Summary

自动放射化学合成[<sup> 18</sup> F] 3F4AP:一种用于成像脱髓鞘疾病的新型PET示踪剂

Published: May 29, 2017
doi:

Summary

我们展示了[ 18 F] 3F4AP和质量控制程序的半自动放射化学合成。

Abstract

3- [ 18 F]氟-4-氨基吡啶[ 18 F] 3 F4AP是经FDA批准的多发性硬化4-氨基吡啶(4AP)药物的放射性氟化类似物。该化合物目前正在研究中作为用于脱髓鞘的PET示踪剂。我们最近描述了一种新的化学反应,以生产由吡啶N-氧化物的直接氟化组成的五氟化吡啶以及该反应用于[ 18 F] 3 F4AP的放射化学合成。在本文中,我们演示如何使用自动化合成器和内部制造的流化氢反应器来生产该示踪剂。我们还展示了在释放用于临床前动物成像研究的放射性示踪剂之前执行的标准质量控制程序。这种半自动化程序可以作为未来生产[ 18 F] 3F4AP进行临床研究的基础。

Introduction

在人体内非侵入性地追踪小分子药物的能力对精密医学具有很大的潜力。在分子成像技术中,正电子发射断层扫描(PET)具有许多有利的特征:PET检测器的高灵敏度允许检测和量化非常少量的放射性物质,并且扫描仪的特征允许药物定位的精确空间映射1,2 3 。例如,PET允许基于放射性葡萄糖类似物[ 18 F] FDG 4的摄取水平检测和定位肿瘤和转移。 PET还可以提供特定脑受体的定位和定量,以及它们对于诊断和理解神经和精神疾病有用的占有率。为了发展一个小分子的PET示踪剂,目标化合物必须用正电子发射同位素标记,通常为11 C或18 F.在这两种放射性同位素之间, 18 F具有较长的半衰期(109分钟,对于11 C为20.3秒) ,允许多剂量和异地生产。然而,向分子加入18 F可能是具有挑战性的。 18 F标记需要快速反应,与自动化相容,减轻化学家直接处理活性并接收高吸收辐射剂量。

我们最近描述了使用吡啶N-氧化物作为吡啶氟化的前体,以及在[ 18 F] 3F4AP 6的放射化学合成中使用该化学物质,FDA批准的用于多发性硬化的药物的放射性氟化类似物,4-氨基吡啶(4AP) 7,8,9 。钍目前正在研究新型放射性示踪剂作为脱模髓鞘的PET示踪剂10,11,12。在本视频文章中,我们使用IBA Synthera合成单元(以下称为“合成仪”)和内部制造的流化氢装置展示了该化合物的半自动化合成。合成基于图1所示的反应。准备工作约需1小时,放射性标签和纯化1.5小时,质量控制程序0.5小时。

