Summary

Användning av Immunolabeling att analysera stabil, dynamisk och begynnande mikrotubuli i zebrafiskar embryot

Published: September 20, 2017
doi:

Summary

Immunolabeling metoder för att analysera distinkta populationer av mikrotubuli i hjärnans utveckling zebrafiskar beskrivs här, som är allmänt tillämpliga på andra vävnader. Det första protokollet beskriver en optimerad metod för immunolabeling stabil och dynamisk mikrotubuli. Det andra protokollet ger en metod för att bild och kvantifiera begynnande mikrotubuli specifikt.

Abstract

Mikrotubuli (MTs) är dynamisk och sköra strukturer som är utmanande att bilden i vivo, särskilt i ryggradsdjur embryon. Här presenteras Immunolabeling metoder för att analysera distinkta populationer av MTs i utvecklingsländer neuralrörsdefekter zebrafiskar embryot. Medan fokus ligger på nervvävnad, är denna metod allmänt tillämplig på andra vävnader. Förfarandena är optimerade för tidigt till mitten av-somitogenesis-stegs embryon (1 somite till 12 thoraxsegmenten), men de kan anpassas till en rad andra stadier med relativt små justeringar. Det första protokollet ger en metod för att bedöma rumslig distribution av stabila och dynamiska MTs och utföra en kvantitativ analys av dessa populationer med bildbehandling programvara. Detta synsätt kompletterar befintliga verktyg bild mikrotubulära dynamics och distribution i realtid, med transgena linjerna eller övergående uttryck märkta konstruktioner. Sådana verktyg är verkligen mycket användbara, men de inte skiljer lätt mellan dynamisk och stabil MTs. Förmågan att bild och analysera dessa distinkta mikrotubulära populationer har viktiga konsekvenser för förstå mekanismerna bakom cell polarisering och morfogenes. Det andra protokollet beskriver en teknik för att analysera begynnande MTs specifikt. Detta åstadkoms genom att fånga de novo tillväxt egenskaperna för MTs över tid, efter mikrotubulära depolymerization med den drog-nocodazole och en återhämtningsperiod efter drogen blekt. Denna teknik ännu inte har tillämpats till studien av MTs hos zebrafiskar embryon, men är en värdefull analys för att undersöka funktionen i vivo av proteiner inblandade i mikrotubuli församling.

Introduction

Mikrotubuli (MTs) är polymerer av α – och β-tubulin att monterar in linjär protofilaments, varav flera kombineras för att bilda ett ihåligt rör1,2. MTs är polariserade strukturer, med snabbväxande plus ändar och långsamt växande minus ändar som är förankrade på centrosome eller andra mikrotubulära-organisera center (MTOC)3. De novo MT bildandet initieras av kärnbildning på γ-tubulin ring komplexa (γ-TURC), vilket ger en mall för MT församling4. I någon cell, i kan två populationer av MTs skiljas det vänden över i olika takt. Dynamiska MTs utforska deras cellulära miljön genom att växla mellan faser av tillväxt och krympning i en process som kallas dynamisk instabilitet5. Till skillnad från dynamiska MTs, stabil MTs är icke växande och har en längre halveringstid än dynamisk MTs6.

Decennier av forskning i cellbiologi har tillhandahållit ett sofistikerat utbud av verktyg att studera MT struktur och funktion och resulterade i en stor kropp av kunskap om dessa cytoskeletal element. Till exempel, MTs spela en central roll i upprättande och underhåll av cell polaritet, som beror inte bara på deras inneboende polaritet, men också till differential subcellulär fördelningen av stabil kontra dynamiska MTs7, 8. däremot långt mindre förstås om MT arkitektur och funktion i mer komplex tredimensionell (3-D) miljöer, såsom ryggradsdjur embryot, delvis på grund av utmaningen som imaging MT cytoskelettet med hög upplösning. Trots denna begränsning, den senaste generationen av GFP-uttryckande transgena linjer etiketten MTs eller övergående uttryck för fluorescently-taggade MT markörer har ökat vår förståelse av de dynamiska förändringar som MTs genomgå och deras mobilnät och utvecklande roll i zebrafiskar embryot. Hela MT nätverket kan avbildas i transgena linjerna i vilken tubulin är antingen direkt märkt9 eller tubulin polymerer märks indirekt genom att använda MT-associerade proteiner Doublecortin-liknande-Kinas (Dclk) eller Ensconsin (EMTB)10, 11. Andra linjer (och konstruktioner) har genererats som möjliggör bedömning av MT inneboende polaritet av specifikt märkning MT plus ändar eller centrosome-förankrade minus slutar11,12,13, 14. kraften i dessa verktyg ligger i förmågan att studera MT dynamik i live, utveckla organismer. Sådana studier visat, till exempel fysisk och dynamisk distribution av MTs i viss cellpopulationer, orienteringen av mitotiska spindlar i vävnader genomgår morfogenes (en indikator på planet av celldelning), polariteten av MT polymeren När det gäller processer såsom cell töjning och migration, och MT tillväxttakt bestäms av komet hastighet9,13,15. Begränsning av dessa verktyg är att de inte lätt diskriminera mellan stabila och dynamiska MT populationer.

