Summary

Экстракорпоральное записи мезентериального афферентными нервными активность у мышей тощей и ободочной кишки Сегменты

Published: October 25, 2016
doi:

Summary

Mesenteric afferent nerves convey information from the gastrointestinal tract towards the brain regarding normal homeostasis as well as pathophysiology. Gastrointestinal afferent nerve activity can be assessed by mounting isolated intestinal segments with attached afferent nerves into an organ bath, isolating the nerve, and assessing basal as well as stimulated activity.

Abstract

Афферентные нервы не только передают информацию относительно нормальной физиологии, но и сигнал нарушенного гомеостаза и патофизиологические процессы различных органов и систем от периферии к центральной нервной системе. Таким образом, повышенная активность или «сенсибилизация» брыжеечных афферентных нервов было выделено важную роль в патофизиологии висцеральной гиперчувствительностью и брюшных болевых синдромов.

Мезентериальный афферентного нерва активность может быть измерена в пробирке в изолированной кишечного сегмента , который установлен в ванночку специально построенном и из которого выделяют чревного нерва, что позволяет исследователям непосредственно оценить нервную активность , примыкающий к желудочно – кишечного сегмента. Активность может быть записан на базовой линии в стандартных условиях, во время вздутие сегмента или после добавления фармакологических соединений, поставляемых intraluminally или serosally. Этот метод позволяетисследователь легко изучить влияние препаратов, нацеленных на периферическую нервную систему в контрольных образцах; кроме того, она предоставляет важную информацию о том, как нейронная активность изменяется во время болезни. Следует отметить , однако , что измерение афферентный нейронную огневую активность только составляет одну ретрансляционную станцию в комплексе нейронального сигнального каскада, и исследователи должны иметь в виду , чтобы не упускать из виду нейронную активность на других уровнях (например, ганглии задних корешков, спинного мозга или центральной нервной системы ) для того, чтобы полностью уяснения сложную нейронную физиологию в отношении здоровья и болезни.

Часто используемые приложения включают в себя изучение активности нейронов в ответ на введение липополисахарида и изучение афферентной нервной активности на животных моделях синдрома раздраженного кишечника. В более поступательным подходе сегмент кишечного изолированный мышь может подвергаться ободочной супернатанатах пациентов с СРК. Кроме того, модификацияэтой техники было недавно показано, что применимо в ободочной образцов человека.

Introduction

Сенсорная сигнализация и восприятие боли представляет собой сложный процесс, который является результатом сложной взаимосвязи между афферентных нервов, нейронов спинного мозга, восходящей и нисходящей облегчающее и ингибирующих путей и нескольких различных областях мозга. Таким образом, изменения в одном или нескольких из этих уровней может привести к сенсорной сигнализации измененном и висцеральной боли при болезненных состояниях. Для того, чтобы изучить все эти различные аспекты нескольких методов сенсорной сигнализации были разработаны в диапазоне от экспериментов одиночных клеток (например, изображений кальция на нейроны) до целых животных моделях (например, поведенческие реакции , такие как ответ висцеромоторный). Техника , описанная в данной статье позволяет исследователям конкретно оценивать афферентную активность нерва в пробирке из изолированного сегмента тонкой кишки или толстой кишки у грызунов. Короче говоря, изолированный желудочно-кишечный сегмент (обычно тощей или толстой кишки) установлен в регистрирующей камере, специально построенном перфузией физиологическим KРЭП решение. Внутренностный нерв отсекали и соединен с электродом, позволяющим регистрацию афферентной активности нейронов в висцеральных или тазовых афферентных нервов. Нервные активность может быть записана базально или в ответ на повышение внутрипросветного давления и / или фармакологические соединения , которые могут быть применены либо непосредственно в камеру для записи (serosally), или с помощью внутриполостной перфузату ( через слизистую оболочку) , чтобы оценить их воздействие на афферентную разряда 1-6 , Следует отметить, что Висцеральные нервы также содержат эфферентные волокна и viscerofugal афферентов в дополнение к сенсорному афферентов. Одним из основных преимуществ экс естественных условиях висцеральной записи нерва является тот факт , что исследователи могут количественно нервную активность без модуляции или входного сигнала от центральной нервной системы, позволяя изучать прямое действие локально применяемых соединений на нервную активность. Кроме того, мониторинг жизненно важных параметров, как это необходимо , используя подход , в естественных условиях (см ниже), равно по более актуальной. В пробирке внутренностный записи наконец -то гораздо меньше времени , чем его коллега в естественных условиях.

