Summary

Novel analyse for Cold Nociception i<em> Drosophila</em> Larver

Published: April 03, 2017
doi:

Summary

Her demonstrerer vi en hidtil ukendt assay til at studere kold nociception i Drosophila larver. Dette assay anvender en specialbygget Peltier probe stand til at påføre en fokal skadelig kold stimulus og resulterer i kvantificerbare kolde-specifikke adfærd. Denne teknik vil muliggøre yderligere cellulær og molekylær dissektion af kold nociception.

Abstract

Hvordan fornemmer organismer og svare skadelige temperaturer er stadig dårligt forstået. Endvidere mekanismerne bag sensibilisering af den sensoriske maskiner, såsom hos patienter med perifer neuropati eller skadeinducerede sensibilisering, er ikke godt karakteriseret. Den genetisk medgørlig Drosophila model er blevet anvendt til at undersøge cellerne og gener, der kræves for skadelige varme påvisning, hvilket har givet flere bevarede gener af interesse. Der vides imidlertid om cellerne og receptorer er vigtige for skadelige kold sensing. Selv Drosophila ikke overlever langvarig udsættelse for kolde temperaturer (≤10 ºC), og vil undgå køligt, men foretrækker varmere temperaturer i adfærdsmæssige præference assays, hvordan de fornemmer og muligvis undgå skadelige kolde stimuli er først for nylig blevet undersøgt.

Her beskriver og karakterisere den første skadelige kolde (≤10 ºC) adfærdsmæssige assay viDrosophila. Ved hjælp af dette værktøj og analyse, viser vi en efterforsker, hvordan man kvalitativt og kvantitativt vurdere kolde nociceptive adfærd. Dette kan gøres under normale / sunde dyrkningsbetingelser, eller antagelig i forbindelse med sygdom, skade eller sensibilisering. Endvidere kan dette assay anvendes på larver valgt for ønskede genotyper, som kunne tænkes at påvirke thermosensation, smerte eller nociceptiv sensibilisering. Eftersom smerte er et særdeles konserveret proces, ved hjælp af dette assay til yderligere undersøgelse termisk nociception vil sandsynligvis indsamle vigtig forståelse af smerte processer i andre arter, herunder hvirveldyr.

Introduction

Drosophila har vist sig at være yderst nyttige til identifikation af hidtil ukendte konserverede gener og neuronale kredsløb, der ligger til grund kompleks adfærd. Fluer giver et sofistikeret genetisk værktøjskasse og et forenklet nervesystem, som tillader præcis genetisk og neuronal manipulation 1, 2, 3, 4 for at dissekere de cellulære og molekylære grundlag for nociception 5, 6, 7. Larver er særligt anvendelige til disse analyser, eftersom adfærdsmæssige assays for blid berøring 8, 9, 10, skadelige varme 11, 12, 13 og mekanisk fornemmelse af skadelige stimuli 4, </sup> 11 er allerede blevet etableret, og den gennemsigtige larver neglebånd giver mulighed for direkte eller fast billedbehandling af epidermis og underliggende sensoriske neuroner. For nylig er en analyse for skadelige koldt også blevet udviklet 7, som vi beskriver i detaljer her.

Med en fin, konisk spids kold probe, viser vi, at Drosophila larver udviser et sæt af kolde-specifikke reaktive adfærd, adskiller sig fra adfærd observeres under normal bevægelse, efter blid berøring, eller efter barske mekanisk eller høj temperatur stimuli 7, 8, 11 . De kolde-specifikke adfærd omfatte et stabilt full-body kontraktion (CT), en 45-90º raise af de posteriore segmenter (PR) og en samtidig forhøje på den forreste og bageste segmenter i en U-formet (US). Udbredelsen af ​​disse adfærdsmønstre stiger med faldende temperaturer men hver toppe ved slet forskellige kolde temperaturer. Nyere arbejde foreslår, at CT responser medieret af forskellige perifere sensoriske neuroner end dem, der reagerer på skadelige varme eller barske mekanisk stimuli 7.

