Summary

अध्ययन के लिए प्राथमिक सिलिया प्राथमिक neurosphere संस्कृति का उपयोग करना

Published: April 14, 2017
doi:

Summary

प्राथमिक पपनी तंत्रिका पूर्वज कोशिका प्रसार, neuronal भेदभाव, और वयस्क न्यूरोनल समारोह में मूल रूप से महत्वपूर्ण है। यहाँ, हम ciliogenesis और प्राथमिक neurosphere संस्कृतियों का उपयोग कर तंत्रिका स्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं और विभेदित न्यूरॉन्स में सिलिया के लिए प्रोटीन संकेत की तस्करी का अध्ययन करने के लिए एक विधि का वर्णन।

Abstract

The primary cilium is fundamentally important for the proliferation of neural stem/progenitor cells and for neuronal differentiation during embryonic, postnatal, and adult life. In addition, most differentiated neurons possess primary cilia that house signaling receptors, such as G-protein-coupled receptors, and signaling molecules, such as adenylyl cyclases. The primary cilium determines the activity of multiple developmental pathways, including the sonic hedgehog pathway during embryonic neuronal development, and also functions in promoting compartmentalized subcellular signaling during adult neuronal function. Unsurprisingly, defects in primary cilium biogenesis and function have been linked to developmental anomalies of the brain, central obesity, and learning and memory deficits. Thus, it is imperative to study primary cilium biogenesis and ciliary trafficking in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. However, culturing methods for primary neurons require considerable expertise and are not amenable to freeze-thaw cycles. In this protocol, we discuss culturing methods for mixed populations of neural stem/progenitor cells using primary neurospheres. The neurosphere-based culturing methods provide the combined benefits of studying primary neural stem/progenitor cells: amenability to multiple passages and freeze-thaw cycles, differentiation potential into neurons/glia, and transfectability. Importantly, we determined that neurosphere-derived neural stem/progenitor cells and differentiated neurons are ciliated in culture and localize signaling molecules relevant to ciliary function in these compartments. Utilizing these cultures, we further describe methods to study ciliogenesis and ciliary trafficking in neural stem/progenitor cells and differentiated neurons. These neurosphere-based methods allow us to study cilia-regulated cellular pathways, including G-protein-coupled receptor and sonic hedgehog signaling, in the context of neural stem/progenitor cells and differentiated neurons.

Introduction

प्राथमिक पपनी एक सूक्ष्मनलिका आधारित गतिशील subcellular डिब्बे है कि भ्रूण neuronal विकास 1, 2 के दौरान ध्वनि Hedgehog (श्श्श) मार्ग सहित सेलुलर संकेत दे रास्ते, समन्वय में एक संवेदी एंटीना, और वयस्क न्यूरोनल समारोह 3 में बंटे subcellular सिगनल, 4 के रूप में कार्य । इस तरह के श्श्श रिसेप्टर समझौता 5 के रूप में इन रास्ते, के घटक संकेत; मार्ग उत्प्रेरक smoothened (एसएमओ) 6; और Gpr161 7, एक अनाथ जी प्रोटीन युग्मित रिसेप्टर (GPCR) को नकारात्मक रूप श्श्श मार्ग को नियंत्रित करता है, सिलिया के लिए एक गतिशील फैशन में स्थानीय बनाना। एकाधिक GPCRs मस्तिष्क 7, 8, 9, 10 में न्यूरॉन्स में सिलिया को स्थानीय बनाना सूचित किया गया है </sup>, 11, 12, 13, 14, 15, 16। सिलिया और सिलिया-उत्पन्न संकेत रास्ते में दोष कई ऊतकों को प्रभावित और सामूहिक रूप से ciliopathies 17, 18, 19 के रूप में जाना जाता है। Ciliopathy रोग स्पेक्ट्रम अक्सर इस तरह के craniofacial असामान्यताएं 20, 21, 22 के रूप में neurodevelopmental दोष, भी शामिल है। इसके अलावा, हाइपोथेलेमिक न्यूरॉन में प्राथमिक सिलिया केंद्रीय तृप्ति रास्ते को विनियमित, और दोषों केंद्रीय मोटापा 23 में परिणाम, इस तरह के बार्डेट Biedel सिंड्रोम 24 के रूप में स्यन्द्रोमिक ciliopathies में मोटापे को प्रतिबिंबित। इसके अलावा, न्यूरोपेप्टाइड रिसेप्टर सिलिया में संकेत centr को नियंत्रित करता हैअल तृप्ति 11 रास्ते, 14। इस तरह के हिप्पोकैम्पस न्यूरॉन्स में सोमेटोस्टैटिन रिसेप्टर 3 के रूप में adenylyl cyclase तृतीय (ACIII) और GPCRs के सिलिअरी स्थानीयकरण उपन्यास वस्तु की पहचान दोषों और स्मृति घाटे 25, 26 में परिणाम और रोमक अखंडता 27 की कमी समानताएं। सिलिया-उत्पन्न संकेत के विकास के पहलुओं को बारीकी से ऊतक homeostasis से बंधा रहे हैं; विशेष रूप से, सिलिया सेरिबैलम 28, 29 में ग्रेन्युल पूर्वज से उत्पन्न होने वाली श्श्श-उप प्रकार medulloblastomas की प्रगति के लिए महत्वपूर्ण हैं। इस प्रकार, प्राथमिक सिलिया भ्रूण, प्रसव के बाद, और वयस्क न्यूरोनल विकास और समारोह के दौरान महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं।