Teckning från rika cellbiologi litteratur, beskrivs immunolabeling metoder att bilden stabil och dynamisk MTs i zebrafiskar embryot här, som är ett komplement till användningen av transgena linjerna. Den utbredda användningen av sådana immunolabeling metoder i zebrafisk har hämmats något av svårigheten att bevara MT under förfarandet för fixering. Protokoll 1 beskriver en optimerad metod för immunolabeling totalt, dynamisk, och stabil MTs i tvärsnitt av utveckla zebrafisk bakhjärnan. Dessutom beskrivs en enkel metod som använder kommersiellt tillgänglig programvara för att kvantifiera dessa MT populationer. Stabil MTs särskiljs från dynamiska MTs baserat på flera post-translationella modifieringar av α-tubulin, såsom acetylering och detyrosination, som ackumuleras på stabil MTs över tid16,17. I zebrafiskar embryot uppstår acetylering på strålkroppen och axonal MTs men inte på stabil interphase MTs18, begränsa användbarheten av denna markör till en delmängd av stabiliserad MTs. Däremot verkar detyrosination förekomma på alla stabila MTs i zebrafiskar embryo18. Denna post-translationella modifieringen exponerar karboxi-terminal glutaminsyra α-tubulin (detyrosinated tubulin)18 och kan upptäckas med hjälp av anti-Glu-tubulin19. Även detyrosination förekommer företrädesvis på stabil MTs, indikerar experimentella bevis att denna post-translationella modifieringen är ett resultat av, snarare än en orsak till, MT stabilitet16. Ömsesidiga MT befolkningen består av dynamiska MTs, utmärks med en antikropp, anti-Tyr-tubulin, som uttryckligen erkänner den tyrosinated formen av α-tubulin19. Efter immunolabeling med dessa markörer och confocal imaging, kvantitativ analys av MTs (längd, antal och relativa överflöd) kan utföras i definierade regioner i utvecklingsländerna neuralrörsdefekter. En strömlinjeformad metod finns här för att utföra denna analys med hjälp av 3D-bildbehandling programvara. Denna metod kan tillämpas för att hantera frågor om morfogenes och inrättande eller mognaden av cell polaritet20. Faktiskt, utarbetandet av polariserade matriser av stabil MTs medföljer många utvecklande händelser, inklusive ljusmätare morfogenes21, epithelialization av celler i utvecklingsländer neuralrörsdefekter18 och axon bildandet8.

Protokoll 2 beskriver en in-vivo -anpassning av en cellbiologi analysen att analysera MTs under deras församlingen fas (kärnbildning/anchorage och tillväxt)22,23. Begynnande MTs är nucleated på centrosome och därefter förankrade subdistal bihang av mor centriol23. En metod att analysera begynnande MT återväxt efter depolymerization beskrivs. Detta protokoll ger detaljer om nocodazole behandling till depolymerize MTs, förfarandet drog blekt och efterbehandling återhämtningsperioden. MT re-tillväxt övervakas vid regelbundna intervalls post bortspolning av immunolabeling med markörer för totala MTs (anti β-tubulin) tillsammans med markörer för centrosome (anti γ-tubulin) och nucleus (4′, 6-diamidin-2-fenylindol (DAPI)), enligt de allmänna förfarandena beskrivs i protokoll 1. MT depolymerization steget i detta protokoll är viktigt eftersom det gör bedömning av de novo MT tillväxt snarare förlängning av redan existerande MTs. Denna teknik skiljer sig därför från andra offentliggjorda förfaranden att mäta MT tillväxttakter (i frånvaro av depolymerization) med hjälp av en plus spets märkaren såsom slutet bindande protein 3 smält till grönt fluorescerande protein (EB3-GFP), som visas i Tran et al., 201211. Dessutom denna analys är särskilt användbart för att analysera embryon defekt i de novo MT församling, såsom tidigare rapporterade NEDD1 mutanter som rekrytering av γ-tubulin till centrosome är nedsatt, vilket leder till ofullständig neuralrörsdefekter bildandet och neuronala defekter24.

