O ensaio da ilha é um ensaio relativamente novo e econômico que pode ser usado para avaliar o comportamento locomotor básico de Drosophila melanogaster. Este manuscrito descreve algoritmos para processamento automático de dados e quantificação objetiva dos dados de ensaio de ilha, dificultando a ensaiar uma leitura sensível, elevado-throughput para telas grandes de genéticas ou farmacológicas.
Avanços em tecnologias de sequenciamento de última geração contribuem para a identificação de genes de doença (candidato) para distúrbios do movimento e outras doenças neurológicas, a uma velocidade crescente. No entanto, pouco é conhecido sobre os mecanismos moleculares que estão subjacentes a esses transtornos. A caixa de ferramentas comportamental, molecular e genética da Drosophila melanogaster faz com que este organismo modelo particularmente útil para caracterizar a nova doença de genes e mecanismos de forma elevado-throughput. No entanto, telas de alta produtividade exigem ensaios eficientes e confiáveis que, idealmente, são cost-effective e permitir a quantificação automatizada dos traços relevantes para esses transtornos. O ensaio da ilha é um rentável e facilmente de set-up método para avaliar o comportamento locomotor de Drosophila . Neste ensaio, moscas são lançadas em uma plataforma de uma altura fixa. Isso induz uma resposta inata de motor que permite que as moscas escapar da plataforma dentro de segundos. Neste momento, análises quantitativas dos ensaios ilha filmadas são feitas manualmente, que é um empreendimento laborioso, particularmente ao realizar grandes ecrãs.
Este manuscrito descreve os algoritmos“Drosophila ilha ensaio” e “Ilha do ensaio análise” para alta produtividade, processamento automatizado de dados e quantificação de dados de ensaio da ilha. No menu configuração, uma simples webcam conectada a um computador portátil recolhe uma série de imagem da plataforma enquanto o ensaio é realizado. O algoritmo de“Drosophila ilha ensaio” desenvolvido para o software open-source Fiji processa estas séries de imagem e quantifica, para cada condição experimental, o número de moscas na plataforma ao longo do tempo. O roteiro de “Ilha do ensaio análise”, compatível com o software livre R, foi desenvolvido para processar automaticamente os dados obtidos e calcular se tratamentos/genótipos são estatisticamente diferentes. Isto grandemente melhora a eficiência do ensaio ilha e torna uma leitura poderosa para locomoção básica e comportamento de voo. Assim, pode ser aplicado para telas grandes investigando voar capacidade locomotora, modelos da drosófila de distúrbios do movimento e a eficácia da droga.
Nos últimos anos, avanços em tecnologias de próxima geração de sequenciamento contribuíram grandemente para a identificação de genes subjacentes transtornos degenerativa do cérebro (por exemplo, ataxia cerebelar e a doença de Parkinson), de periférico neuronal origem (por exemplo, a esclerose lateral amiotrófica e paraplegia espástica hereditária) e de origem muscular (por exemplo, distrofia muscular de Duchenne e distrofia miotônica)1,2,3,4 . Apesar disso, pouco é conhecido sobre os mecanismos moleculares que sustentam a maioria destes transtornos. Uma melhor compreensão desses mecanismos é essencial para o desenvolvimento de terapias.
Como em humanos, movimento em organismos-modelo, como voo e locomoção em Drosophila, é controlado pelo cérebro central, sistema nervoso periférico e músculos. Além disso, o tempo de geração rápida e caixa de ferramentas genética da Drosophila tornam este organismo modelo particularmente adequado para o rastreio de alto rendimento de genes envolvidos em distúrbios do movimento e para5,6 de testes de drogas . Devido ao número substancial de condições que precisam ser testados em tais telas, confiáveis e econômicas e ensaios simples relativos, bem como ferramentas para quantificar os resultados de saída de forma automatizada, são altamente desejáveis.
Schmidt et al . (2012) 7 descreveu um teste de baixo custo chamado ensaio de”ilha” para avaliar o comportamento locomotor de Drosophila . O ensaio da ilha tem sido usado com sucesso em seleções em grande escala para identificar os genes com funções específicas glia7, na avaliação dos modelos de drosófila de deficiência intelectual8e para a avaliação geral de Voe de comportamento motor9. O design do princípio do ensaio ilha consiste em uma plataforma elevada sobre a qual são lançadas várias moscas. Isto induz um comportamento motor inato que permite saudáveis moscas escapar da plataforma dentro de segundos. O teste mede o número de moscas, permanecendo na plataforma sobre tempo7,8,9. Todas estas características indicam que o ensaio da ilha pode ser uma ferramenta poderosa de triagem para genes envolvidos em distúrbios do movimento.