Protocol

小心:涉及使用放射性物质的所有程序必须经当地的辐射安全办公室批准。当使用放射性物质时,穿上实验室外套和个人辐射徽章。随时使用两层手套,并在涉及处理放射性的每个步骤之后检查盖革计数器。如果手套被放射性废物污染并更换外套手套。使用适当的屏蔽,最小化与辐射源接触的时间并最大化距离。 1.实验前一周:材料的制备下载[ 18 F] 3F4AP序列:Synthera用户可以登录用户数据库(http://www.iba-radiopharmasolutions.com/products/chemistry)并下载3F4AP的序列文件。其他合成器的用户可能需要根据步骤顺序编写自己的脚本。浏览通过注释的序列来熟悉s涉及合成的。脚。 确保有足够的气体用于合成。合成器需要压缩气体,氦气或氮气。它还需要> 75 psi的压缩空气。确保压力在制造商推荐的范围内。 制备HPLC流动相:制备1μL50mM磷酸钠和10mM三乙胺。使用pH计,通过在搅拌下滴加饱和氢氧化钠将pH调节至8.0±0.1。通过0.22μm瓶盖过滤器过滤溶液并加入5%体积的乙醇。 干燥的玻璃器皿在烤箱过夜。 2.实验日:氟-18到达之前 使用1 mL注射器,用合适的试剂填充试剂瓶。对于小瓶2和3,使用保持在氩气下的烘箱干燥的小瓶和无水溶剂。用压接机用压接密封条密封小瓶。 填充样品瓶1(直径11毫米/ 2毫升体积)al)与400μLTBA-HCO 3 +800μL乙腈(MeCN)。 向样品瓶2(13mm / 4mL)中加入50μL前体溶液1.0mg / mL +450μLMeCN。 用500μL的MeCN填充样品瓶3(11mm / 2mL小瓶)。 用4mL 0.2%草酸的甲醇(MeOH)填充小瓶4(13mm / 4mL小瓶)。 调节QMA(强阴离子交换)和氧化铝-N固相萃取柱。使用10mL注射器,通过QMA逐渐通过5 mL 8.4%NaHCO 3,然后通过5 mL超纯水去离子型I水(25℃时为18.2MΩ•cm)。通过5mL超纯水通过氧化铝-N柱,然后加入5mL MeOH + 0.2%草酸。 打开HPLC,并用流动相每分钟4 mL处理C-18柱30分钟。 将新的催化剂筒装载到氢化器盒架上,开始流速为0.5mL / min的100%MeOH。小号并将氢调节器调节至50 psi,并将墨盒调节15分钟( 图2 )。 通过在其位置上引入小瓶1至4组装集成流体处理器(IFP), 如图3所示连接墨盒和收集瓶。将带有通气针的收集瓶连接到氢化器的输出管线。 启动合成器的软件。输入登录名和密码。根据制造商的说明对合成器执行预运行检查。 单击“序列”,然后单击“打开”加载3F4AP序列。 通过单击屏幕上的“加载”按钮加载IFP。键入运行的文件名,然后单击“开始”启动序列。 (自动合成器将在18 F加载步骤之前自动暂停。) 作为合成器观看,通过例行自检步骤(序列的第一部分)。看看scree以确保没有警告或警报。当合成器冲洗线路并预热反应容器以准备运行时,注意声音。温度指示器应上升并保持在65℃。等待信号(听觉蜂鸣声),指示合成器准备好进行18 F传输。 实验日: 18 F标签将所需回旋加速器产生的18 F量从回旋加速器靶转移到18 F小瓶。验证放射性的量,并记录它与传送时间。 注意:如果不使用直接管线进行18 F-转运,请使用带有针头的预充式注射器将活动通过隔膜转移到小瓶。起始放射性的量取决于辐射安全办公室设定的限值和所需量的最终示踪剂。典型数值介于50和500 mCi之间。 <li>按“恢复”恢复合成器上的序列。这将启动将18F转入QMA。 在计算机屏幕上的整个自动序列中监视合成的进度。 观察将18 F从小瓶转移到QMA上90秒。捕获18 F -在QMA上,用TBA-HCO 3溶液(小瓶1)洗脱。 (序列的第二部分) 在TBA 18 F在减压(5 kPa)和加热(100ºC)下干燥,然后进行额外的干燥和冷却步骤,监测合成仪上的压力和温度曲线。 (序列的第3部分) 观察无水MeCN(小瓶3)和前体溶液(小瓶2)的转移到反应器中,以及它如何在室温下反应1分钟。溶液应为无色或微黄色。 (序列的第4部分) 观察草酸的转移溶液(小瓶4)。观察,因为溶液是从反应器通过氧化铝-N柱转移到最终产品小瓶的压力。 (序列的第5部分) 在序列结束时,打印报告,弹出IFP,关闭气罐,并关闭软件。 在首次建立该程序时,通过将药筒和小瓶单独引入剂量校准器来测量氧化铝-N盒和收集瓶中的放射性。记录测量的活动和时间。将用过的墨盒放在有铅废物容器中。将收集瓶放入一个屏蔽的容器中,以便运输到下一步。 使用连接有2“针的1 mL注射器,手动将大约100μL中间产物溶液样品转移到标准HPLC样品瓶中进行质量控制。