Le proteine contengono spesso più domini che possono esercitare diverse funzioni cellulari. Gene knock-out (KO) non considerano questa diversità funzionale. Qui riportiamo un cambio cassette ricombinazione mediata (RMCE) approccio basato lo struttura-funzione in cellule staminali embrionali KO che consente la dissezione molecolare dei vari domini funzionali o varianti di una proteina.
ingegneria gene in embrioni di topo o cellule staminali embrionali (mESCs) permette per lo studio della funzione di una data proteina. Le proteine sono i cavalli della cellula e spesso costituiti da più domini funzionali, che possono essere influenzate da modificazioni post-traduzionali. La riduzione dello intera proteina in condizionale o costitutiva knock-out (KO) topi non tiene conto di questa diversità funzionale e regolazione. Una linea Mesc e un modello di topo derivato, in cui è stato inserito un sito di attracco per FLPE scambio cassette ricombinazione mediata (RMCE) all'interno del locus ROSA26 (R26), è stato riportato in precedenza. Qui riportiamo un approccio struttura-funzione che permette di dissezione molecolare delle diverse funzionalità di una proteina multidominio. A tal fine, i topi RMCE-compatibili devono essere incrociati con topi KO e mESCs KO quindi compatibili con RMCE devono essere isolati. Successivamente, un gruppo di costrutti di soccorso putativi può essere introdotto nel locus R26 via RMCE targeting. I cDNA di soccorso candidati possono essere facilmente inseriti tra i siti RMCE del vettore targeting utilizzando la ricombinazione clonazione. Successivamente, mESCs KO sono transfettate con il vettore targeting in combinazione con un'espressione ricombinasi plasmide FLPE. RMCE riattiva il gene neomicina-resistenza promotore-meno negli attracco siti ROSA26 e consente la selezione della manifestazione di targeting corretto. In questo modo, l'efficienza elevata di targeting vicino al 100% si ottengono, consentendo l'inserimento di diversi costrutti salvataggio putativi in modo semi-alta produttività. Infine, un gran numero di costrutti di soccorso R26-driven possono essere testati per la loro capacità di salvare il fenotipo che è stato osservato in parentali mESCs KO. Presentiamo uno studio struttura-funzione a prova di principio in p120 catenina (p120ctn) mESCs KO utilizzando differenziazione endoderma in corpi embrionali (EBS) come la lettura fenotipica. Questo approccio consente l'identificazione di domini importanti vie a valle putativi, e punto malattie rilevantimutazioni che sono alla base fenotipi KO per una data proteina.
Si stima che i genomi dei mammiferi contengono circa 20.000 geni codificanti proteine. Lo splicing alternativo e modificazioni post-aumentare ulteriormente il repertorio di proteine. Proteine hanno una struttura modulare 1 e spesso contengono più domini di interazione, che permettono la loro assunzione in diversi complessi proteici e la loro partecipazione molteplici processi cellulari 2. Un esempio è la proteina multi-funzionale chiamato p120ctn. p120ctn è codificata dal gene Ctnnd1 e consiste in una grande dominio centrale armadillo ripetizione affiancato da un N-terminale ed una regione C-terminale. Il dominio di armadillo p120ctn lega ad un dominio juxtamembrana altamente conservata caderine classiche, che sono coinvolti nella adesione cellula-cellula, ma si lega anche al repressore trascrizionale Kaiso. Il dominio N-terminale di p120ctn interagisce con diverse chinasi, fosfatasi, piccoli RhoGTPases e associata ai microtubuli proteins 3. È interessante notare che, a seguito di splicing alternativo, isoforme p120ctn possono essere generati da quattro codoni di inizio alternativi 4. p120ctn isoforma 1A è la più lunga, come viene tradotto da più-5' codone di inizio e contiene il segmento N-terminale full-length. In p120ctn isoforme 3 e 4, questo segmento N-terminale è soppresso parzialmente e completamente, rispettivamente. Comprendere il ruolo preciso delle proteine (o isoforme della proteina) ed i loro domini in diverse funzioni cellulari rimane una sfida.