Atualmente, a análise quantitativa dos dados de ensaio filmado ilha é feita manualmente7,8,9. Para melhorar a eficiência do ensaio, um método de baixo custo foi desenvolvido para quantificar semi-automática a fuga de moscas da plataforma. A instalação usa uma simples webcam conectada a um computador portátil para recolher imagem tempo série da plataforma, com quadros adquiridos a cada 0.1 s. quadros são processados em seguida com a macro“Drosophila ilha ensaio” que quantifica o número de moscas na plataforma sobre está na hora. A macro“Drosophila ilha ensaio” é dividida em três macros sub independentes: (I) o “Create pilha e projeção,” macro sub identifica experiências diferentes ilha armazenadas nas subpastas diferentes e cria uma pilha e uma projeção de cada um série de tempo. (II) a macro sub “Definir a plataforma” consecutivamente abrirá todos os arquivos “Projection_image_name.tif”, localizados nas subpastas individuais experimentais, no ponto em que o usuário é solicitado para definir manualmente a plataforma da ilha como a região de interesse (ROI). (III) “análise” automaticamente quantifica o número de moscas restante na plataforma durante o período de tempo. O sub macros podem ser executado consecutivamente (em uma corrida) ou de forma independente. Para análise estatística dos dados, um script foi desenvolvido para processar automaticamente os dados obtidos e aplicar um teste estatístico para determinar se os tratamentos/genótipos se comportam significativamente diferentes entre si (Figura 1). Finalmente, está demonstrado que esta configuração pode ser usada para avaliar e quantificar a capacidade de locomoção aberrante de um modelo de drosófila para ataxia-telangiectasia (AT).
Este protocolo descreve a macro“Drosophila ilha ensaio” que avalia quantitativamente o comportamento motor de Drosophila durante o ensaio da ilha. A macro conta com precisão as moscas na plataforma ao longo do tempo, tornando o ensaio da ilha altamente sensível e adequado para avaliação quantitativa do elevado-throughput de defeitos do aparelho locomotoras. A metodologia permite a comparação de qualquer condição, com moscas cultivadas sob diferentes condições genéticas e/ou ambientais, incluindo a exposição da droga. Esta leitura é, portanto, particularmente útil como ferramenta de descoberta ao realizar grandes telas genéticas ou farmacêuticas, quando estudar modelos da drosófila de distúrbios do movimento e outras doenças neurológicas, ou aquando da análise de locomoção ou voo comportamento.
O protocolo de ensaio ilha apresentado neste manuscrito fornece vantagens sobre os métodos existentes/alternativa. Por exemplo, a locomoção de controle de vídeo é muito mais demorado e menos apropriado para o teste de tamanhos de amostra grande. O ensaio da ilha é uma ferramenta de seleção da elevado-produção e, neste sentido, é comparável com o ensaio de geotaxis negativo interativo rápida (anel)16. A diferença entre os dois é que os ensaios da ilha permite a detecção de uma gama mais ampla de problemas de locomoção; a incapacidade de moscas para deixar a plataforma pode ser causada por defeitos em voo, saltando, ou andando de comportamento causada pela asa (músculo/neuronal) e/ou perna (músculo/neuronal) defeitos. Por outro lado, o ensaio do anel avalia defeitos de comportamento escalada/caminhada causadas por defeitos de perna (músculo/neuronal). No caso de usuários estão interessados em múltiplas leituras comportamentais, o ensaio da ilha também facilmente pode ser combinado com outros ensaios, tais como o ensaio do anel. Além disso, laser necessário para optogenetics pode ser facilmente instalado na caixa de ensaio da ilha, e a instalação é tão simples que facilmente podem ser movido para uma sala onde a temperatura e a luz podem ser controladas.