Афферентный нейронная активность в ответ на другие раздражители, такие как слизистые оболочки поглаживание, зондирующих с помощью волосков фон Фрея или растягивающих сегмента, могут быть изучены в модифицированной экспериментальной установки, в которых кишечная ткань возлагали и разложен в продольном направлении (что, в отличие от наша установка , используя неповрежденный сегмент), как это было описано в предыдущем выпуске 7,8. Кроме того, совсем недавно, методика была описана для изучения ободочной активации афферентных нервных в самой кишечной стенки через визуализации кальция, снова используя скована, продольно открыт сегмент 9.

Альтернативная версия этой методики в естественных условиях состоит из измерения нейронную активацию вблизи входа в афферентной в спинной мозг. Короче говоря, седативные животное помещается в положении лежа, еxposing пояснично – крестцового спинного мозга , к которому афферентный нерв процентных проектов посредством ламинэктомии, строя парафином заполненные хорошо используя кожу разреза и драпировка спинной корешок над платиновым биполярного электрода 10,11. Этот метод, кроме того, позволяет исследователям характеризовать волокна, основанные на их скорости проводимости, и различают немиелинизированные С-волокна из тонко миелиновых Aδ-волокон. Кроме того, спинные корешки исключительно содержат сенсорные афферентные волокна, в отличие от неоднозначного афферентные и эфферентные висцеральных нервов, упомянутых ранее.

Запись афферентного разряда нерва в пробирке из изолированных сегментов кишечника также может быть сделано с использованием человеческих образцов, как две исследовательские группы независимо друг от друга , опубликованных первый в человеке рукописи записи ободочной афферентную активность нервной системы у человека резекции образцов 12,13. Реализация этого метода может привести к более легко translatiна мышиных данных в гуманной состоянии, и может позволить исследователям легко идентифицировать наркотики с таргетингом на сенсибилизированные чувствительного нерва. Клиническое значение , характеризующее афферентного нерва активности, а также открытие новых терапевтических реагентов , которые нацелены на непомерную афферентную нервную активность, был подробно обсужден многими специалистами в области 14-19.

Вышеупомянутая технология в пробирке дополняет более широко известный в измерении естественных условиях афферентной нервной активности. Во время измерения нейрональной активности в естественных условиях, нервной активности может быть измерено непосредственно в седации животного , в течение которого сегмент интереса, была идентифицирована и впоследствии интубацию, и жидкий парафин заполненные хорошо строится с помощью брюшной стенки и кожи грызуна 20. Афферентных нервов, представляющий интерес, а затем идентифицированы, разрезали и помещали на биполярного платинового электрода, что позволяет нейронные активности проводились измереният. Этот метод позволяет исследователю модулировать афферентную нервную активность в живых хотя и седативных животных; как таковой, можно изучить нейронную активность в ответ на помехах, таких как полостной растяжением или внутривенного введения соединения.

Поступательное исследование в настоящее время в основном сосредоточена на применении надосадочных человека , полученных (например., Из ободочной биопсий, культивируемых мононуклеарных клеток периферической крови и т.п.) на тощей кишки и / или толстой афферентов мыши 21,22. Исследователи могут непосредственно применять супернатантов либо в ванночку или в просвете решение, которое perfuses сегмент кишечника, так что дифференциальные эффекты серозной против применения слизистых оболочек могут быть изучены на афферентного разряда нерва. Таким образом, было показано, что ободочной слизистой биопсии supernatans у пациентов с синдромом раздраженного кишечника может вызвать повышенную чувствительность мыши в ободочной афферентов, морской свинки субмукозных нейронов и мыши спинного корняганглиозные нейроны 21,23,24.