将10μL此样品注入HPLC,以评估纯度和中间件的身份二酸酯化合物。 注意:HPLC条件:XDB 5μm,9.4 x 250 mm C18色谱柱。流量4 mL / min。流动相(50mM Na 2 HPO 4,10mM TEA,5%EtOH)。等度15分钟 4.实验日:氢化注意:将产品注入氢化器必须使用适当的屏蔽预防措施进行。氢气必须正确处理和排气。 注意:氢化反应器可以连接代替合成仪上的HPLC色谱柱,并使用合成仪软件进行控制。 通过开始合成器HPLC序列,以0.5mL / min设置氢化器流。手动设置氢气压力至50 psi。 完成标记和淬火步骤后,合成仪将中间产物溶液转移到氢化器/ HPLC循环中。 当HPL上出现放射性峰时C软件切换收集阀以收集产品。使用剂量校准器测量粗产品的放射性。 注意:粗产物应注入热电池内的自动化HPLC系统。纯化后,然后收集最终产品,并按照USP和FDA规定将其分配到无菌ISO 5级层流气流热池中。 5.实验日:剂量的净化和制备将粗产物注入HPLC中,并使用自动级分收集器收集对应于最终产物峰的级分。每个管含有0.66mL溶液。 注意:HPLC条件:XDB 5μm,9.4 x 250 mm C18色谱柱。流量4 mL / min。流动相(50mM Na 2 HPO 4,10mM TEA,5%EtOH)。等度15分钟收集4-15分钟。 使用剂量校准器测量每个部分的放射性并进行记录。组合最高量的分数的放射性(通常为管14-18)。 用10 mL注射器抽取产品溶液,并将样品通过0.22μm过滤器送入无菌瓶中。在小瓶标签上记录放射性的量,合成时间结束和溶液体积。这是注射的最终剂量。放置〜0.8 mL溶液进行质量控制测试。 6.实验日:质量控制(QC)测试 剂量释放前: 通过铅屏蔽玻璃检查剂量。溶液必须清澈,无色,无颗粒物。 放射化学特征: 对于RadioTLC:使用参考标准并列在TLC板上的一滴样品。使用95%MeOH:5%乙酸在TLC室上运行TLC板。在UV照明下可视化参考标准,并用铅笔标记其位置。 将TLC板粘贴到radioTLC扫描的阶段呃记录时间的高峰。参考标准和放射性峰值的R f值必须在5%以内。 对于RadioHPLC:在HPLC上运行10μL具有和不具有参考标准的剂量。参考标准和放射性峰值的保留时间必须匹配。必须在加标样品上看到单一的coelution峰。 放射化学纯度:测量放射HLCLC和radioTLC靶峰的曲线面积。所有放射性峰值组合面积的面积必须> 95%。 对于特定的放射性:使用预先建立的校准曲线,计算特定放射性,作为峰值放射性的量(在步骤5.2中测量)超过由UV HPLC曲线曲线下的面积确定的质量。比放射性必须高于50mCi /μmol。 对于残留溶剂分析:测量剩余溶剂的量ts(MeCN,MeOH),使用气相色谱法。乙腈溶剂的含量必须<0.04%,甲醇的溶剂浓度必须<3,000 ppm。 EtOH的量必须小于10%w / v。 对于无菌过滤器完整性测试(泡点):将步骤5.3中使用的过滤器连接到配有压力调节器的氮气供给器,并将针浸入水中。在观察压力表时逐渐打开气阀。过滤器应承受高达50 psi的压力,不会出现爆裂,如针缺少气泡流所证明的。增加压力超过50psi直到气流从针头出来。记录这个压力,它是爆破压力,它必须> 50 psi。 对于放射性核素半衰期:在剂量校准器间隔≥10分钟的两个时间点测量产品的放射性。使用下面的等式计算半衰期。半衰期必须在18分钟内达到5分钟以内(10分钟)9±5分钟): t½计算 = 0.693 t÷ln(A 1 / A 2 ) 其中t是测量之间的间隔,A 1 ,A 2是在每个时间点测量的活度。 对于放射性核素的同一性和纯度:使用γ计数器获得产物样品的γ射线谱。光谱应在511 keV的能量下显示一个单一的光峰。光谱中应该没有其他的光谱峰。 对于内毒素分析:使用LAL显色内毒素定量试验测量内毒素水平。对于最终产品体积为10 mL的1:10稀释产物,内毒素含量必须<1.75 EU / mL。 记录每个QC测试的结果。释放动物研究的剂量,只有所有的测试通过。 剂后释放: 对于无菌试验:将两个流体的巯基乙酸和胰蛋白酶的剂量样品加入大豆肉汤14天后,媒体上看不到增长。 7.实验日期:计算(表1) 对于非衰变校正放射化学产率(ndc RCY):计算ndc RCY作为最终产物中放射性的量超过起始放射性。 对于放射性标记效率:计算标签收率,作为收集小瓶中放射性与氧化铝​​-N盒(非法定的[ 18 F] F – ))和收集瓶中放射性的比值。 对于氢化产率:计算加氢产率,作为注入HPLC的放射性的所需峰的放射性量。 对于过滤损失:计算滤波损失,因为过滤前过滤器和注射器中的放射性比放射性残留。