Gene targeting in mESCs consente lo studio della funzione di una proteina attraverso la delezione genetica del gene corrispondente ed ha ampiamente contribuito alla identificazione di evolutivamente importanti e malattie rilevanti geni e vie. Questo importante passo avanti nel campo della genetica inversa è il risultato di progressi nel campo di isolamento Mesc e gene targeting grazie alla ricombinazione omologa 5 </sup>. ricombinazione omologa è un processo in cui vengono scambiati frammenti di DNA tra due porzioni nucleici simili o identici dopo doppio stranded (ds) DNA si rompe. Normalmente, HR è inefficiente perché pause dsDNA sono frequenti. Recentemente, l'efficienza del gene omologia-diretto mira potrebbe essere aumentato utilizzando nucleasi site-specific 6, 7, ma purtroppo, questi sono inclini a effetti fuori bersaglio 8. Una tecnica più affidabile per abilitare gene targeting è RMCE, che si basa su sistemi di ricombinazione sito-specifica, come Cre / loxP o FLPE / Frt. LoxP e sequenza Frt si trovano in P1 batteriofago e Saccharomyces cerevisiae, rispettivamente, e consistono di 34 bp, compresa una sequenza bp asimmetrica 8 che determina l'orientamento del sito. D'altra parte, l'orientamento, ad esempio, due siti loxP all'interno di un tratto di DNA a stabilire se il DNA floxed viene escisso o inversed upon ricombinazione mediata da Cre 9. Inoltre, Cre può anche indurre una traslocazione se due siti si trovano su cromosomi diversi. RMCE sfrutta siti di ricombinazione heterospecific che non cross-reagiscono e che sono incorporati in un locus genomico. In presenza di un plasmide donatore che contiene un frammento di DNA fiancheggiata da siti stessi heterospecific, la ricombinasi inserirà questo frammento di DNA nel locus genomico RMCE compatibile causa della traslocazione doppio simultaneo (Figura 1). Qui, cloni correttamente solo RMCE targeting possono rendere farmacoresistenza grazie ad un promotore sul vettore entrante che restituisce una "trappola" promotore-minore resistenza neomicina gene (Neo R) presenti nel genoma R26 delle cellule di aggancio (figura 1) 10, 11. Questo si traduce in un rendimento di targeting molto alta, spesso vicino al 100% 11, </ sup> 12. In conclusione, il targeting RMCE-based è molto efficace e può essere utilizzato per studi struttura-funzioni; tuttavia, richiede un locus genomico pre-ingegnerizzato.
Figura 1. Schema del Targeting RMCE-mediata. RMCE permette lo scambio di segmenti di DNA da un vettore targeting in ingresso a un locus genomico definito se entrambi nutrono due siti FRT heterospecific (rappresentate da triangoli bianchi e rossi). Inoltre, il locus genomico ingegnerizzato contiene un promoterless e gene troncato resistenza alla neomicina (Neo R). Fornendo un promotore e codone di inizio nel frammento di DNA in entrata, eventi di ricombinazione solo corretti restauro resistenza neomicina, con conseguente elevate efficienze di targeting. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di tla sua figura.
ingegneria del genoma in mESCs consente la generazione di topi RMCE-compatibili. Nel 1981, due gruppi sono riusciti a catturare cellule pluripotenti dalla massa cellulare interna (ICM) di blastocisti e mantenendoli in coltura 13, 14. mESCs sono in grado di auto-rinnovamento e la differenziazione in tutti i tipi di cellule embrionali e adulte, tra cui il lignaggio cellule germinali. Pertanto, gene targeting in mESCs consente studi reverse-genetici attraverso lo sviluppo di topi costitutivi o condizionali (utilizzando il sistema / LoxP Cre) KO. Tuttavia, il modo classico per isolare cellule di topo ES è molto inefficiente. Diversi importanti miglioramenti hanno notevolmente aumentato il tasso di successo per derivare linee Mesc, compreso l'uso di un siero sostituzione definito (SR) medium 15, alternando mezzo Mesc contenente siero bovino fetale e SR (FBS) 16, e l'uso di farmacocomposti logici quali pluripotin o 2i 17. Pluripotin, una piccola molecola sintetica, consente la propagazione di mESCs in uno stato indifferenziato in assenza del fattore inibitorio della leucemia (LIF) e fibroblasti embrionali di topo (MEF) 18. Infine, è stato dimostrato che mESCs possono essere isolati con un'efficienza molto elevata (vicina al 100%) quando un / FBS protocollo mezzo alternanza SR è combinato con LIF e pluripotin 19, 20. Questi protocolli consentono l'isolamento efficace di mESCs KO RMCE compatibili che possono successivamente essere utilizzati per studi struttura-funzione.
