cella) 26 . RBC del fenotipo Helgeson hanno una bassissima densità CR1, che ha dimostrato di essere inferiore a 150 molecole per cella 27, 28. La densità CR1 su RBC è geneticamente associata ad un sistema biallelico autosomico codominante sul gene CR1 , correlato con un polimorfismo di lunghezza del frammento di restringimento Hin dIII (RFLP) 29 . Una mutazione a punto singolo in Intron 27 del gene CR1, tra gli esoni che codificano il secondoSCR in LHR-D, ha come risultato la generazione di un sito polinormale Hin dIII all'interno di questa regione 30 . I frammenti Genomic Hin dIII di 7,4 e 6,9 kDa identificano alleles associati ad alta (H allele) o bassa densità (L allele) CR1 sulle RBC rispettivamente. Tuttavia, non è stata riscontrata alcuna correlazione tra la densità CR1 nei polmorfismi di RBC e Hin dIII in alcune popolazioni dell'Africa occidentale 31 , 32 . Il meccanismo che collega la regolazione della densità CR1 ad un polimorfismo Hin dIII non codificato rimane sconosciuto. Tra diversi polimorfismi, Q981H in SCR16 e P1786R in SCR28 sono stati riportati per essere collegati alla densità CR1 sulle RBC 30 , 33 .
Il polimorfismo Knops (KN), secondo la nomenclatura internazionale, è il sistema di 22 gruppi di sangue da indicizzare dalla Società Internazionale di Trasfusione di Sangue. Contiene 9 specie antigenicheCifre espresse dal CR1 su RBC, incluse tre coppie antigeniche antitetiche KN1 / KN2, KN3 / KN6 e KN4 / KN7, nonché 3 antigeni isolati KN5, KN8 e KN9. I KN1, KN3, KN4 e antigeni KN5 sono antigeni ad alta frequenza del sistema KN (cioè, espresso in più del 99% della popolazione generale). Tuttavia, il ruolo di questo polimorfismo in AD deve ancora essere determinato 13 .
Il protocollo descritto in questo lavoro è stato progettato per determinare i genotipi di polimorfismo di lunghezza CR1 coinvolti nella suscettibilità a diverse malattie, come AD, lupus eritematoso sistemico e malaria. Il nostro metodo per la determinazione del polimorfismo di lunghezza CR1 approfitta del numero di LHR-B che comprendono le isoforme CR1 e delle differenze di sequenza tra LHR-B e LHR-C ( Figura 2 ).
Qui descriviamo una metodologia ampiamente accessibile per studiare polimorfismi di lunghezza CR1. Le tecniche di biologia molecolare per l'amplificazione o l'ibridazione segmentale non hanno mai potuto dare risultati soddisfacenti che consentano la determinazione dei polimorfismi di lunghezza CR1 in tutti gli individui. Ciò è dovuto alla struttura ripetitiva del gene CR1 ( cioè i SCRs di CR1 altamente ripetitivi). Il metodo di biologia molecolare qui descritto sfrutta la distribuzione quantitativa di LHR-B nella molecola CR1. La molecola CR1 comprende n domini LHR-B, dove n è un numero compreso tra 0 e 3 e solo un dominio LHR-C, come descritto e illustrato nella figura 2 . Il rilevamento quantitativo di dominio B consente di discriminare perfettamente un dominio aggiuntivo o mancante B.
Dal materiale genetico estratto, un primo frammento di DNA di LHR-B viene amplificato mediante PCR usando un singolo paio di primer specifici, rappresentanoUna variante caratteristica di LHR-B chiamata "amplicon variante B." Viene inoltre amplificato un secondo frammento di DNA, chiamato "amplicon invariante" e appartenente a LHR-C. Questo secondo frammento di DNA è un frammento di LHR-C, ma un altro frammento invariante di LHR-A o -D potrebbe anche essere utilizzato.