Para garantir o sucesso e a reprodutibilidade do ensaio ilha descrita aqui, várias recomendações devem ser seguidas. Alíquota e transferência as moscas para o teste experimental frascos pelo menos um dia antes do experimento para evitar os efeitos da anestesia de CO2 ou frio. Não sobrecarregar os frascos experimentais (usar moscas de 10-15 por frasco; é melhor colocar sempre o mesmo número de moscas por frasco). Manter as moscas em alimentos frescos em todos os momentos. Se não ainda familiarizado com a realização do ensaio, prática jogando voa na plataforma para maximizar o rendimento. Também praticar retraindo rapidamente a mão logo depois, como ela interfere com a análise de dados (análise de imagem e mosca contando o início somente depois que a mão está fora do quadro). Manter as condições ambientais e experimentais idênticas em experiências que precisam ser comparados (por exemplo, controles versus mutantes ou um genótipo testaram em diferentes idades). Sempre realizar os experimentos ao mesmo tempo do dia e manter os frascos sob condições de umidade e temperatura controlada. Para poder estatístico, o teste de pelo menos três repetições técnicas por replicar biológica.
Para assegurar a execução bem sucedida da macro descrita aqui, configurações de webcam e a imagem devem ser ajustadas para atingir o máximo contraste: voa aparecendo como objetos pretos em uma plataforma de branco. Quando o número de moscas corretamente não é contado pela macro, ajuste as configurações de contraste, verifique se o ROI está selecionado corretamente e certifique-se de que o tamanho das moscas na plataforma é acima do mínimo especificado voar tamanho configuração (consulte a etapa 8.3 do presente protocolo). As configurações só precisam ser definido uma vez. São aplicáveis a todas as experiências, contanto que a distância entre a plataforma e a webcam não é alterada. O Circularity_min e configurações máximas definem a circularidade das partículas (partículas = contadas moscas) que irá ser tidos em conta para a análise (voa = objetos contados). 1 representa um círculo perfeito, e 0 representa uma linha17. Uma vez que as moscas sempre apresentam um certo grau de circularidade (uma mosca não pode aparecer como uma linha reta), a definição de “Circularity_max” é definida de 1 e a definição de “Circularity_min” é definida de 0,4. É improvável que o usuário precisa ajustar essas configurações.
A macro ocasionalmente faz contagem de erros quando uma mosca está localizada perto da fronteira da plataforma. Isso pode ocorrer se as moscas não voam mas andar dentro e fora o ROI de definido pelo usuário. Na maioria dos casos, forem o ROI (montagem tanto quanto possível para a plataforma) pode facilmente resolver esse problema. No entanto, o roteiro de “Ilha do ensaio análise” é capaz de detectar e contagens de dados corretos imprópria causaram por moscas andar dentro e fora do ROI relativamente bem. Embora a resolução da webcam apresentada aqui é alta o suficiente para discriminar moscas nas proximidades razoavelmente bem, nós implementamos algoritmos adicionais no processo de processamento de imagem da macro“Drosophila ilha ensaio”, tais como o bacias hidrográficas e corroer a função17. Estas facilitam a adequada delimitação das moscas que ficam nas proximidades da plataforma. Além disso, a macro é incapaz de distinguir entre moscas que pulou da plataforma ou voaram longe. No entanto, geralmente observa-se que cepas de mosca jovens saudáveis voam imediatamente quando caiu da plataforma, Considerando que moscas mais velhas e moscas com défices locomotoras permanecem por mais tempo na plataforma e serão eventualmente saltar ou cair fora da plataforma. Apesar dessas limitações, o ensaio e análise fornecem uma medida muito precisa de comportamento locomotor.
Para garantir a execução bem-sucedida do script “Ilha ensaio análise”, o usuário tem que certificar-se de inserir os caminhos corretos para os arquivos de entrada e saídos nas linhas roteiro indicados no protocolo e fornecer os dados no formato de pasta correta (conforme indicado na Figura 2). Se o usuário encontra os critérios usados para filtrar dados experimentais confiáveis demasiado rigorosos (linha 68: o primeiro valor na coluna “Contar” é menor ou igual a 5; linha 71: o primeiro valor na coluna “Contagem” é maior do que o número total de moscas lançada sobre o Epics RM + 3), desligar essas configurações de filtro adicionando um # na frente o texto em linhas 68 e 71 no script “Ilha ensaio análise”. Neste caso, todos os conjuntos de dados serão incluídos na análise. Alternativamente, as configurações de filtro podem ser alteradas, ajustando os valores nas linhas 68 e 71 de acordo com as necessidades do usuário. Possíveis artefatos em valores de contagem no “Results” gerado pela macro“Drosophila ilha ensaio” também podem ser ajustados manualmente, e o script pode ser executado novamente os dados ajustados. Quando o usuário está interessado no processamento de mais de 10 fps, ou mais de 10 s de dados, o número de quadros processados pelo script “Ilha ensaio análise” deveser ajustada. A análise estatística também pode ser substituída por alternativas definidas pelo usuário.