И, наконец, запись нейронную активность не ограничивается мезентериальные и / или тазовой нейронов, иннервирующих желудочно-кишечного тракта. Другие продемонстрировали , что нервные записи могут быть выполнены в афферентов подачи коленного сустава 25, тогда как другие охарактеризовали мочевой пузырь афферентный нервную активность , а также 26-28, и показали , что тазовые афферентов из мочевого пузыря, а также желудочно – кишечного тракта сходятся, что может привести к нейрональной перекрестные помехи 29.

Protocol

Все эксперименты на животных, описанные ниже, были одобрены Комитетом по медицинской этике и использование экспериментальных животных в Университете Антверпена (номер файла 2012-42) путем. 1. Подготовка ткани из тощей и ободочной Афферентные Нервы Получение тощей аф?…

Representative Results

Тощей афферентного нерва активность измеряли в исходном состоянии и в ответ на пандус вздутие в 9 из восьми недельных самец-1 мышей. Животных содержали в группах в стандартных условиях (6 животных в клетке, 20 – 22 ° C, влажность 40 – 50%, 12 ч светло-темного цикла) с неограниченн?…

Discussion

Протокол , используемый в данной работе описан воспроизводимый лабораторной техники для изучения брыжеечной нерва активность афферентный у грызунов, которые используются в нашей группе и других 3,4,7,8,12,20,21,31. Критические шаги в рамках протокола включают быструю изоляцию ткани, ст…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SN performed the experiments described above, performed the data analysis and drafted the manuscript. AD and JDM implemented the technique at our research facilities and aided in the data analysis. HC aided in performing the experiments. WJ, CK and DG assisted in implementing the afferent measurement technique in our lab, the data analysis and interpretation of the results. SF, JDM and BDW designed the study. All authors critically read and approved the final manuscript. SN is an aspirant of the Fund for Scientific Research (FWO), Flanders (11G7415N). This work was supported financially by the FWO (G028615N and G034113N).

Materials

sodium chloride (NaCl) VWR Chemicals 27,810,295 compound Krebs solution
potassium chloride (KCl) Acros organics 196770010 compound Krebs solution
sodium dihydrogen phosphate (NaH2PO4) VWR Chemicals 1,063,461,000 compound Krebs solution
sodium bicarbonate (NaHCO3) Merck 1,063,291,000 compound Krebs solution
magnesium sulfate (MgSO4) Merck 1,058,861,000 compound Krebs solution
calcium chloride (CaCl2) Merck 23,811,000 compound Krebs solution
D-glucose VWR Chemicals 1011175P compound Krebs solution
Distilled water compound Krebs solution
PVC tubing Scientific Laboratory Supplies The intestinal segment should be mounted over PVC tubing
Silicone tubing Scientific Laboratory Supplies The rest of the tubing, ideally silicone-based – more easily dislodging of debris in the tubing
Silk thread Pearsall Limited 10B15S220 Attachment of the segment over the PVC tubing
Syringe driver Harvard Apparatus 55-2222 Intraluminal infusion of Krebs
Binocular – including 10x magnification in oculair Zeiss STEMI 2000 Optimal visualization for the dissection of the afferent nerve
Homeothermic Blanket Control Unit Harvard Apparatus 507214 Heating of the organ chamber
Custom made organ bath with Sylgard covered bottom
Spike2 software Recording and analysis of the data
Insect pins, 500 pieces, stainless steel, diameter 0.2 mm Austerlitz insect pins minutiens Dissection of the afferent nerve
Tweezer Dumont #5 inox 11cm World Precision Instrument 500341 Dissection of the afferent nerve
Scissors, spring, 14 cm World Precision Instrument 15905 Dissection of the afferent nerve
DB digitimer  NL 108T2/10 pressure transducer
Micromanipulator Narishige M-3333 3D manipulation of the suction electrode
Micromanipulator X-4 rotating block 3D manipulation of the suction electrode
Micromanipulator GJ-8 magnetic stand 3D manipulation of the suction electrode
LightSource Euromex Microscopes Holland EK-1 Optimal visualization for the dissection of the afferent nerve
CED 1401 Recording Apparatus Recording of afferent nerve activity
Humbug 50/60Hz Noise Eliminator Quest Scientific Instruments Elimination of background noise
Infusion Pump Gibson Minipuls 2 Infusion of the organ chamber in which the segment is mounted
Microelectrode Holder Half Cells 1.5 mm World Precision Instrument MEH2SW Suction electrode for isolation of the afferent fiber
Borosilicate Glass Capillaries, 300 pc; 1.5/0.84 OD/ID World Precision Instrument 1B150-4 Capillary for the isolation of the afferent nerve

