Immunolabeling metoder för att analysera distinkta populationer av mikrotubuli i hjärnans utveckling zebrafiskar beskrivs här, som är allmänt tillämpliga på andra vävnader. Det första protokollet beskriver en optimerad metod för immunolabeling stabil och dynamisk mikrotubuli. Det andra protokollet ger en metod för att bild och kvantifiera begynnande mikrotubuli specifikt.
Mikrotubuli (MTs) är dynamisk och sköra strukturer som är utmanande att bilden i vivo, särskilt i ryggradsdjur embryon. Här presenteras Immunolabeling metoder för att analysera distinkta populationer av MTs i utvecklingsländer neuralrörsdefekter zebrafiskar embryot. Medan fokus ligger på nervvävnad, är denna metod allmänt tillämplig på andra vävnader. Förfarandena är optimerade för tidigt till mitten av-somitogenesis-stegs embryon (1 somite till 12 thoraxsegmenten), men de kan anpassas till en rad andra stadier med relativt små justeringar. Det första protokollet ger en metod för att bedöma rumslig distribution av stabila och dynamiska MTs och utföra en kvantitativ analys av dessa populationer med bildbehandling programvara. Detta synsätt kompletterar befintliga verktyg bild mikrotubulära dynamics och distribution i realtid, med transgena linjerna eller övergående uttryck märkta konstruktioner. Sådana verktyg är verkligen mycket användbara, men de inte skiljer lätt mellan dynamisk och stabil MTs. Förmågan att bild och analysera dessa distinkta mikrotubulära populationer har viktiga konsekvenser för förstå mekanismerna bakom cell polarisering och morfogenes. Det andra protokollet beskriver en teknik för att analysera begynnande MTs specifikt. Detta åstadkoms genom att fånga de novo tillväxt egenskaperna för MTs över tid, efter mikrotubulära depolymerization med den drog-nocodazole och en återhämtningsperiod efter drogen blekt. Denna teknik ännu inte har tillämpats till studien av MTs hos zebrafiskar embryon, men är en värdefull analys för att undersöka funktionen i vivo av proteiner inblandade i mikrotubuli församling.
Mikrotubuli (MTs) är polymerer av α – och β-tubulin att monterar in linjär protofilaments, varav flera kombineras för att bilda ett ihåligt rör1,2. MTs är polariserade strukturer, med snabbväxande plus ändar och långsamt växande minus ändar som är förankrade på centrosome eller andra mikrotubulära-organisera center (MTOC)3. De novo MT bildandet initieras av kärnbildning på γ-tubulin ring komplexa (γ-TURC), vilket ger en mall för MT församling4. I någon cell, i kan två populationer av MTs skiljas det vänden över i olika takt. Dynamiska MTs utforska deras cellulära miljön genom att växla mellan faser av tillväxt och krympning i en process som kallas dynamisk instabilitet5. Till skillnad från dynamiska MTs, stabil MTs är icke växande och har en längre halveringstid än dynamisk MTs6.
Decennier av forskning i cellbiologi har tillhandahållit ett sofistikerat utbud av verktyg att studera MT struktur och funktion och resulterade i en stor kropp av kunskap om dessa cytoskeletal element. Till exempel, MTs spela en central roll i upprättande och underhåll av cell polaritet, som beror inte bara på deras inneboende polaritet, men också till differential subcellulär fördelningen av stabil kontra dynamiska MTs7, 8. däremot långt mindre förstås om MT arkitektur och funktion i mer komplex tredimensionell (3-D) miljöer, såsom ryggradsdjur embryot, delvis på grund av utmaningen som imaging MT cytoskelettet med hög upplösning. Trots denna begränsning, den senaste generationen av GFP-uttryckande transgena linjer etiketten MTs eller övergående uttryck för fluorescently-taggade MT markörer har ökat vår förståelse av de dynamiska förändringar som MTs genomgå och deras mobilnät och utvecklande roll i zebrafiskar embryot. Hela MT nätverket kan avbildas i transgena linjerna i vilken tubulin är antingen direkt märkt9 eller tubulin polymerer märks indirekt genom att använda MT-associerade proteiner Doublecortin-liknande-Kinas (Dclk) eller Ensconsin (EMTB)10, 11. Andra linjer (och konstruktioner) har genererats som möjliggör bedömning av MT inneboende polaritet av specifikt märkning MT plus ändar eller centrosome-förankrade minus slutar11,12,13, 14. kraften i dessa verktyg ligger i förmågan att studera MT dynamik i live, utveckla organismer. Sådana studier visat, till exempel fysisk och dynamisk distribution av MTs i viss cellpopulationer, orienteringen av mitotiska spindlar i vävnader genomgår morfogenes (en indikator på planet av celldelning), polariteten av MT polymeren När det gäller processer såsom cell töjning och migration, och MT tillväxttakt bestäms av komet hastighet9,13,15. Begränsning av dessa verktyg är att de inte lätt diskriminera mellan stabila och dynamiska MT populationer.