Representative Results

[ 18 F] 3F4AP的放射化学合成包括两个步骤( 图1 )。第一步使用合成单元以完全自动化的方式进行( 图3 )。这种基于盒式的系统使用四个试剂瓶和一个反应器小瓶,并具有计算机控制的阀,其允许试剂的转移和混合以及加热,加压和排空反应器。此外,它还支持用于分离试剂的标准固相萃取柱。计算机界面允许用户编写和修改脚本,以便运行自己的综合。在[ 18 F] 3F4AP的情况下,合成程序由五个基本部分组成。在第一部分中,合成器执行自检步骤,预热反应堆,并等待操作人员18 F准备就绪的信号。在第二部分,[ 18 F]氟化物被转移将18 F小瓶插入阴离子交换柱中,并使用四丁基碳酸氢铵溶液从柱中洗脱到反应器中。第三部分,合成仪在真空下共沸干燥[ 18 F]氟化物,使其对亲核取代反应。在第四部分中,前体被自动加入到反应器中,其与18F-反应产生标记的化合物。最后,通过在甲醇中加入0.2%草酸猝灭反应,这防止了产物的碱促进的分解,并且最终的溶液在通过氧化铝 – N型药筒后被压力转移到收集瓶中未反应的氟化物。 标签步骤完成后,可以取小样品进行质量控制。在HPLC上运行样品提供了标签步骤的确认和估计放射化学纯度( 图4 )。此外,从HPLC上的UV迹线可以使用预先建立的校准曲线来计算产物的质量。 当进行中的质量控制HPLC运行时,进行第二反应步骤,还原N-氧化物和硝基。为了做到这一点,基于Yoswathananont 等人发表的方法,将标记的产物自动注入内部加氢装置。 13 ( 图2 )。该装置包括一个HPLC泵和一个压缩氢罐,通过装有止回阀的管线与流化氢装置连接,以防止回流。产物由HPLC泵推动,并与T型混合器中的氢混合。然后将该混合物在固体支持物上通过含有10%Pd / C催化剂的小筒。通过cata之后然后以小部分收集还原产物。 氢化后,将粗产物输送并手动注入HPLC以纯化最终产物( 图5 )。已选择HPLC的流动相与动物注射相容。然后收集与产物相对应的峰,并过滤灭菌以获得最终剂量。 在释放PET成像研究的剂量之前,进行质量控制测试。执行这些测试以确保示踪剂是其应该是化学实体,并且它对于注射是安全的。这些测试中的一些可能不需要注射到动物体内,但通常建议遵循人体使用指南。这样做确保了产品的质量,从而增加了对结果的信心,并大大提高了产品质量揭示未来向人类注射产品制造过渡。 表1包含典型的合成参数,包括初始量放射性,前体的初始量,每个步骤的产率,比活性,过滤损失等。这些参数有助于故障排除和未来的优化过程。 图1.反应方案放射化学合成由19 F / 18 F交换标记,然后进行钯催化氢化。 请点击此处查看此图的较大版本。 <img alt="图2" > 图2.加氢系统。设备原理图该设备基于Yoswathananont 等人的出版物(参考文献13)。 合成器集成流体处理器(IFP)和试剂方案。 IFP包含四个试剂瓶,一个QMA盒和一个反应瓶。 请点击此处查看此图的较大版本。 图4.用于中间产品的UV和radioHPLC示踪剂。 3-氟-4-硝基吡啶N-氧化物在313nm具有特征吸收。