Questo documento descrive un metodo che permette di identificare i settori chiave o residui all'interno di una proteina che sono responsabili per i processi cellulari specifici. A tal fine, una pipeline di tecnologie avanzate che permettono l'isolamento efficiente Mesc, mira assemblaggio vettoriale, e Mesc il targeting è stato creared. Come tali, i grandi pannelli con isoforme della proteina, i mutanti di dominio e effettori a valle possono essere introdotti in mESCs KO e possono essere valutati per la loro capacità di salvare la vitro KO fenotipo in.
Il nostro metodo di isolamento Mesc è user-friendly e non richiede competenze o attrezzature avanzate, come la microchirurgia della blastocisti. Così, questa tecnologia è accessibile a una larga parte della comunità scientifica. Chiunque abbia esperienza di base coltura cellulare può propagare escrescenze ICM e stabilire linee mESCs. Tuttavia, il lavaggio e la manipolazione di blastocisti richiede una certa pratica. Una pipetta bocca è usato per trasferire blastocisti e consiste di una micropipetta, un supporto mi…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Jinke D'Hont, Frederique Van Rockeghem, Natalie Farla, Kelly Lemeire, e Riet De Rycke per il loro eccellente supporto tecnico. Ringraziamo anche Eef Parthoens, Evelien Van Hamme e Amanda Goncalves dal Bioimmagini Nucleo strumento della infiammazione Centro di ricerca per la loro assistenza di esperti. Riconosciamo i membri del nostro gruppo di ricerca per le discussioni di valore. Questo lavoro è stato sostenuto dalla politica belga Science (Belspo Interuniversitario di attrazione Poli – Premio IAP VII-07 DevRepair; https://devrepair.be), dalla Fondazione Regina Elisabetta Medical, Belgio (GSKE 2008-2010; http: // www .fmre-gske.be), e dalle azioni concertate di ricerca (GOA) 01G01908 di Università di Gand, Belgio (http://www.ugent.be/en/ghentuniv). SG è un borsista postdottorato della Ricerca Fondi Fiandre (FWO-V).
ROSALUC Mice | made in house | frozen sperm available upon request | |
R26-iPSC mice | made in house | frozen sperm available upon request | |
Vessel probe | Fine Science Tools | 10160-13 | to check for copulation plugs |
M2 medium | Sigma-Aldrich | M7167 | make aliquots and store at -20°C |
Fine forceps (Dumont #5 Standard tip Student forceps) | Fine Science Tools | 11251-10 | spray with 70% EtOH before use (do not autoclave) |
23G needles | Fine-ject | 8697 | |
1-ml syringes | Soft-ject | 6680 | |
60-mm bacterial grade plates (for flushing) | Gosselin | BB60-01 | |
Mouth pipette | made in house | see discussion | |
Mouse embryonic fibroblasts (MEFs, TgN (DR4)1 Jae strain) | ATTC | SCRC-1045 | |
TgN (DR4)1 Jae mice | The Jackson Laboratory | 3208 | |
Mitomycin C | Sigma-Aldrich | M0503 | |
Phosphate buffered saline (PBS) without calcium or magnesium | Gibco | 14190-094 | |
Tg(DR4)1Jae/J mice | JAX | 3208 | mice that contain four drug-selectable genes and DR4 MEFS confers resistance to neomycin, puromycin, hygromycin and 6-thioguanine |
0.1% Gelatin | Sigma-Aldrich | G1393 | Dissolve 0.5 g in 500 ml distilled water, autoclave and store at 4°C. |
Trypsin (0.25%) | Gibco | 25200-056 | |
2 μM pluripotin | Cayman Chemical | 10009557 | |
pRMCE-DV1 | BCCM/LMBP collection | LMBP 08870 | public available from the BCCM/LMBP collection (http://bccm.belspo.be) |