I due frammenti di DNA, l'amplicone variante B e l'amplicone invariante, sono amplificati dagli stessi primers e presentano cinque differenze nelle sequenze di nucleotidi. Questa caratteristica rende possibile nella fase successiva determinare il numero dell'amplicone variante B e il numero di ampliconi invarianti utilizzando uno strumento quantitativo di biologia molecolare, HRM, che è stato adattato a questo scopo. Il rapporto tra il numero di amplicon B e l'amplicone invariante (rapporto: amplicon B / amplicon invariante) varia in funzione della lunghezza della molecola CR1. Infatti, CR1 * 4 visualizza 3 unità di amplicon B a 1 amplicon invariante, CR1 * 2 visualizza 2 unità di amplicon B a 1 amplicone invariante, CR1 * 1 visualizza 1 amplicone B ad 1 amplicone invariante e CR1 * 3 visualizza 0 unità di amplicon B a 1 amplicon invariante ( Figura 2 ). Così, questo metodo HRM-PCR consente la genotipizzazione del polimorfismo della lunghezza CR1.
Tuttavia, all'inizio dello studio, questa tecnica richiede l'uso di soggetti di riferimento i cui fenotipi CR1 sono già noti ( vale a dire precedentemente stabiliti da WB) per poter stabilire la genotipizzazione di CR1 in base al profilo di riferimento delle curve ottenute Da HRM-PCR. Sono disponibili due tipi di rappresentazione, vale a dire "Curve di fusione normalizzate e spostate" e "Differenze di livello normalizzate e temporanee". Esse presentano gruppi distinti di profili di curva colorati secondo la fenotipizzazione polimorfica di lunghezza CR1 ottenuta da WB ( Figura 6 ). Dalla "step Normalized and Shifted Melting Curves", il nostro metodo consente di discriminare il thGruppi distinti di curve corrispondenti alle isoforme di CR1, raggruppate per colore. Tuttavia, il "Differenziale Plot Normalizzato e TEMP", che corrisponde ad una diversa rappresentazione matematica, consente di visualizzare più facilmente i distinti gruppi di curve. Sebbene il software del produttore venisse utilizzato in modo rutile in questo studio, altri software (ad esempio uANALYSE) potrebbero essere utilizzati come programma di estrazione dati per l'analisi della curva.
Ad oggi la tecnica di analisi WB è la tecnica originale che consente di identificare i differenti polimorfismi della lunghezza CR1 a livello della proteina. Tuttavia, questa tecnica presenta numerosi svantaggi. In particolare, l'analisi proteica da WB può essere fatta solo dopo l'estrazione delle membrane cellulari. Di conseguenza, è complesso e richiede molto tempo. Inoltre, questa tecnica richiede l'ottenimento di un campione di sangue fresco in condizioni appropriate all'inizio della procedura per ottenere rese utiliULT. Al contrario, HRM-PCR eseguita sul DNA rende possibile l'utilizzo di macchie o campioni di sangue seccamente secche dopo l'immagazzinamento a lungo termine. HMR-PCR richiede uno strumento specialistico di fusione di DNA, uno strumento dedicato o un termociclatore di capacità HMR con software HRM. La rilevazione di SNP dipende da diversi fattori: i) i SNP inclusi in grandi frammenti di PCR sono più difficili da rilevare che gli stessi SNP in piccoli frammenti di PCR; Ii) le SNP appartenenti a classi III e IV sono più difficili da rilevare rispetto a quelle delle classi I e II 34 ; E iii) le SNP che sono affiancate dalla simmetria di base vicina-vicina ( ad esempio, 5'-G (G / C) C-3 ') non possono essere ordinate mediante fusione, indipendentemente dalla potenza di risoluzione della piattaforma HMR. Può essere utile testare i frammenti di PCR previsti che contengono il SNP di interesse con il software uMELT 35 per valutare la validità del saggio. Infine, HMR-PCR è un metodo analogico, il che significa che la somiglianza delle curve di fusione scommetteUn riferimento e un modello non implicano necessariamente che la sequenza di modelli sia identica al riferimento, in quanto la sequenza di modelli può essere diversa dal riferimento ma equivalente termodinamicamente. Tuttavia, queste limitazioni non si applicano al metodo descritto qui, basato sulla fusione di un mix di ampliconi che si differenziano in termini di 5 sequenze di nucleotidi.
