Summary

Isolering och karakterisering av enskilda celler från zebrafiskembryon

Published: March 12, 2016
doi:

Summary

This protocol describes a method for isolating single cells from zebrafish embryos, enriching for cells of interest, capturing zebrafish cells in microfluidic based single cell multiplex systems, and assessing gene expression from single cells.

Abstract

The zebrafish (Danio rerio) is a powerful model organism to study vertebrate development. Though many aspects of zebrafish embryonic development have been described at the morphological level, little is known about the molecular basis of cellular changes that occur as the organism develops. With recent advancements in microfluidics and multiplexing technologies, it is now possible to characterize gene expression in single cells. This allows for investigation of heterogeneity between individual cells of specific cell populations to identify and classify cell subtypes, characterize intermediate states that occur during cell differentiation, and explore differential cellular responses to stimuli. This study describes a protocol to isolate viable, single cells from zebrafish embryos for high throughput multiplexing assays. This method may be rapidly applied to any zebrafish embryonic cell type with fluorescent markers. An extension of this method may also be used in combination with high throughput sequencing technologies to fully characterize the transcriptome of single cells. As proof of principle, the relative abundance of cardiac differentiation markers was assessed in isolated, single cells derived from nkx2.5 positive cardiac progenitors. By evaluation of gene expression at the single cell level and at a single time point, the data support a model in which cardiac progenitors coexist with differentiating progeny. The method and work flow described here is broadly applicable to the zebrafish research community, requiring only a labeled transgenic fish line and access to microfluidics technologies.

Introduction

De flesta av dagens studier av cell- och molekylärbiologi är baserade på medelvärden befolknings. Emellertid kan viktiga biologiska händelser maskeras av dessa traditionella populationsbaserade analyser, eftersom små populationer kan spela viktiga roller i biologiska processer och sjukdomar resultatet. Förstå genuttryck i heterogena populationer vid den enda cellnivå kan (och har) leda till relevanta biologiska och kliniska insikter 1,2. Berör embryonala utvecklingsstudier, i en större population av celler, stamceller är ofta underrepresenterade, vilket gör det svårt att upptäcka subtila förändringar i genuttryck som slutligen initiativ till beslut cell öde 3. På liknande sätt kan en enda cell typ har olika expressionsprofiler som svar på mikromiljön 4. Till exempel, bosatta endotelceller i samma organ eller i olika organ (t ex., Aorta eller njure) uppvisar signifikant heterogenitet trots att dela gemensamma MORPhological och funktionella egenskaper 5. Dessutom kan cancerceller befolka samma tumör också ha varierande molekyl profiler eller mutationer vid den enda cellnivå 6.

I modellsystem har transkriptomik i enstaka celler framgångsrikt identifierat nya cellpopulationer, kännetecknad mellantillstånd som uppstår under celldifferentiering, och avslöjade differential cellulära svar på stimuli 7,8,9. Sådana insikter skulle ha maskerats i konventionella populationsbaserade studier. Zebrafisk embryon är en oerhört underutnyttjade källa stam, stamfader, och differentierande celler för att utforska frågor om en enda cell heterogenitet och molekylär reglering av cellulära identiteter under utveckling. Deras mycket stereotypa, ex vivo utveckling och enkel genetisk manipulation gör dem till en utmärkt modellsystem för detta synsätt 10,11. Närmare bestämt en stor begränsning för tolkning av en enda cell gene uttryck data är att säker identifiering av nya mellancelltillstånd under utveckling kräver mycket noggrann timing av vävnad samling 9. Detta är nödvändigt för att säkerställa att heterogenitet mellan infångade cellerna representerar heterogenitet i en vävnad vid en enda tidpunkt snarare än heterogenitet i genuttryck presenteras av åldersberoende celldifferentiering. Jämfört med möss, kan zebrafisk embryoutveckling exakt synkroniseras över ett stort antal embryon 12. Dessutom, med stora kopplingsstorlekar, zebrafisk embryon kan användas som en rik källa till stam- och stamfaderceller.

Detta protokoll beskriver en metod för att isolera celler från zebrafisk embryon och fånga enskilda celler med hjälp av en kommersiellt tillgänglig integrerad mikrofluidik krets (IFC) chip och autoprep system för QRT-PCR genexpressionsanalys. Detta protokoll kan vara snabbt överföras till någon hög genomströmning multiplexering analyser inklusive helatranskriptom sekvense som tillåter mer omfattande analys av cell heterogenitet 13. Det finns också flera fördelar för traditionella genuttryck analyser. Den enda cell isolering protokoll ger hög lönsamhet efter FACS, vilket minskar andelen komprometterade celler som ingår i program nedströms. Genom att använda en IFC, kan infångade cellerna observeras direkt för att utvärdera en avskiljningsnivå och bedöma cell hälsa morfologiskt. Dessutom är detta protokoll i stort sett tillämpas på zebrafisk forskarsamhället, som endast kräver en märkt transgen fisk linje och tillgång till mikroflödescell tekniker för avskiljning.

Som bevis på principen, var enskilda celler härledda från hjärt stamceller isoleras och fångas på ett IFC-chip, och sedan den relativa förekomsten av hjärtdifferentieringsmarkörer mättes med QRT-PCR. Genexpressionsanalys vid den enda cellnivå visar att hjärt progenitorceller samexistera med deras differentiating avkomma. Insikten från encelliga profilering av hjärt stamceller kan belysa heterogenitet i genuttryck mönster bland hjärt progenitorceller under ryggrads utveckling, som kan ha maskerats i traditionella populationsbaserade analyser.