Referências

  1. Donovan, J., Grundy, D. Endocannabinoid modulation of jejunal afferent responses to LPS. Neurogastroenterol Motil. 24 (10), 956-e465 (2012).
  2. Gregersen, H., Jiang, W., Liao, D., Grundy, D. Evidence for stress-dependent mechanoreceptors linking intestinal biomechanics and sensory signal transduction. Exp Physiol. 98 (1), 123-133 (2013).
  3. Keating, C., et al. Afferent hypersensitivity in a mouse model of post-inflammatory gut dysfunction: role of altered serotonin metabolism. J Physiol. 586 (18), 4517-4530 (2008).
  4. Liu, C. Y., Jiang, W., Muller, M. H., Grundy, D., Kreis, M. E. Sensitization of mesenteric afferents to chemical and mechanical stimuli following systemic bacterial lipopolysaccharide. Neurogastroenterol Motil. 17 (1), 89-101 (2005).
  5. Deiteren, A., et al. Mechanisms contributing to visceral hypersensitivity: focus on splanchnic afferent nerve signaling. Neurogastroenterol Motil. 27 (12), 1709-1720 (2015).
  6. Nullens, S., et al. The effect of prolonged CLP-induced sepsis on mesenteric afferent nerve activity in mice. Neurogastroenterol Motil. 27 (Suppl 2), 22 (2015).
  7. Brierley, S. M., Jones, R. C., Gebhart, G. F., Blackshaw, L. A. Splanchnic and pelvic mechanosensory afferents signal different qualities of colonic stimuli in mice. Gastroenterology. 127 (1), 166-178 (2004).
  8. Feng, B., Gebhart, G. F. In vitro functional characterization of mouse colorectal afferent endings. J Vis Exp. (95), e52310 (2015).
  9. Travis, L., Spencer, N. J. Imaging stretch-activated firing of spinal afferent nerve endings in mouse colon. Front Neurosci. 7, 179 (2013).
  10. De Schepper, H. U., et al. TRPV1 receptor signaling mediates afferent nerve sensitization during colitis-induced motility disorders in rats. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 294 (1), G245-G253 (2008).
  11. Sengupta, J. N., Gebhart, G. F. Characterization of mechanosensitive pelvic nerve afferent fibers innervating the colon of the rat. J Neurophysiol. 71 (6), 2046-2060 (1994).
  12. Jiang, W., et al. First-in-man’: characterising the mechanosensitivity of human colonic afferents. Gut. 60 (2), 281-282 (2011).
  13. Peiris, M., et al. Human visceral afferent recordings: preliminary report. Gut. 60 (2), 204-208 (2011).
  14. Brookes, S. J., Spencer, N. J., Costa, M., Zagorodnyuk, V. P. Extrinsic primary afferent signalling in the gut. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 10 (5), 286-296 (2013).
  15. Bulmer, D. C., Grundy, D. Achieving translation in models of visceral pain. Curr Opin Pharmacol. 11 (6), 575-581 (2011).
  16. De Winter, B. Y., De Man, J. G. Interplay between inflammation, immune system and neuronal pathways: effect on gastrointestinal motility. World J Gastroenterol. 16 (44), 5523-5535 (2010).
  17. Akbar, A., Yiangou, Y., Facer, P., Walters, J. R., Anand, P., Ghosh, S. Increased capsaicin receptor TRPV1-expressing sensory fibres in irritable bowel syndrome and their correlation with abdominal pain. Gut. 57 (7), 923-929 (2008).