Teckning från rika cellbiologi litteratur, beskrivs immunolabeling metoder att bilden stabil och dynamisk MTs i zebrafiskar embryot här, som är ett komplement till användningen av transgena linjerna. Den utbredda användningen av sådana immunolabeling metoder i zebrafisk har hämmats något av svårigheten att bevara MT under förfarandet för fixering. Protokoll 1 beskriver en optimerad metod för immunolabeling totalt, dynamisk, och stabil MTs i tvärsnitt av utveckla zebrafisk bakhjärnan. Dessutom beskrivs en enkel metod som använder kommersiellt tillgänglig programvara för att kvantifiera dessa MT populationer. Stabil MTs särskiljs från dynamiska MTs baserat på flera post-translationella modifieringar av α-tubulin, såsom acetylering och detyrosination, som ackumuleras på stabil MTs över tid16,17. I zebrafiskar embryot uppstår acetylering på strålkroppen och axonal MTs men inte på stabil interphase MTs18, begränsa användbarheten av denna markör till en delmängd av stabiliserad MTs. Däremot verkar detyrosination förekomma på alla stabila MTs i zebrafiskar embryo18. Denna post-translationella modifieringen exponerar karboxi-terminal glutaminsyra α-tubulin (detyrosinated tubulin)18 och kan upptäckas med hjälp av anti-Glu-tubulin19. Även detyrosination förekommer företrädesvis på stabil MTs, indikerar experimentella bevis att denna post-translationella modifieringen är ett resultat av, snarare än en orsak till, MT stabilitet16. Ömsesidiga MT befolkningen består av dynamiska MTs, utmärks med en antikropp, anti-Tyr-tubulin, som uttryckligen erkänner den tyrosinated formen av α-tubulin19. Efter immunolabeling med dessa markörer och confocal imaging, kvantitativ analys av MTs (längd, antal och relativa överflöd) kan utföras i definierade regioner i utvecklingsländerna neuralrörsdefekter. En strömlinjeformad metod finns här för att utföra denna analys med hjälp av 3D-bildbehandling programvara. Denna metod kan tillämpas för att hantera frågor om morfogenes och inrättande eller mognaden av cell polaritet20. Faktiskt, utarbetandet av polariserade matriser av stabil MTs medföljer många utvecklande händelser, inklusive ljusmätare morfogenes21, epithelialization av celler i utvecklingsländer neuralrörsdefekter18 och axon bildandet8.
Protokoll 2 beskriver en in-vivo -anpassning av en cellbiologi analysen att analysera MTs under deras församlingen fas (kärnbildning/anchorage och tillväxt)22,23. Begynnande MTs är nucleated på centrosome och därefter förankrade subdistal bihang av mor centriol23. En metod att analysera begynnande MT återväxt efter depolymerization beskrivs. Detta protokoll ger detaljer om nocodazole behandling till depolymerize MTs, förfarandet drog blekt och efterbehandling återhämtningsperioden. MT re-tillväxt övervakas vid regelbundna intervalls post bortspolning av immunolabeling med markörer för totala MTs (anti β-tubulin) tillsammans med markörer för centrosome (anti γ-tubulin) och nucleus (4′, 6-diamidin-2-fenylindol (DAPI)), enligt de allmänna förfarandena beskrivs i protokoll 1. MT depolymerization steget i detta protokoll är viktigt eftersom det gör bedömning av de novo MT tillväxt snarare förlängning av redan existerande MTs. Denna teknik skiljer sig därför från andra offentliggjorda förfaranden att mäta MT tillväxttakter (i frånvaro av depolymerization) med hjälp av en plus spets märkaren såsom slutet bindande protein 3 smält till grönt fluorescerande protein (EB3-GFP), som visas i Tran et al., 201211. Dessutom denna analys är särskilt användbart för att analysera embryon defekt i de novo MT församling, såsom tidigare rapporterade NEDD1 mutanter som rekrytering av γ-tubulin till centrosome är nedsatt, vilket leder till ofullständig neuralrörsdefekter bildandet och neuronala defekter24.
För närvarande finns det många metoder för imaging MT dynamics i tidiga zebrafiskar utveckling, alltifrån live avbildning av märkta molekyler till immunolabeling av fast vävnad11,12,13,14. Även om MTs i en enda cell kan existera i en dynamisk eller stabil stater, är epithelialization en process där MTs successivt stabiliseras med tiden. Använda markörer för stabila och dynamiska MT…
The authors have nothing to disclose.
Mikroskopet confocal köptes med medel från den amerikanska National Science Foundation (NSF), grant #DBI-0722569. Forskningen har med stöd av den amerikanska nationella institut för hälsa och nationella institutet av allmänna medicinska vetenskaper (NIH/NIGMS) grant #GM085290 och U.S. avdelning av försvar (DOD) grant #W81XWH-16-1-0466 tilldelas R.M. Brewster. E. Vital stöddes av ett bidrag till UMBC från Howard Hughes Medical Institute genom före college och Grundutbildning Science Education Program, bevilja #52008090. S.P. Brown stöddes av en amerikanska Institutionen för utbildning GAANN gemenskap, en Meyerhoff Graduate Fellowship finansieras av NIH/NIGMS bidrag #GM055036 och en forskning Assistantship finansieras av US DOD grant #W81XWH-16-1-0466.