e.jove.com/files/ftp_upload/55537/55537fig4large.jpg“target =”_ blank“>请点击此处查看此图的较大版本。 图5.用于最终产品的UV和radioHPLC示踪剂。 3-氟-4-氨基吡啶在254nm吸收。 请点击此处查看此图的较大版本。 概念 平均值(n = 4) SD 注释 初始18 F活动(mCi) 148.0 44.9 合成开始前体用量(μg) 50 </tD> 使用50μL1.0 mg / mL原料在QMA(mCi)中剩下的活动 3.0 1.7 在标签步骤结束时测量放射性标记产率 29.7% 6.3% Act_collection_vial÷(Act_collection_vial + Act_AluN) 放射化学纯度(HPLC-1) > 98% 从HPLC-1 QC 规格。法案。中间体(mCi /μmol) 122.9 29.7 从HPLC-1使用校准曲线加氢回收(直流) 74% 9.0% 修正为朽烂 HPLC放射化学纯度(HPLC-2) 90.7% 2.9% 由HPLC-2计算干燥效率 > 98% 修正为朽烂过滤恢复 93.5% 1.7% 修正为朽烂剂量(mL) 3.3 收集具有最高放射性的级分 规格。法案。最终产品(mCi /μmol) 75.5 30.0 从HPLC-3使用校准曲线 综合效率 8.5% 3.6% 非衰变校正 合成时间(min) 104 11.2 表1.放射化学合成参数。 常见问题 潜在的原因和解决方案 [ 18 F]氟化物不能从QMA有效地洗脱出来 ·TBA-HCO 3未正确准备。确保浓度足够。 ·TBA-HCO 3小瓶有泄漏。在将其安装在IFP上之前,确保压接密封很紧,并且隔膜未被刺穿。 ·TBA-HCO 3状况不佳。订购新批次。 标签产量低 ·前体溶液中有水分。干燥前体和溶剂。 ·温度过低反应溶液为黄色 ·产品由于底层而分解。少用TBA-HCO 3 。 ·有t太多的前兆少用前体。 · 18 F – 的溶剂溶剂少。使用更多的溶剂。 radioHPLC上的额外峰值 ·硝基取代基:降低反应温度或缩短反应时间。 氢化反应不起作用 ·催化剂不好使用新的墨盒。 ·流速太快,催化剂和基材之间不能充分接触。减少流量 ·氢气压力过低增加H 2压力。 氢气压力在程序中显着增加 ·墨盒的完整性受到损害,坚实的支持阻塞了线路。停止流动并关闭气体。让放射性衰减。取出催化剂筒并冲洗系统。放一个碳粉盒加氢收率低 ·与催化剂(MeCN,草酸)竞争的杂质太多。减少杂质量或增加前体质量(警告:增加前体量会降低比活度)。 从氢化步骤回收放射性较低 ·系统有泄漏。检查泄漏和反冲入氢气管线。 ·化合物在反应器中脱氟。评估不同的反应条件(压力,温度,流量等 )。 过滤时过多的放射性会损失 ·使用前请先过滤。 ·使用死体积较小的过滤器。 HPLC上的最终产品峰值看起来很宽泛 ·注入量过多注入较低'mount。使用较大直径的色谱柱。 ·柱子调节不好为柱子设置至少30列色谱柱。 ·流动相的pH值较低。确保pH≥8。 ·栏状态不佳替换列。使用与碱性pH相容的色谱柱。 表2.故障排除指南。