तंत्रिका स्टेम सेल (एनएससी) subventricular क्षेत्र पार्श्व वेंट्रिकल की (SVZ), हिप्पोकैम्पस के देंताते जाइरस की subgranular क्षेत्र, और में रहते हैंस्तनधारियों 30, 31, 32 में हाइपोथेलेमस में तीसरे निलय की निलय क्षेत्र। एनएससी, multipotent हैं आत्म नवीकरण के लिए क्षमता के अधिकारी, और मस्तिष्क के विकास और पुनर्योजी चिकित्सा 30 के लिए महत्वपूर्ण हैं। SVZ में अधिकांश एनएससी मौन कर रहे हैं और एक एकान्त प्राथमिक पपनी कि, कई मामलों में, पार्श्व वेंट्रिकल 33 के लिए बाहर फैली हुई है मेरे पास है। विभिन्न रिसेप्टर्स की स्थानीयकरण, नीचे की ओर सेलुलर प्रतिक्रियाओं उत्प्रेरण, विशेष रूप से श्श्श, TGFβ, और रिसेप्टर tyrosine kinase रास्ते 2, 34, 35, 36 के संबंध में के माध्यम से प्राथमिक पपनी संकेत है। के बाद से प्राथमिक सिलिया पार्श्व निलय में विस्तार, यह धारणा है कि प्राथमिक सिलिया मस्तिष्कमेरु द्रव (सीएसएफ) एनएससी 37 सक्रिय करने के लिए साइटोकिन्स का पता लगाने के </s> ऊपर। हाल के अध्ययनों से संकेत मिलता है कि श्श्श संकेतन मार्ग और प्राथमिक सिलिया की मरम्मत में स्टेम कोशिकाओं की सक्रियता और घ्राण उपकला, फेफड़े, और गुर्दे की 38, 39, 40, 41 सहित कई ऊतकों के उत्थान के लिए महत्वपूर्ण हैं। हालांकि, जो सीएसएफ से तंत्र एनएससी के साथ संचार और क्या प्राथमिक सिलिया शामिल कर रहे हैं ज्ञात नहीं हैं। संस्कृति में पक्षपाती एनएससी रोमक कर रहे हैं; स्थानीय बनाना इस तरह के एसएमओ और Gpr161 सिलिया में के रूप में श्श्श मार्ग घटकों,; और श्श्श उत्तरदायी 42 कर रहे हैं। इस प्रकार, एनएससी श्श्श मार्ग का अध्ययन करने के लिए एक महत्वपूर्ण मॉडल प्रणाली, सिलिअरी की तस्करी, और neuronal भेदभाव रास्ते के रूप में काम कर सकते हैं। इसके अलावा, एनएससी से विभेदित न्यूरॉन्स भी सिलिअरी तस्करी assays के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है।