Uma pasta chamada “Exemplos ilha do ensaio,” que contém exemplos com imagem séries temporais obtidas usando o ensaio da ilha, pode ser encontrada no seguinte site: https://doi.org/10.6084/m9.figshare.4309652.v1. Baixar a pasta “Exemplos ilha ensaio” e siga os passos descritos no presente protocolo rapidamente tornar-se familiarizado com a estrutura de armazenamento de arquivos, o processamento das imagens com a macro “Ensaio de Drosophila ilha” e a análise de ensaio”ilha” script.
O ensaio da ilha, em combinação com a macro desenvolvida e roteiro de análise, pode ser usado para avaliar e quantificar o comportamento aberrante de movimento de um modelo de drosófila de Ataxia-Telangiectasia. Desde que o ensaio pode ser aplicado eficientemente para várias idades, é bem adequado para analisar a natureza potencialmente progressiva dos fenótipos.
Em resumo, o ensaio da ilha, em combinação com a macro“Drosophila ilha ensaio” e o roteiro de “Análise do ensaio de ilha”, é um ensaio altamente eficiente, confiável e econômico objetiva analisar e quantificar locomotoras defeitos de Drosófila modelos de distúrbios de movimento de uma forma de alta produtividade.
The authors have nothing to disclose.
Reconhecemos que o centro de recursos de drosófila de Viena e Bloomington Drosophila estoque centro (NIH P40OD018537) para fornecer estirpes de Drosophila . Estamos gratos ao laboratório Klämbt por nos apresentar para o ensaio da ilha e Martijn Eidhof para a construção da instalação de ensaio de ilha. Este estudo foi em parte apoiado pela chamar transnacionais conjuntas E-rara-3 conceder “Preparando-se para as ataxias recessivas autossômicas terapias” PREPARE (NWO 9003037604), por uma concessão superior (912-12-109) da organização do Países Baixos para a pesquisa científica (NWO) e por duas bolsas DCN/Radboud University Medical Center PhD. Os financiadores não tinham qualquer papel no projeto de estudo, coleta de dados e análise, a decisão de publicar ou preparação do manuscrito.
25 x 95 mm Drosophila vials | Flystuff | 32-116SB | – |
Logitech C525 HD Webcam | Logitech | – | Any webcam with USB connection is suitable. |
Stand to hold webcam | – | – | – |
Lamp | – | – | 12 V LED lights are appropriate |
Pounding pad | – | – | Any mouse pad works |
Island Assay box | – | – | Dimensions 40x35x2.5 cm. Hole 20×30 cm. Transparent. |
Island Assay bath | – | – | Dimensions 42x38x25 cm. Non white. |
Island/platform | – | – | Dimensions 42x38x25 cm. Uniform white. |
Soap | – | – | Standard dishwashing detergent is suitable. |
Computer | – | – | Scripts run both on Windows and Mac |
Image-recording software: HandiAvi® | AZcendant® | – | HandyAvi is only compatible with Windows and has been described throughout the manuscript. It can be downloaded from: http://www.azcendant.com/DownloadHandyAvi.html (version 5.0) |
Image-recording software: WebcamCapture | – | – | Fiji/ImageJ plugin that can be used on Mac alternative to HandyAvi for image-recordings and can be downloaded from: https://imagej.nih.gov/ij/plugins/webcam-capture/ When using this method, the user has to use the same folder setup and image-recording settings indicated in this manuscript, with the exception that for each experimental replicate, the captured image stack should be exported as Stack.tiff to the corresponding experimental replicate folder. Upon running the "Drosophila Island Assay" macro on this data, no text should be present in the "First frame identifier" setting. |
Fiji | – | – | Version 1.4 or higher, can be downloaded from: https://figshare.com/s/def4197ee0010b21a76f |
R studio | – | – | Can be downloaded from: https://www.rstudio.com/products/rstudio/download/ |
R | – | – | Version 3.3.2, can be downloaded from: https://cran.rstudio.com |