Protocol

etik uttalande: förfaranden som beskrivs nedan Följ University of Maryland Baltimore County djurvård riktlinjer. 1. analys av stabila och dynamiska MTs använder Immunolabeling (protokoll 1) manuell dechorionation av embryon före fixering Erhåll lekt färska embryon genom att hälla bort överflödigt system vatten och sedan samla återstående embryon till en plast petriskål (se Tabell för material). Ta bort eventuellt sk…

Representative Results

Analys av stabila och dynamiska MTs med immunolabelingI protokoll nr 1avslöjas fördelningen av MT delpopulationer under tidig (neurala kölen) och sena (neurala stav) utvecklingsstadier neuralrörsdefekter, med Glu-tubulin och Tyr-tubulin som markörer för stabila och dynamiska MTs, respektive. Dynamiska MTs dominerar i hindbrain skede neurala kölen (4-5 thoraxsegmenten) (figur 2A-D). Som kölen utvec…

Discussion

För närvarande finns det många metoder för imaging MT dynamics i tidiga zebrafiskar utveckling, alltifrån live avbildning av märkta molekyler till immunolabeling av fast vävnad11,12,13,14. Även om MTs i en enda cell kan existera i en dynamisk eller stabil stater, är epithelialization en process där MTs successivt stabiliseras med tiden. Använda markörer för stabila och dynamiska MT…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Mikroskopet confocal köptes med medel från den amerikanska National Science Foundation (NSF), grant #DBI-0722569. Forskningen har med stöd av den amerikanska nationella institut för hälsa och nationella institutet av allmänna medicinska vetenskaper (NIH/NIGMS) grant #GM085290 och U.S. avdelning av försvar (DOD) grant #W81XWH-16-1-0466 tilldelas R.M. Brewster. E. Vital stöddes av ett bidrag till UMBC från Howard Hughes Medical Institute genom före college och Grundutbildning Science Education Program, bevilja #52008090. S.P. Brown stöddes av en amerikanska Institutionen för utbildning GAANN gemenskap, en Meyerhoff Graduate Fellowship finansieras av NIH/NIGMS bidrag #GM055036 och en forskning Assistantship finansieras av US DOD grant #W81XWH-16-1-0466.

Materials

Low Melting Point Agarose IBI scientific IB70050 Only used for embedding.