Neurospheres neura के प्रसार से उत्पन्न होने वाले मुक्त रूप से प्रवाहित कोशिकाओं के समूहों का गठन कर रहे हैंएल स्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं है कि विशिष्ट विकास कारकों और nonadhesive सतहों 43, 44 की उपस्थिति में हो जाना। Neurospheres सामान्य विकास और रोग 31, 45, 46, 47 में तंत्रिका स्टेम / पूर्वज कोशिकाओं का अध्ययन करने के लिए इन विट्रो संस्कृति मॉडल में के रूप में महत्वपूर्ण काम करते हैं। यहाँ, हम तंत्रिका स्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं संवर्धन के लिए और में न्यूरॉन्स / glia भेदभाव के लिए एक neurosphere आधारित परख का वर्णन। हम विशेष रूप से तंत्रिका स्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं और विभेदित न्यूरॉन्स (चित्रा 1) के सिलिया के घटकों संकेत की तस्करी पर जोर देना। के रूप में प्राथमिक न्यूरॉन्स संवर्धन करने का विरोध किया, प्राथमिक neurospheres, संस्कृति अपेक्षाकृत आसान कर रहे हैं कई मार्ग के लिए उत्तरदायी होते हैं और फ्रीज-पिघलाव चक्र, और में न्यूरॉन्स / glia भेदभाव से गुजरना कर सकते हैं। महत्वपूर्ण रूप से, हम चाहते हैं कि neurosphere व्युत्पन्न तंत्रिका निर्धारितस्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं और विभेदित न्यूरॉन्स संस्कृति में रोमक कर रहे हैं और इन डिब्बों में सिलिअरी समारोह के लिए प्रासंगिक संकेतन अणुओं स्थानीय बनाना। Neurosphere आधारित संवर्धन तरीकों एनएससी और विभेदित न्यूरॉन्स में ciliogenesis और रोमक तस्करी के अध्ययन के लिए एक आदर्श मॉडल प्रणाली के रूप में काम कर सकते हैं।

Protocol

वयस्क माउस मस्तिष्क से Neurospheres की 1. अलगाव isoflurane की अधिक मात्रा से एक वयस्क माउस (लगभग 2 महीने पुरानी) euthanize। दो बार जांचें कि माउस साँस लेने में बंद कर दिया और मौत के तुरंत बाद काटना गया है। कैंची का प्रयो…

Representative Results

एक सप्ताह के लिए एनएससी मध्यम में SVZ से कोशिकाओं चढ़ाना के बाद, चल neurospheres (चित्रा 2A) देखे गए हैं। क्षेत्रों के आकार 50 और 200 सुक्ष्ममापी के बीच अलग-अलग। में लिपटे Laminin एनएससी मध्यम में coverslips 2 दिन…

Discussion

यहाँ, हम पैदा करते हैं और वयस्क माउस SVZ से neurosphere संस्कृतियों को बनाए रखने के लिए एक विधि का वर्णन। संस्कृतियों के बारे में कुछ उचित अंक इस प्रकार हैं। 200 सुक्ष्ममापी – प्रथम, क्षेत्रों के आकार 50 के बीच आम तौर ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Work in S.M.’s laboratory is funded by recruitment grants from CPRIT (R1220) and NIH (1R01GM113023-01).