Discussion

PET示踪剂的制备需要有效的标签,用最少的用户干预来最小化辐射暴露14 。在这里,我们描述了目前正在研究的成像脱髓鞘的PET示踪剂[ 18 F] 3F4AP的放射化学合成的第一个半自动化程序。这种半自动化方法产生具有高纯度和足够的比活性的放射性示踪剂,用于动物研究。用于合成该化合物的先前方法依赖于手工合成6 ,其显着限制了可产生的放射性示踪剂的量。具有合成自动化方法还提供更多的可重复产量,并且使得更容易将程序转移到具有相似设备的其他实验室。未来完全自动化程序的努力将有助于大量用于大型动物或人类的研究的示踪剂的生产。

<p class ="“jove_content”">该方法使用18 F的亲核交换18 F将放射性同位素纳入感兴趣的分子。该反应的优点是其快速且几乎仅产生所需的产物,而不需要执行潜在的冗长的纯化步骤以除去过量的前体。使用氟化物交换标记反应(如这里使用的氟化物交换标记反应)的一个局限性在于,由于冷化合物的初始质量,定义为mCi中的放射性量的量的最终比活性与以μmol计的化合物量相比有限。在我们的标准条件下,从100-200mCi的18F-和50μg前体开始,合成结束时的典型比活性高达100-200mCi /μmol,这似乎足以用于临床前PET成像研究。然而,比活性可以通过增加18F- </su同时保持质量低。已经有几个报道,通过以高活性和低前体量15,16开始,以高比活性(1-3Ci /μmol)通过氟化物交换生产放射性配体。

与PET示踪剂的所有放射化学合成一样,为了最小化放射性衰变,关键是快速工作。尽量减少处理放射性物质的时间,使用适当的屏蔽,并最大限度地发挥放射性物质与使用者之间的距离,使辐射暴露最小化也是重要的。这些方面在协议的下半年(净化和质量控制)尤其重要,其中用户必须手动将溶液注入HPLC,收集级分并过滤最终产品。

与PET示踪剂的所有放射化学合成一样,为了快速工作至关重要推动放射性衰变。尽量减少处理放射性物质的时间,使用适当的屏蔽,并最大限度地发挥放射性物质与使用者之间的距离,使辐射暴露最小化也是重要的。这些方面在协议的下半年(氢化和纯化)期间特别重要,其中用户必须手动将溶液注入氢化器中,收集级分,设置干燥程序,将产物重新溶解在缓冲液中并过滤。在过滤步骤中,很容易在小瓶的壁中失去大量的放射性物质。因此,重要的是在过滤之前尝试收集所有的液体。使用更大量的缓冲液以溶解可以提高回收率,但不鼓励使用它,因为它将需要在HPLC上注入更大的体积,导致峰扩大并增加最终剂量的体积。

为了排除故障最优化程序对于跟踪每个步骤的收益率很重要。对于大多数步骤,可以简单地通过测量任何步骤之前和之后的放射性量来完成。在反应的情况下,可以通过定量HPLC峰来计算产率。结果部分中的表1显示了每个步骤的典型收益率。下面的表2列出了许多常见的故障,潜在的故障原因和如何纠正它们。

最后,即使这里展示的程序是合成[ 18 F] 3F4AP的具体步骤,一般工作流程和许多个别步骤对其他化合物17的合成是常见的。在本文中,我们还展示了对任何PET示踪剂进行的典型QC测试。