Meget gerne hvirveldyr nociceptorer, Drosophila multipel dendritiske (md) perifere sensoriske neuroner har komplekse dendritiske strukturer, arborize over epidermis 1. md neuroner er til stede i hver larve kropssegment, rager deres axoner til den ventrale nerve snor 14. md sensoriske neuroner er adskilt i fire forskellige klasser (I-IV) baseret på dendritisk morfologi og har varierende sensoriske funktioner 4, 9, 10, 15, 16, 17. Mens klasse IV neuroner er nødvendige for larvestadium lateral organ roll responserfor høje temperaturer eller barske mekaniske stimuli 4, klasse III neuroner er nødvendige for blid berøring responser 9, 10 og er ikke kun aktiveres af kold, men også er nødvendige for de kolde-fremkaldte adfærdsmæssige reaktioner 7. Både klasse III og klasse IV neuroner benytter diskrete forbigående receptor potentiale (TRP) kanaler for at lette adfærdsmæssige reaktioner på skadelige 7, 11, 18 og ikke-skadelige stimuli 9, 10, 17, 19. Endvidere er larvernes nociception sensibiliseret følgende skade, på cellulært 20 og adfærdsmæssige niveau 12, 21.

Den her beskrevne assay muliggør quantification af enten normalt, eller potentielt ændret adfærdsmæssige reaktioner på kolde temperaturer fra skadelige kold (≤ 10 ºC), uskadelig cool (11-17 ºC), til omgivelsestemperaturer (18-22 ºC). De kolde temperaturer, der anvendes i dette assay er i stand til direkte at aktivere klasse III sensoriske neuroner, fremkalde robuste, reproducerbare calcium stiger og kolde fremkaldte adfærdsmæssige reaktioner, som kan være kvalitativt og kvantitativt analyseret 7. Dette assay kan anvendes til larver af stort set enhver genotype samt larver udsat for forskellige miljømæssige betingelser (ændret ernæring, skade, farmakologiske midler) for at bestemme både genetiske og miljømæssige faktorer, der påvirker kold nociception, nociceptive sensibilisering eller nociceptive plasticitet. Eftersom thermosensation er allestedsnærværende på tværs af mange arter, dette assay tilvejebringer et værdifuldt redskab til studiet af nociception og kan afdække hidtil ukendte gen-mål eller neuronale interaktioner, der vil forbedrevores forståelse af hvirveldyr nociception.

Specialbyggede kold probe (se kold probe, tabel of Materials) anvender en lukket sløjfe temperaturreguleret Peltier anordning, som køler aluminium skaft og konisk spids gennem termisk ledning. En termistor er indlejret inde i aluminium koniske spids rapporterer realtid temperatur på styreenheden. En kølepladen og blæseren er fastgjort til det termoelektriske modul til at regulere Peltier effektens varmebelastning (Qc), så den ønskede temperaturområde på (22-0 ° C) kan opnås (se Thermal Control Unit, tabel of Materials). Den skadelige kolde stimulus fra den kolde sondespidsen påføres med hånden for at den dorsale midtlinie, til segment (er) lige langt fra anteriore og posteriore ender (groft segment A4, se figur 1A) af larve. Som reaktion på kolde stimuli, larver generelt fremstilling af en af ​​tre kold fremkaldt adfærd inden for en 10 s cutoff: en fuld legemekontraktion (CT), en 45-90º raise på forreste og bageste segmenter til en U-formet (US), eller en stigning på de posteriore segmenter (PR) (beskrevet i Resultater). Ingen af ​​disse adfærdsmønstre udføres under normal peristaltisk bevægelse eller fourageringsadfærd. Disse adfærdsmønstre er også forskellige fra blid berøring responser og den aversive rullende respons på høj temperatur eller skadelige mekaniske stimuli.

Protocol

1. Fremstilling af Larver Hæv bestande eller genetiske krydser i et 25 ºC inkubator. Hvis dyrkning af en cross, bruge 20-25 jomfruelige hunner og 15-20 hanner pr hætteglas med regelmæssig cornmeal flyve medier. Tillad hunner til at lægge æg i ca. 48 h, før du overfører dem til et nyt hætteglas af fødevarer. 4-5 dage efter æglægning, indsamle 3. stadiums larver af den ønskede genotype ved forsigtigt at sprøjte en strøm af vand i grødet mad og larver, og h…