cre-excised pRMCE-DV1 | BCCM/LMBP collection | LMBP 08195 | public available from the BCCM/LMBP collection (http://bccm.belspo.be) |
pCAG-FlpE-IRES-Puro-pA | Addgene | 20733 | |
heat-shock competent DH5α bacteria | made in house | ||
Gateway pDONR221 vector | Thermo Fisher | 12536-017 | contains kanamycin-resistance gene |
BP clonase II mix | Thermo Fisher | 11789-020 | |
LR clonase II mix | Thermo Fisher | 11791-020 | |
Luria Broth (LB) | |||
Ampicillin | |||
Applied Biosystems 3730XL DNA Analyzer | Thermo Fisher | 3730XL | |
G418 | Thermo Fisher | 11811-023 | |
Lipofectamine 2000 transfection reagent | Thermo Fisher | 11668027 | |
Lipofectamine LTX transfection reagent | Thermo Fisher | 15338100 | |
Effectene transfection reagent | Qiagen | 301425 | |
GATEWAY pENTR 1A vector | Thermo Fisher | A10462 | recombination-compatible vector |
mouse monoclonal anti-p120ctn antibody | BD Transduction Laboratories | 610134 | |
mouse monoclonal anti-Ecadherin antibody | BD Transduction Laboratories | 610181 | |
General equipment: | |||
Sterile dissection tools | fine scissors and forceps for dissecting the uterus | ||
Sterile pipettes: 5 ml, 10 ml and 25 ml | |||
15-ml and 50-ml conical centrifuge tubes | |||
96-well culture plates V-shaped bottom and flat bottom) | |||
Culture dishes: 24 wells, 12 wells and 6 wells | |||
Multichannel pipettes (to pipette 30, 50, 100 and 200 μl) | |||
Sterile multichannel reservoirs | |||
Access to a laminar air flow | |||
Access to an incubator at 37°C with 5% CO2 | |||
Access to an inverted microscope | |||
Access to a bench-top centrifuge | |||
Access to a stereo microscope with transmitted-light | |||
Culture media: | |||
MEF Medium: | stored at 4°C; warm 30 min at 37°C before use | ||
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) | Gibco | 41965-062 | |
10% fetal bovine serum (FBS) | Sigma-Aldrich | F-7524 | |
L-glutamine (2 mM) | Gibco | 25030-024 | |
Sodium pyruvate (0.4 mM) | Gibco | 11360-039 | |
penicillin (100 U/ml) | Gibco | 15140-122 | |
streptomycin (100 µg/ml) | Gibco | 15140-122 | |
SR-based mESC medium: | stored at 4°C; warm 30 min at 37°C before use | ||
DMEM/F12 | Gibco | 31330-038 | mixed in a 1:1 ratio |
15% knock-out serum replacement (SR ) | Gibco | 10828–028 | |
L-glutamine (2 mM) | Gibco | 25030-024 | |
0.1 mM non-essential amino acids | Gibco | 11140-050 | |
penicillin (100 U/ml) | Gibco | 15140-122 | |
streptomycin (100 µg/ml) | Gibco | 15140-122 | |
β-mercaptoethanol (0.1 mM) | Sigma-Aldrich | M 3148 | |
2,000 U/ml recombinant mouse LIF | (IRC/VIB Protein Service facility) | ||
FBS-based mESC medium (similar to SR-based mESC medium): | stored at 4°C; warm 30 min at 37°C before use | ||
Knockout DMEM | Gibco | 10829-018 | |
15% FBS | Hyclone | SH30070.03E | |
Differention Medium | stored at 4°C; warm 30 min at 37°C before use | ||
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | Gibco | 21980-032 | |
15% FBS | Hyclone | SH30070.03E | |
5% CD Hybridoma Medium(1x) liquid | Gibco | 11279-023 | |
2 mM L-glutamine | Gibco | 25030-024 | |
0.4 mM 1-thioglycerol | Sigma-Aldrich | M-6145 | |
50 μg/ml ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A-4544 | |
penicillin (100 U/ml) | Gibco | 15140-122 | |
streptomycin (100 µg/ml) | Gibco | 15140-122 | |
2i | |||
1 μM Erk inhibitor PD0325901 | Axon Medchem | Axon 1408 | |
3 μM Gsk3 inhibitor CHIR99021 | Axon Medchem | Axon 1386 |