Low Melting Point Agarose | IBI scientific | IB70050 | Only used for embedding. Prepare 4% LMP agarose by heating a solution of 4 grams LMP agarose per 100 ml 1X TBS in a microwave until polymerized. Keep warm on a 50 ˚C hot plate with the cap secured |
Agarose | Used to treat petridishes. Prepare 1% agarose by heating a solution of 1 gram agarose per 100 ml 1X embryo medium in a microwave until polymerized. |
||
Nocodazole | Sigma | 487928-10MG | Make stock by dissolving entire bottle of powder in distilled water and aliquoting into 500ul aliquots. Store at -20 ˚C. |
8% Formaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 157-8-100 | Aliquot and store at -20 ˚C. |
Kpipes | Sigma | P7643 | |
NaCl | Sigma | S7653 | |
Tris-HCl | Sigma | T3253-500G | |
KCl | Sigma | P9333-500G | |
CaCl2·2H2O | Sigma | C5080 | |
NP-40 | American Bioanalyticals | AB01424 | |
EGTA | Sigma | E3889-25G | |
MgCl2 | Sigma | M2670-500G | |
Normal Goat Serum | Millipore | S26-100ml | Aliquot and store at -20 ˚C. |
Bovine serum albumin (BSA) | Fisher | BP1605 | |
Triton-x | American Bioanalyticals | AB02025 | |
Pronase E (non-specific Protease from Streptomyces griseus) | Sigma | P5147-1G | make stock solution by diluting 10mg per ml of ddH2O. Aliquot in 1ml aliquots and store at -20 ˚C. |
Anti-Fade mounting medium | Invitrogen | P10144 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | Prepare 50 ml DAPI solution by first combining 1 µl DAPI stock with 1 ml sterile water and then adding the DAPI/water mix to 49 ml 1X TBS; store in foil at 4 ˚C for months. |
Mouse anti-β-tubulin | Developmental studies Hybridoma Bank | E7 | 1/200 |
Rabbit anti-γ-tubulin | Genetex | GTX113286 | 1/500 |
Rabbit anti-α-tubulin | Genetex | GTX108784 | 1/1000* |
Rabbit anti-detyrosinated-tubulin | Millipore | AB3201 | 1/200-1/1000* Titrate antibody with first use of new lot. |
Rabbit anti-tyrosinated-tubulin | Millipore | ABT171 | 1/500 |
Mouse anti-centrin | Millipore | 04-1624 | 1/1000 |
Goat 488 anti-rabbit | Thermofisher | A11008 | 1/500 |
Goat 594 anti-rabbit | Thermofisher | A11012 | 1/500 |
Goat 594 anti-mouse | Thermofisher | A11005 | 1/500 |
Goat 488 anti-mouse | Thermofisher | A11001 | 1/500 |
Vibratome | Vibratome | 1500 | |
Forceps | World Precision Instruments | 555227F | |
100 mm petri dish | Cell treat | 229693 | |
35 mm petri dish | Cell treat | 229638 | |
50 ml falcon tube | Fisher | 14-432-22 | |
Woven nylon mesh 70 um | Amazon.com | B0043D1SZG | |
Micropipette | Gilson | F123602 | |
Glass pipette | Fisher | NC-999363-9 | |
Aquarium sealant | Amazon.com, by MarineLand | Silicone Sealer 1 oz (Tube) | |
Ring stand | Fisher | 14-675BO | |
Microbore PTFE Tubing, 0.022"ID | Cole-Parmer | WU-06417-21 | |
Modeling clay | Amazon.com | Sargent Art 22-4000 | Any wax or oil based non-toxic modeling clay will suffice |
Clamp | Fisher | 02-215-466 | |
60ml syringe | Fisher | 14-820-11 | |
Embryo medium (E3) | 34.8 g NaCl 1.6 g KCl 5.8 g CaCl2·2H2O 9.78 g MgCl2·6H2O To prepare a 60X stock, dissolve the ingredients in H2O, to a final volume of 2 L. Adjust the pH to 7.2 with NaOH. Autoclave. To prepare 1X medium, dilute 16.5 mL of the 60X stock to 1 L. |
||
Blocking Solution | 50 ml TBS-NP-40 2.5 ml normal goat serum 1 g BSA 625 µl Triton-X |
||
TBS-NP-40 (pH 7.6) | 155 mM NaCl 10 mM Tris HCl 0.1% NP-40 |
||
2x MAB (pH6.4) | 160 mM KPIPES 10 mM EGTA 2 mM MgCl2 |
||
Commercial 3-D Image processing Software | PerkinElmer | Volocity (V 6.2) | |
Dry block heater | VWR | 12621-108 | Used as a hot plate to melt agarose in Protocol 1. |
Dissecting Microscope | Leica | MZ12 | |
Confocal Microscope | Leica | SP5 | |
Flat embedding mold | emsdiasum.com | BEEM 70904-01 | |
Public domain image processing software | NIH | ImageJ (V 1.5) | |
* Success varies by lot number |