Representative Results

Drosophila larver farten med en peristaltisk bevægelse, der omfatter lejlighedsvise pauser, hoved sving, og ændringer i retning 22. Som svar på fokal anvendelse af en skadelig kold stimulus dog larver udviser et sæt af unikke adfærd, i modsætning til aversive laterale rulle til skadelige varme og mekaniske stimuli. Disse adfærdsmønstre er også forskellig fra reaktioner på blid berøring 8, <su…

Discussion

Den her beskrevne assay kan anvendes til kvalitativt og kvantitativt vurdere nociception eller nociceptiv sensibilisering i larver af forskellige genetiske baggrunde, miljømæssige påvirkninger, og / eller skade-inducerede betingelser. Eftersom dette assay tillader fokal anvendelse af en kold stimulering med dette værktøj kan man vurdere funktionen af ​​en delmængde af perifere sensoriske neuroner specifikt at reagere på kolde temperaturer. Interessant, disse kolde fremkaldt adfærd synes at udnytte forskellig…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Sarah Wu og Camille Graham for at udvikle tidlige faser af den kolde sonde analysen, Bloomington Drosophila Stock Center for flyve aktier, og Galko lab medlemmer til kritisk læsning af manuskriptet. Dette arbejde blev støttet af NIH NRSA (NIH F31NS083306) til HNT, og ved NIH R01NS069828, R21NS087360 og en University of Texas MD Anderson Clark Fellowship i Basic Research til MJG.

Materials

Cold Probe Pro-Dev Engineering Custom-built on demand Part numbers and construction details can be provided on request
Thermal Control Unit TE Technology Custom Built enclosure Part numbers and construction details can be provided on request
Zeiss Stemi 2000 microscope Zeiss NT55-605
Fiber-Lite MI-150 High Intensity Illuminator Dolan-Jenner Industries. A20500
Schott Dual Gooseneck 23 inch Fiber Optic Light Guide Schott North America, Inc. Schott A08575
Forceps FST FS-1670 Used to sort and handle larvae. Be sure to smooth and blunt forceps tips slightly to lower the risk of accidently puncturing or injuring the larvae
Paintbrush Dick Blick Art Materials 06762-1002 Used to sort and handle larvae. It is helpful if the paintbrush is damp during use.
35 X 10 mm Polystyrene Petri Dish Falcon 351008
60 X 10 mm Polystyrene Petri Dish Falcon 351007
Piece of black vinyl (at least 2 x 2 inches) Used to provide contrast and orient larvae to the cold probe
Fisherbrand Scoopula Spatula Fisher Scientific 14-357Q Used to move food
Kimtech Science Kimwipes Fisher Scientific 06-666A Used to dry the larvae and cold probe if there is excess moisture