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

该项目获得了NIH / NIBIB 1K99EB020075授予Pedro Brugarolas奖,以及芝加哥创新交易所创新基金奖给Brian Popko和Pedro Brugarolas。布莱恩·波波科教授非常感谢他对该项目的指导和财务支持。芝加哥大学教授陈小铎教授和芝加哥大学综合小动物成像研究资源,慷慨分享了实验室空间和设备。 IBA被公认为赞助本文的开放获取。

Materials

Cyclotron produced [18F]fluoride House supplied/Zevacor IBA Cyclone 18 100-200 mCi
Integrated fluid processor for production FLT/FDG ABX K-2715SYN Cassette used for nucleophilic substitution
Anhydrous acetonitrile Janssen 36431-0010 Transfer under nitrogen
Methanol Janssen 67-56-1
ultrapure water house supplied Millipore MilliQ system
TBA-HCO3 ABX 808.0000.6 abx.de
QMA Waters WAT023525 Quaternary methyl ammonium: Anion exchange solid phase extraction cartridge for trap and release of 18F- from the target water
Sodium bicarbonate ABX K-28XX.03 Prefilled 5 mL syringes
Alumina-N Waters WAT020510 Alumina-N solid phase extraction cartridge (for trapping unreacted 18F-)
3-fluoro-4-nitropyridine N-oxide Synthonix 76954-0 Store in desicator. Precursor
3-fluoro-4-aminopyridine Sigma Aldrich 704490-1G Reference standard
Oxalic acid Sigma Aldrich 75688-50G
Sodium phosphate monobasic Fisher Scientific  S80191-1
Triethyl amine Fisher Scientific  04885-1
Ethanol Decon Labs DSP-MD.43 USP
Final product vial ABX K28XX.04
Millex Filter Syringe Millex SLGVR04NL
10% Pd/C cartridge Sigma Aldrich THS-01111-12EA
11 mm vials + crimp seals Fisher Scientific  03-250-618, 06-451-117, or equivalent
13 mm vials + crimp seals Fisher Scientific 06-718-992, 06-718-643, or equivalent
HPLC vials Fisher Scientific 03-391-16, 03-391-17, or equivalent
SEMIPREP C18 column Agilent 990967-202
V-vials Alltech
Syringes: 1, 3, 10 mL Fisher Scientific 14-829-10D, 14-829-13Q, 14-829-18G, or equivalent
Compressed gases: N2, He, H2 Airgas UHP N300, UHP HE300, UHP H300, or equivalent
TLC plates Sigma Aldrich Z193275, or equivalent
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Synthera automated synthesizer IBA SA, Belgium, iba-worldwide.com Synthera, 250.001 Automatic synthesis unit
In-house hydrogenator See picture See text description
Hot cells Comecer For manipulating radioactive materials
RadioTLC scanner Eckert and Ziegler For handling sterile materials
HPLC Dionex Ultimate 3000
Dose calibrator Capintec CRC15 Or equivalent
Gamma counter Capintec, 7 Vreeland Road, Florham Park, NJ 07932 CRC 15, PET-CRC25, or equivalent For measuring radioactivity
Personal dosimeters Packard Cobra II For measuring gamma spectrum
Personal radiation badges and rings Atlantic Nuclear Rados Rad-60 Electronic Dosimeter, or equivalent
Rotavap + vacuum pump Landauer
Lead pigs + syringe shields Heidolph Or equivalent
Geiger counters Pinestar
Ludlum  Model 3 + Pancake GM detector, 4801605, 47-1539, or equivalent

Referências

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Brugarolas, P., Bhuiyan, M., Kucharski, A., Freifelder, R. Automated Radiochemical Synthesis of [18F]3F4AP: A Novel PET Tracer for Imaging Demyelinating Diseases. J. Vis. Exp. (123), e55537, doi:10.3791/55537 (2017).

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