Prepare 4% LMP agarose
by heating a solution of  4 grams LMP agarose per 100 ml 1X TBS in a microwave
until polymerized. Keep warm on a 50 ˚C hot plate with the cap secured
Agarose Used to treat petridishes.   Prepare 1% agarose
by heating a solution of  1 gram agarose per 100 ml 1X embryo medium in a microwave
until polymerized. 
Nocodazole Sigma 487928-10MG Make stock by dissolving entire bottle of powder in distilled water and aliquoting into 500ul aliquots.  Store at -20 ˚C.
8% Formaldehyde Electron Microscopy Sciences 157-8-100 Aliquot and store at -20 ˚C.
Kpipes Sigma P7643
NaCl Sigma S7653
Tris-HCl Sigma T3253-500G
KCl Sigma P9333-500G
CaCl2·2H2O Sigma C5080
NP-40 American Bioanalyticals AB01424
EGTA Sigma E3889-25G
MgCl2 Sigma M2670-500G
Normal Goat Serum Millipore S26-100ml Aliquot and store at -20 ˚C.
Bovine serum albumin (BSA) Fisher BP1605
Triton-x American Bioanalyticals AB02025
Pronase E (non-specific Protease from Streptomyces griseus) Sigma P5147-1G make stock solution by diluting 10mg per ml of ddH2O. Aliquot in 1ml aliquots and store at -20 ˚C.
Anti-Fade mounting medium Invitrogen P10144
DAPI Invitrogen D1306 Prepare 50 ml DAPI solution by first combining 1 µl DAPI stock  with 1 ml sterile water and then adding the DAPI/water mix to 49 ml 1X TBS; store in foil at 4 ˚C for months.
Mouse anti-β-tubulin Developmental studies Hybridoma Bank E7 1/200
Rabbit anti-γ-tubulin Genetex GTX113286 1/500
Rabbit anti-α-tubulin Genetex GTX108784 1/1000*
Rabbit anti-detyrosinated-tubulin Millipore AB3201 1/200-1/1000*  Titrate antibody with first use of new lot.
Rabbit anti-tyrosinated-tubulin Millipore ABT171 1/500
Mouse anti-centrin Millipore 04-1624 1/1000
Goat 488 anti-rabbit Thermofisher A11008 1/500
Goat 594 anti-rabbit Thermofisher A11012 1/500
Goat 594 anti-mouse Thermofisher A11005 1/500
Goat 488 anti-mouse Thermofisher A11001 1/500
Vibratome Vibratome 1500
Forceps World Precision Instruments 555227F
100 mm petri dish Cell treat 229693
35 mm petri dish Cell treat 229638
50 ml falcon tube Fisher 14-432-22
Woven nylon mesh 70 um Amazon.com B0043D1SZG 
Micropipette Gilson F123602
Glass pipette Fisher NC-999363-9
Aquarium sealant Amazon.com, by MarineLand Silicone Sealer 1 oz (Tube) 
Ring stand Fisher 14-675BO
Microbore PTFE Tubing, 0.022"ID Cole-Parmer WU-06417-21
Modeling clay Amazon.com Sargent Art 22-4000 Any wax or oil based non-toxic modeling clay will suffice
Clamp Fisher 02-215-466
60ml syringe Fisher 14-820-11
Embryo medium (E3) 34.8 g NaCl
1.6 g KCl
5.8 g CaCl2·2H2O
9.78 g MgCl2·6H2O

To prepare a 60X stock, dissolve the ingredients in H2O, to a final volume of 2 L. Adjust the pH to 7.2 with NaOH. Autoclave. To prepare 1X medium, dilute 16.5 mL of the 60X stock to 1 L. 
Blocking Solution 50 ml TBS-NP-40
2.5 ml normal goat serum
1 g BSA
625 µl Triton-X
TBS-NP-40 (pH 7.6) 155 mM NaCl
10 mM Tris HCl
0.1% NP-40
2x MAB (pH6.4) 160 mM KPIPES
10 mM EGTA
2 mM MgCl2
Commercial 3-D Image processing Software PerkinElmer Volocity (V 6.2)
Dry block heater  VWR 12621-108 Used as a hot plate to melt agarose in Protocol 1.
Dissecting Microscope Leica MZ12
Confocal Microscope Leica SP5
Flat embedding mold emsdiasum.com BEEM 70904-01
Public domain image processing software NIH ImageJ (V 1.5)
* Success varies by lot number