  18. De Schepper, H. U., et al. TRPV1 receptors on unmyelinated C-fibres mediate colitis-induced sensitization of pelvic afferent nerve fibres in rats. J Physiol. 586 (21), 5247-5258 (2008).
  19. Vermeulen, W., et al. Role of TRPV1 and TRPA1 in visceral hypersensitivity to colorectal distension during experimental colitis in rats. Eur J Pharmacol. 698 (1-3), 404-412 (2013).
  20. Booth, C. E., Shaw, J., Hicks, G. A., Kirkup, A. J., Winchester, W., Grundy, D. Influence of the pattern of jejunal distension on mesenteric afferent sensitivity in the anaesthetized rat. Neurogastroenterol Motil. 20 (2), 149-158 (2008).
  21. Hughes, P. A., et al. Sensory neuro-immune interactions differ between irritable bowel syndrome subtypes. Gut. 62 (10), 1456-1465 (2013).
  22. Hughes, P. A., et al. Immune derived opioidergic inhibition of viscerosensory afferents is decreased in Irritable Bowel Syndrome patients. Brain Behav Immun. 42, 191-203 (2014).
  23. Buhner, S., et al. Neuronal activation by mucosal biopsy supernatants from irritable bowel syndrome patients is linked to visceral sensitivity. Exp Physiol. 99 (10), 1299-1311 (2014).
  24. Wouters, M. M., et al. Histamine Receptor H1-mediated Sensitization of TRPV1 Mediates Visceral Hypersensitivity and Symptoms in Patients With Irritable Bowel Syndrome. Gastroenterology. , (2016).
  25. Brenn, D., Richter, F., Schaible, H. G. Sensitization of unmyelinated sensory fibers of the joint nerve to mechanical stimuli by interleukin-6 in the rat: an inflammatory mechanism of joint pain. Arthritis Rheum. 56 (1), 351-359 (2007).
  26. Christianson, J. A., Liang, R., Ustinova, E. E., Davis, B. M., Fraser, M. O., Pezzone, M. A. Convergence of bladder and colon sensory innervation occurs at the primary afferent level. Pain. 128 (3), 235-243 (2007).
  27. Daly, D. M., Chess-Williams, R., Chapple, C., Grundy, D. The inhibitory role of acetylcholine and muscarinic receptors in bladder afferent activity. Eur Urol. 58 (1), 22-28 (2010).
  28. Minagawa, T., Wyndaele, M., Aizawa, N., Igawa, Y., Wyndaele, J. J. Mechanisms of pelvic organ cross-talk: 2. Impact of colorectal distention on afferent nerve activity of the rat bladder. J Urol. 190 (3), 1123-1130 (2013).
  29. Wyndaele, M., et al. Mechanisms of pelvic organ crosstalk: 1. Peripheral modulation of bladder inhibition by colorectal distention in rats. J Urol. 190 (2), 765-771 (2013).
  30. Keating, C., Nocchi, L., Yu, Y., Donovan, J., Grundy, D. Ageing and gastrointestinal sensory function: Altered colonic mechanosensory and chemosensory function in the aged mouse. J Physiol. , (2015).
  31. Valdez-Morales, E. E., et al. Sensitization of Peripheral Sensory Nerves by Mediators From Colonic Biopsies of Diarrhea-Predominant Irritable Bowel Syndrome Patients: A Role for PAR2. Am J Gastroenterol. 108 (10), 1634-1643 (2013).
check_url/pt/54576?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Nullens, S., Deiteren, A., Jiang, W., Keating, C., Ceuleers, H., Francque, S., Grundy, D., De Man, J. G., De Winter, B. Y. In Vitro Recording of Mesenteric Afferent Nerve Activity in Mouse Jejunal and Colonic Segments. J. Vis. Exp. (116), e54576, doi:10.3791/54576 (2016).

View Video