Materials

12 mm round cover glass Fisherbrand 12-545-80 
24 well plate Falcon 353047
4 % paraformaldehyde Affymetrix 19943
50 ml tube Falcon 352098
95 mm X 15 mm petri dish, slippable lid Fisherbrand FB0875714G 10 cm dish
70 µm cell strainer Falcon 352350
Alexa Fluor 488 Affinipure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 711-545-152 Donkey anti Rabbit, Alexa 488 secondary antibody
Arl13B, Clone N295B/66 Neuromab AB_11000053
B-27 Supplement (50X), serum free ThermoFisher Scientific 17504001 B27
Centrifuge Thermo scientific ST 40R
Cryogenic vial Corning 430488
DAPI Sigma D9542-10MG
Deoxyribonuclease I from bovine pancrease Sigma D5025-15KU Dnase I
Dimethyl sulfoxide Sigma D8418-100ML DMSO
Disposable Vinyl Specimen Molds Sakura Tissue-Tek Cryomold 4565 10 mm X 10 mm X 5 mm
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 10×, Modified, without calcium chloride and magnesium chloride, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture Sigma D1408-500ML PBS
Dumont #5 Forceps Fine science tools 11254-20
FBS  Sigma F9026-500ML
Fluoromount-G solution Southern Biotech 0100-01 mounting solution
GFAP DAKO Z0334
Goat anti Mouse IgG1 Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate ThermoFisher Scientific A-21127 Goat anti Mouse IgG1, Alexa 555 secondary antibody
Goat anti Mouse IgG2a Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate ThermoFisher Scientific A-21137 Goat anti Mouse IgG2a, Alexa 555 secondary antibody
Gpr161 home made N/A
human bFGF Sigma F0291 FGF
hemocytometer Hausser Scientific 0.100 mm deep improved neubauer
Isothesia Henry Schein NDC 11695-0500-2 Isofluorane
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm Sarcoma basement membrane Sigma L2020 Laminin
L-Glutamine (200mM) Sigma G7513
Lipofectamine 3000 Transfection Reagent ThermoFisher Scientific L3000
Mr. Frosty Nalgene  5100-0036
N-2 supplement (100X) ThermoFisher Scientific 17502001 N2
Neurobasal medium Gibco 21103-049
Normal Donkey Serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
OCT compound Sakura Tissue-Tek 4583 OCT
Penicillin-Streptomycin Sigma P4333-100ML
Poly-L-lysine Sigma P4707
Recombinant human EGF protein, CF R and D systems 236-EG-200 EGF
Scissor Fine science tools 14060-10
Superfrost plus microscope slide Fisher scientific 12-550-15 slides
Triton X Bio-Rad 161-0407
Trypsin-EDTA solution (10X) Sigma T4174-100 Trypsin
COSTAR 6 Well Plate, With Lid Flat Bottom Ultra-Low Attachment Surface Polystyrene, Sterile Corning 3471 ultra-low binding 6 well plate
β-tubulin III Covance MMS-435P TUJ1