Referências

  1. Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Tracking the ends: a dynamic protein network controls the fate of microtubule tips. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (4), 309-322 (2008).
  2. Conde, C., Cáceres, A. Microtubule assembly, organization and dynamics in axons and dendrites. Nat Rev Neurosci. 10 (5), 319-332 (2009).
  3. Kaverina, I., Straube, A. Regulation of cell migration by dynamic microtubules. Semin Cell Dev Biol. 22 (9), 968-974 (2011).
  4. Kollman, J. M., Merdes, A., Mourey, L., Agard, D. A. Microtubule nucleation by γ-tubulin complexes. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (11), 709-721 (2011).
  5. Howard, J., Hyman, A. A. Growth, fluctuation and switching at microtubule plus ends. Nat Rev Mol Cell Biol. 10 (8), 569-574 (2009).
  6. Schulze, E., Kirschner, M. Dynamic and stable populations of microtubules in cells. J Cell Biol. 104 (2), 277-288 (1987).
  7. Gundersen, G. G., Kalnoski, M. H., Bulinski, J. C. Distinct populations of microtubules: Tyrosinated and nontyrosinated alpha tubulin are distributed differently in vivo. Cell. 38 (3), 779-789 (1984).
  8. Li, R., Gundersen, G. G. Beyond polymer polarity: how the cytoskeleton builds a polarized cell. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (11), 860-873 (2008).
  9. Asakawa, K., Kawakami, K. A transgenic zebrafish for monitoring in vivo microtubule structures. Dev Dyn Off Publ Am Assoc Anat. 239 (10), 2695-2699 (2010).
  10. Wühr, M., Tan, E. S., Parker, S. K., Detrich, H. W., Mitchison, T. J. A model for cleavage plane determination in early amphibian and fish embryos. Curr Biol CB. 20 (22), 2040-2045 (2010).
  11. Tran, L. D., Hino, H., et al. Dynamic microtubules at the vegetal cortex predict the embryonic axis in zebrafish. Development. 139 (19), 3644-3652 (2012).
  12. Butler, R., Wood, J. D., Landers, J. A., Cunliffe, V. T. Genetic and chemical modulation of spastin-dependent axon outgrowth in zebrafish embryos indicates a role for impaired microtubule dynamics in hereditary spastic paraplegia. Dis Model Mech. 3 (11-12), 743-751 (2010).
  13. Yoo, S. K., Lam, P. -. Y., Eichelberg, M. R., Zasadil, L., Bement, W. M., Huttenlocher, A. The role of microtubules in neutrophil polarity and migration in live zebrafish. J Cell Sci. 125 (23), 5702-5710 (2012).
  14. Andersen, E. F., Halloran, M. C. Centrosome movements in vivo correlate with specific neurite formation downstream of LIM homeodomain transcription factor activity. Development. 139 (19), 3590-3599 (2012).
  15. Lee, S. -. J. Dynamic regulation of the microtubule and actin cytoskeleton in zebrafish epiboly. Biochem Biophys Res Commun. 452 (1), 1-7 (2014).
  16. Bulinski, J. C., Gundersen, G. G. Stabilization and post-translational modification of microtubules during cellular morphogenesis. BioEssays. 13 (6), 285-293 (1991).
  17. Magiera, M. M., Janke, C. Chapter 16 – Investigating Tubulin Posttranslational Modifications with Specific Antibodies. Methods Cell Biol. 115, 247-267 (2013).
  18. Hong, E., Jayachandran, P., Brewster, R. The polarity protein Pard3 is required for centrosome positioning during neurulation. Dev Biol. 341 (2), 335-345 (2010).
  19. Westermann, S., Weber, K. Post-translational modifications regulate microtubule function. Nat Rev Mol Cell Biol. 4 (12), 938-948 (2003).
  20. Jayachandran, P., Olmo, V. N., et al. Microtubule-associated protein 1b is required for shaping the neural tube. Neural Develop. 11, 1 (2016).
  21. Nam, S. -. C. Role of Tau, a microtubule associated protein, in Drosophila photoreceptor morphogenesis. Genes N Y N 2000. 54 (11), 553-561 (2016).
  22. Abal, M., Piel, M., Bouckson-Castaing, V., Mogensen, M., Sibarita, J. -. B., Bornens, M. Microtubule release from the centrosome in migrating cells. J Cell Biol. 159 (5), 731-737 (2002).
  23. Delgehyr, N., Sillibourne, J., Bornens, M. Microtubule nucleation and anchoring at the centrosome are independent processes linked by ninein function. J Cell Sci. 118 (8), 1565-1575 (2005).
  24. Manning, J. A., Lewis, M., Koblar, S. A., Kumar, S. An essential function for the centrosomal protein NEDD1 in zebrafish development. Cell Death Differ. 17 (8), 1302-1314 (2010).
  25. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn Off Publ Am Assoc Anat. 203 (3), 253-310 (1995).
  26. Beck, A. P., Watt, R. M., Bonner, J. Dissection and Lateral Mounting of Zebrafish Embryos: Analysis of Spinal Cord Development. JoVE J Vis Exp. (84), e50703 (2014).
  27. FÖldes-Papp, Z., Demel, U., Tilz, G. P. Laser scanning confocal fluorescence microscopy: an overview. Int Immunopharmacol. 3 (13-14), 1715-1729 (2003).
  28. . ImageJ User Guide – IJ 1.46 Available from: https://imagej.nih.gov/ij/docs/guide/ (2010)
  29. . Z-functions – ImageJ Available from: https://imagej.net/Z-functions (2017)
check_url/pt/55792?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
McFarland, R. J., Brown, S. P., Vital, E., Werner, J. M., Brewster, R. M. Use of Immunolabeling to Analyze Stable, Dynamic, and Nascent Microtubules in the Zebrafish Embryo. J. Vis. Exp. (127), e55792, doi:10.3791/55792 (2017).

View Video