Inoltre, la tecnica descritta qui, basata sull'analisi della HRM, ha molti vantaggi. In primo luogo, i polimorfismi della lunghezza CR1 sono determinati più rapidamente, poiché i risultati sono ottenuti in circa 2 h una volta estratto l'estrazione del materiale genetico. Al contrario, le tecniche biochimiche tradizionali basate sull'analisi della proteina WB richiedono passi relativamente lunghi: l'elettroforesi degli estratti della membrana cellulare attraverso un gel di acrilamide, un passaggio per trasferire le proteine a una membrana nitrocellulosa o fluoruro di polivinilidene (PVDF) e un passaggio per identificare Isoforme delMolecola CR1 mediante immunochemiluminescenza. In secondo luogo, la tecnica HRM-PCR ha anche il vantaggio di non essere troppo costoso, particolarmente importante per un metodo che potrebbe essere applicato a molti individui ( cioè largescale) per determinare la loro suscettibilità allo sviluppo di patologie come la malattia di Alzheimer, Lupus o malaria.
Recentemente, noi e altri abbiamo dimostrato che l'isoforma CR1 * 2, che contiene un ulteriore sito di legame C3b / C4b, è stata associata con AD 36 , 37 , 38 . Nel nostro studio precedentemente pubblicato, i polimorfismi di lunghezza CR1 a livello del gene e della proteina erano coerenti nel 98,9% dei soggetti 38 . I risultati discordanti ottenuti quando si confrontano i polimorfismi di lunghezza ottenuti da HRM-PCR con quelli ottenuti da WB corrispondevano a soggetti con un profilo genotipico (CR1 * 1, CR1 * 2) determinato da HRM (gene) ma exPremendo solo la isoform CR1 * 1 alla superficie dell'eritromicina secondo WB (proteina). Nel nostro studio, la mancanza di espressione isoformica CR1 * 2 (individui con un allele silenzioso) è stata riproducibile quando il WB è stato eseguito con un tempo di esposizione più lungo e potrebbe essere spiegato dall'esistenza di un silente CR1 allele (CR1 * 2), descritto In letteratura da Helgeson 39 . Tuttavia, ulteriori studi su popolazioni più grandi sono necessarie per sostenere questa ipotesi.
Va notato che SNP privati (SNPs che si verificano solo in un piccolo gruppo familiare o persino in un singolo individuo) hanno portato a profili distinti di curva che devono essere decifrati usando la determinazione del fenotipo di riferimento (WB) ma che non può essere confuso con il profilo canonico per evitare Qualsiasi errata interpretazione del genotipo del polimorfismo di lunghezza CR1.
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo tutti i membri della Plateforme Régionale de Biologie Innovante, il personale del Dipartimento di Immunologia e il personale del Dipartimento di Medicina Interna e Geriatria, che ha contribuito all'ottimizzazione e alla validazione del protocollo. Questo lavoro è stato finanziato dagli ospedali universitari di Reims (numero di sovvenzione AOL11UF9156). Ringraziamo anche Fiona Ecarnot (EA3920, University Hospital Besancon, Francia) per l'assistenza editoriale.
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SensiCareIce powder-free Nitrile Exam gloves | Medline Industries, Inc, Mundelein, IL 60060, USA | 486802 | sample protection |
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CN3re primer: 5'gttgacaaattggcggcttcg 3' | Eurogentec Biologics Division, B- 4102 Seraing, Belgium | reaction reagent |