Referências

  1. Mukhopadhyay, S., Rohatgi, R. G-protein-coupled receptors, Hedgehog signaling and primary cilia. Semin Cell Dev Biol. 33, 63-72 (2014).
  2. Goetz, S. C., Anderson, K. V. The primary cilium: a signalling centre during vertebrate development. Nat Rev Genet. 11, 331-344 (2010).
  3. Guemez-Gamboa, A., Coufal, N. G., Gleeson, J. G. Primary cilia in the developing and mature brain. Neuron. 82, 511-521 (2014).
  4. Louvi, A., Grove, E. A. Cilia in the CNS: the quiet organelle claims center stage. Neuron. 69, 1046-1060 (2011).
  5. Rohatgi, R., Milenkovic, L., Scott, M. P. Patched1 regulates hedgehog signaling at the primary cilium. Science. 317, 372-376 (2007).
  6. Corbit, K. C., et al. Vertebrate Smoothened functions at the primary cilium. Nature. 437, 1018-1021 (2005).
  7. Mukhopadhyay, S., et al. The ciliary G-protein-coupled receptor Gpr161 negatively regulates the Sonic hedgehog pathway via cAMP signaling. Cell. 152, 210-223 (2013).
  8. Hilgendorf, K. I., Johnson, C. T., Jackson, P. K. The primary cilium as a cellular receiver: organizing ciliary GPCR signaling. Curr Opin Cell Biol. 39, 84-92 (2016).
  9. Berbari, N. F., Johnson, A. D., Lewis, J. S., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Identification of ciliary localization sequences within the third intracellular loop of G protein-coupled receptors. Mol Biol Cell. 19, 1540-1547 (2008).
  10. Berbari, N. F., Lewis, J. S., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Bardet-Biedl syndrome proteins are required for the localization of G protein-coupled receptors to primary cilia. Proc Natl Acad Sci USA. 105, 4242-4246 (2008).
  11. Loktev, A. V., Jackson, P. K. Neuropeptide Y family receptors traffic via the Bardet-Biedl syndrome pathway to signal in neuronal primary cilia. Cell Rep. 5, 1316-1329 (2013).
  12. Marley, A., Choy, R. W., von Zastrow, M. GPR88 reveals a discrete function of primary cilia as selective insulators of GPCR cross-talk. PLoS One. 8, e70857 (2013).
  13. Marley, A., von Zastrow, M. DISC1 regulates primary cilia that display specific dopamine receptors. PLoS One. 5, e10902 (2010).
  14. Omori, Y., et al. Identification of G Protein-Coupled Receptors (GPCRs) in Primary Cilia and Their Possible Involvement in Body Weight Control. PLoS One. 10, e0128422 (2015).
  15. Koemeter-Cox, A. I., et al. Primary cilia enhance kisspeptin receptor signaling on gonadotropin-releasing hormone neurons. Proc Natl Acad Sci USA. 111, 10335-10340 (2014).
  16. Brailov, I., et al. Localization of 5-HT(6) receptors at the plasma membrane of neuronal cilia in the rat brain. Brain Res. 872, 271-275 (2000).
  17. Hildebrandt, F. .. ,. ,. T. .. ,. &. a. m. p. ;. K. a. t. s. a. n. i. s. ,. N. .., Benzing, T., Katsanis, N. Ciliopathies. N Engl J Med. 364, 1533-1543 (2011).
  18. Waters, A. M., Beales, P. L. Ciliopathies: an expanding disease spectrum. Pediatr Nephrol. 26, 1039-1056 (2011).
  19. Badano, J. L., Mitsuma, N., Beales, P. L., Katsanis, N. The ciliopathies: an emerging class of human genetic disorders. Annu Rev Genomics Hum Genet. 7, 125-148 (2006).
  20. Novarino, G., Akizu, N., Gleeson, J. G. Modeling human disease in humans: the ciliopathies. Cell. 147, 70-79 (2011).
  21. Brugmann, S. A., Cordero, D. R., Helms, J. A. Craniofacial ciliopathies: A new classification for craniofacial disorders. Am J Med Genet A. 152A (12), 2995-3006 (2010).
  22. Valente, E. M., Rosti, R. O., Gibbs, E., Gleeson, J. G. Primary cilia in neurodevelopmental disorders. Nat Rev Neurol. 10, 27-36 (2014).
  23. Davenport, J. R., et al. Disruption of intraflagellar transport in adult mice leads to obesity and slow-onset cystic kidney disease. Curr Biol. 17, 1586-1594 (2007).
  24. Zaghloul, N. A., Katsanis, N. Mechanistic insights into Bardet-Biedl syndrome, a model ciliopathy. J Clin Invest. 119, 428-437 (2009).
  25. Einstein, E. B., et al. Somatostatin signaling in neuronal cilia is critical for object recognition memory. J Neurosci. 30, 4306-4314 (2010).
  26. Wang, Z., Phan, T., Storm, D. R. The type 3 adenylyl cyclase is required for novel object learning and extinction of contextual memory: role of cAMP signaling in primary cilia. J Neurosci. 31, 5557-5561 (2011).
  27. Berbari, N. F., et al. Hippocampal and cortical primary cilia are required for aversive memory in mice. PLoS One. 9, e106576 (2014).
  28. Han, Y. G., Alvarez-Buylla, A. Role of primary cilia in brain development and cancer. Curr Opin Neurobiol. 20, 58-67 (2010).
  29. Han, Y. G., et al. Dual and opposing roles of primary cilia in medulloblastoma development. Nat Med. 15, 1062-1065 (2009).
  30. Lim, D. A., Alvarez-Buylla, A. The Adult Ventricular-Subventricular Zone (V-SVZ) and Olfactory Bulb (OB) Neurogenesis. Cold Spring Harbor perspectives in biology. 8, (2016).