Referências

  1. Grueber, W. B., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Tiling of the Drosophila epidermis by multidendritic sensory neurons. Development. 129 (12), 2867-2878 (2002).
  2. Gao, F. B., Brenman, J. E., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Genes regulating dendritic outgrowth, branching, and routing in Drosophila. Genes Dev. 13 (19), 2549-2561 (1999).
  3. Sweeney, S. T., Broadie, K., Keane, J., Niemann, H., O’Kane, C. J. Targeted expression of tetanus toxin light chain in Drosophila specifically eliminates synaptic transmission and causes behavioral defects. Neuron. 14 (2), 341-351 (1995).
  4. Hwang, R. Y., et al. Nociceptive neurons protect Drosophila larvae from parasitoid wasps. Curr Biol. 17 (24), 2105-2116 (2007).
  5. Im, S. H., Galko, M. J. Pokes, sunburn, and hot sauce: Drosophila as an emerging model for the biology of nociception. Dev Dyn. 241 (1), 16-26 (2012).
  6. Milinkeviciute, G., Gentile, C., Neely, G. G. Drosophila as a tool for studying the conserved genetics of pain. Clin Genet. 82 (4), 359-366 (2012).
  7. Turner, H. N., et al. The TRP Channels Pkd2, NompC, and Trpm Act in Cold-Sensing Neurons to Mediate Unique Aversive Behaviors to Noxious Cold in Drosophila. Curr Biol. , (2016).
  8. Kernan, M., Cowan, D., Zuker, C. Genetic dissection of mechanosensory transduction: mechanoreception-defective mutations of Drosophila. Neuron. 12 (6), 1195-1206 (1994).
  9. Tsubouchi, A., Caldwell, J. C., Tracey, W. D. Dendritic filopodia, Ripped Pocket, NOMPC, and NMDARs contribute to the sense of touch in Drosophila larvae. Curr Biol. 22 (22), 2124-2134 (2012).
  10. Yan, Z., et al. Drosophila NOMPC is a mechanotransduction channel subunit for gentle-touch sensation. Nature. 493 (7431), 221-225 (2013).
  11. Tracey, W. D., Wilson, R. I., Laurent, G., Benzer, S. painless, a Drosophila gene essential for nociception. Cell. 113 (2), 261-273 (2003).
  12. Babcock, D. T., Landry, C., Galko, M. J. Cytokine signaling mediates UV-induced nociceptive sensitization in Drosophila larvae. Curr Biol. 19 (10), 799-806 (2009).
  13. Chattopadhyay, A., Gilstrap, A. V., Galko, M. J. Local and global methods of assessing thermal nociception in Drosophila larvae. J Vis Exp. (63), e3837 (2012).
  14. Grueber, W. B., et al. Projections of Drosophila multidendritic neurons in the central nervous system: links with peripheral dendrite morphology. Development. 134 (1), 55-64 (2007).
  15. Hughes, C. L., Thomas, J. B. A sensory feedback circuit coordinates muscle activity in Drosophila. Mol Cell Neurosci. 35 (2), 383-396 (2007).
  16. Zhong, L., Hwang, R. Y., Tracey, W. D. Pickpocket is a DEG/ENaC protein required for mechanical nociception in Drosophila larvae. Curr Biol. 20 (5), 429-434 (2010).
  17. Xiang, Y., et al. Light-avoidance-mediating photoreceptors tile the Drosophila larval body wall. Nature. 468 (7326), 921-926 (2010).
  18. Neely, G. G., et al. TrpA1 regulates thermal nociception in Drosophila. PLoS One. 6 (8), e24343 (2011).
  19. Zhou, Y., Cameron, S., Chang, W. T., Rao, Y. Control of directional change after mechanical stimulation in Drosophila. Mol Brain. 5, 39 (2012).
  20. Im, S. H., et al. Tachykinin acts upstream of autocrine Hedgehog signaling during nociceptive sensitization in Drosophila. Elife. 4, e10735 (2015).
  21. Babcock, D. T., et al. Hedgehog signaling regulates nociceptive sensitization. Curr Biol. 21 (18), 1525-1533 (2011).
  22. Berrigan, D., Pepin, D. J. How Maggots Move – Allometry and Kinematics of Crawling in Larval Diptera. J. Insect Physiol. 41 (4), 329-337 (1995).
  23. Galko, M. J., Krasnow, M. A. Cellular and genetic analysis of wound healing in Drosophila larvae. PLoS Biol. 2 (8), E239 (2004).
  24. Burra, S., Wang, Y., Brock, A. R., Galko, M. J. Using Drosophila larvae to study epidermal wound closure and inflammation. Methods Mol Biol. 1037, 449-461 (2013).
  25. Dar, A. C., Das, T. K., Shokat, K. M., Cagan, R. L. Chemical genetic discovery of targets and anti-targets for cancer polypharmacology. Nature. 486 (7401), 80-84 (2012).
  26. Pandey, U. B., Nichols, C. D. Human disease models in Drosophila melanogaster and the role of the fly in therapeutic drug discovery. Pharmacol Rev. 63 (2), 411-436 (2011).
  27. Gill, R. D. Multistate life-tables and regression models. Math Popul Stud. 3 (4), 259-276 (1992).
  28. Mantel, N. Ranking procedures for arbitrarily restricted observation. Biometrics. 23 (1), 65-78 (1967).
  29. Breslow, N. A generalized Kruskal-Wallis test for comparing K samples subject to unequal patterns of censorship. Biometrika. 57 (3), 579-594 (1970).
  30. Gehan, E. A. A generalized wilcoxon test for comparing arbitrarily singly-censored samples. Biometrika. 52, 203-223 (1965).

Play Video

Citar este artigo
Turner, H. N., Landry, C., Galko, M. J. Novel Assay for Cold Nociception in Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (122), e55568, doi:10.3791/55568 (2017).

View Video