  31. Shimada, I. S., LeComte, M. D., Granger, J. C., Quinlan, N. J., Spees, J. L. Self-renewal and differentiation of reactive astrocyte-derived neural stem/progenitor cells isolated from the cortical peri-infarct area after stroke. J Neurosci. 32, 7926-7940 (2012).
  32. Mich, J. K., et al. Prospective identification of functionally distinct stem cells and neurosphere-initiating cells in adult mouse forebrain. eLife. 3, e02669 (2014).
  33. Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural stem cells confer unique pinwheel architecture to the ventricular surface in neurogenic regions of the adult brain. Cell stem cell. 3, 265-278 (2008).
  34. Pedersen, L. B., Mogensen, J. B., Christensen, S. T. Endocytic Control of Cellular Signaling at the Primary Cilium. Trends Biochem Sci. , (2016).
  35. Christensen, S. T., Clement, C. A., Satir, P., Pedersen, L. B. Primary cilia and coordination of receptor tyrosine kinase (RTK) signalling. J Pathol. 226, 172-184 (2012).
  36. Clement, C. A., et al. TGF-beta signaling is associated with endocytosis at the pocket region of the primary cilium. Cell reports. 3, 1806-1814 (2013).
  37. Taverna, E., Gotz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis: toward an understanding of the development and evolution of the neocortex. Annu Rev Cell Dev Biol. 30, 465-502 (2014).
  38. Joiner, A. M., Green, W. W., McIntyre, J. C. Primary Cilia on Horizontal Basal Cells Regulate Regeneration of the Olfactory Epithelium. J Neurosci. 35, 13761-13772 (2015).
  39. Inaba, M., Buszczak, M., Yamashita, Y. M. Nanotubes mediate niche-stem-cell signalling in the Drosophila testis. Nature. 523, 329-332 (2015).
  40. Peng, T., et al. Hedgehog actively maintains adult lung quiescence and regulates repair and regeneration. Nature. 526, 578-582 (2015).
  41. Rauhauser, A. A., et al. Hedgehog signaling indirectly affects tubular cell survival after obstructive kidney injury. Am J Physiol: Renal Physiol. 309, F770-F778 (2015).
  42. Chavez, M., et al. Modulation of Ciliary Phosphoinositide Content Regulates Trafficking and Sonic Hedgehog Signaling Output. Dev Cell. 34, 338-350 (2015).
  43. Lobo, M. V., et al. Cellular characterization of epidermal growth factor-expanded free-floating neurospheres. J. Histochem. Cytochem. 51, 89-103 (2003).
  44. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  45. Pastrana, E., Silva-Vargas, V., Doetsch, F. Eyes wide open: a critical review of sphere-formation as an assay for stem cells. Cell stem cell. 8, 486-498 (2011).
  46. Nishino, J., Kim, I., Chada, K., Morrison, S. J. Hmga2 promotes neural stem cell self-renewal in young but not old mice by reducing p16Ink4a and p19Arf Expression. Cell. 135, 227-239 (2008).
  47. Shimada, I. S., Peterson, B. M., Spees, J. L. Isolation of locally derived stem/progenitor cells from the peri-infarct area that do not migrate from the lateral ventricle after cortical stroke. Stroke. 41, e552-e560 (2010).
  48. Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal flow. J Vis Exp. , (2010).
  49. Coles-Takabe, B. L., et al. Don’t look: growing clonal versus nonclonal neural stem cell colonies. Stem Cells. 26, 2938-2944 (2008).
  50. Pal, K., et al. Smoothened determines beta-arrestin-mediated removal of the G protein-coupled receptor Gpr161 from the primary cilium. J Cell Biol. 212, 861-875 (2016).
  51. Caspary, T., Larkins, C. E., Anderson, K. V. The graded response to Sonic Hedgehog depends on cilia architecture. Dev Cell. 12, 767-778 (2007).
  52. Bangs, F. K., Schrode, N., Hadjantonakis, A. K., Anderson, K. V. Lineage specificity of primary cilia in the mouse embryo. Nat Cell Biol. 17, 113-122 (2015).
  53. Berbari, N. F., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Lewis, J. S., Mykytyn, K. Hippocampal neurons possess primary cilia in culture. J Neurosci Res. 85, 1095-1100 (2007).
  54. Paridaen, J. T., Wilsch-Brauninger, M., Huttner, W. B. Asymmetric inheritance of centrosome-associated primary cilium membrane directs ciliogenesis after cell division. Cell. 155, 333-344 (2013).
  55. Kiprilov, E. N., et al. Human embryonic stem cells in culture possess primary cilia with hedgehog signaling machinery. J Cell Biol. 180, 897-904 (2008).
  56. Mukhopadhyay, S., et al. TULP3 bridges the IFT-A complex and membrane phosphoinositides to promote trafficking of G protein-coupled receptors into primary cilia. Genes Dev. 24, 2180-2193 (2010).
  57. Ishikawa, H., Marshall, W. F. Efficient live fluorescence imaging of intraflagellar transport in mammalian primary cilia. Methods Cell Biol. 127, 189-201 (2015).
check_url/pt/55315?article_type=t

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Citar este artigo
Shimada, I. S., Badgandi, H., Somatilaka, B. N., Mukhopadhyay, S. Using Primary Neurosphere Cultures to Study Primary Cilia. J. Vis. Exp. (122), e55315, doi:10.3791/55315 (2017).

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