Protocol

Detta protokoll kräver användning av levande, vuxna zebrafisk för att producera embryon. Embryona skördas för vävnadssamling. Det är viktigt att få godkännande från lämpliga etik prövningsnämnder för att genomföra detta experiment. 1. Skaffa Lansering i Embryon Dagen före experimentet, förbereda friska, vuxna zebrafisk för avel. Placera en hane och en hona på motsatta sidor av en tydlig avdelare i en avel tank. Upprepa 1.1 för så många avelstankar s…

Representative Results

Som bevis i princip var genuttryck bedöms utforska differentieringsdynamik under hjärt utveckling. I zebrafisk, hjärt progenitorer uppstår från en mesodermal population av celler som migrerar till den anteriora lateralplattan mesoderm där de smälter samman för att bilda den linjära hjärta tub. Före fusion, hjärt stamceller börjar uttrycka transkriptionsfaktor Nkx2.5 (NK2 homeobox 5), som tros vara den tidigaste specifik markör för hjärt stamceller 16,17.</su…

Discussion

Den metod som beskrivs häri använder uttryck av ett fluorescerande protein under kontroll av en celltypsspecifik promotor för att berika en population av hjärt progenitorceller från zebrafisk embryon för användning i mikroflödesassisterad enda cell capture system för bedömning expression av en underuppsättning av hjärt gener i singel celler. Förutsatt att FACS laser excitations- och emissionsförmåga är kompatibla med fluoroforen (er) för val, kan denna metod användas för något fluorescerande reporter…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Dr. C. Geoffrey Burns for fish stock. The authors are grateful to UNC Flow Cytometry Core Facility, UNC-CGIBD AAC core for resources enabling this project, and the ZAC facility for animal care. L.S. is supported by NIH T32 grant HL069768-13 (PI, Nobuyo Maeda). N.F. is supported by NSF Graduate Research Fellowship NSF-DGE-1144081. This study was supported by NIH P30DK034987 grant (to UNC Advanced Analytics Core), American Heart Association Scientist Development Grant 13SDG17060010 and Ellison Medical Foundation New Scholar Grant AG-NS-1064-13 (to Dr. Qian), and NIH R00 HL109079 grant (to Dr. Liu).

Materials

Supplies
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11254-20 For removing the chorion from embryos
Microcentrifuge tube 2 mL GeneMate C-3261-1
40 um cell strainer Biobasic SP104151
35 mm culture dish Falcon 351008
FACS tubes topped with 35 um cell strainer Falcon 352235
P1000 and tips Rainin 17005089
P20 and tips Rainin 17005091
IFC chip manufacturer's protocol Fluidigm 100-6117 Version 100-6117 E1 was used in representative experiment
Wide bore pastuer glass pippette VWR 14673-010 For transferring embryos
Adult wild type zebrafish N/A We used AB line
Adult transgenic zebrafish N/A We used Tg(nkx2.5:ZsYellow)
Name Company Catalog Number Comments
Reagents for cell dissociation
Double distilled water N/A
Instant Ocean Sea Salt Instant Ocean SS15-10
NaCl FisherScientific S271-3 make stock in water and use for de-yolking buffer
KCl Sigma Aldrich P5405 make stock in water and use for de-yolking buffer
NaHCO3 Sigma Aldrich S6014 make stock in water and use for de-yolking buffer
Leibovitz's L-15 Gibco 21083-027
FBS FisherScientific 03-600-511 Heat inactivate; any brand of FBS should be fine
Cell Dissociation Reagent 1 -TrypLE Life Technologies 12605-010 Store at room temperature.
Cell Dissociation Reagent 2 – FACSmax Genlantis T200100 Store -20; thaw on ice; bring to room temp before use
pronase (optional) Sigma P5147
L/D Dye – Sytox Blue Life Technologies S34857 Any live/dead stain suitable for flow cytometry will work
Trypan Blue Gibco 15250-061
Name Company Catalog Number Comments
Reagents for IFC plate use and qRT-PCR
Gene-specific probes Probes will vary by experiment
TaqMan Probe ef1a Life Technologies Dr03432748_m1
TaqMan Probe gata4 Life Technologies Dr03443262_g1
TaqMan Probe nk2-5 Life Technologies Dr03074126_m1
TaqMan Probe myl7 Life Technologies Dr03105700_m1
TaqMan Probe vmhc Life Technologies Dr03431136_m1
TaqMan Probe isl1 Life Technologies Dr03425734_m1
TaqMan Gene Expression Master Mix Life Technologies 4369016
Reagents listed in IFC manufacturer's protocol
C1 Reagent Kit Fluidigm 100-5319 Reagents for loading cells onto IFC plate
Ambion Single Cell-to-CTTM Life Technologies 4458237 Reagents for reverse transcription and pre-amplification steps
Molecular Biology Quality Water Corning 46-000CM
C1 IFC for PreAmp (5-10 um) Fluidigm 100-5757 IFC plate for small cells
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
C1 AutoPrep machine Fluidigm 100-5477 For IFC plate use
Hemocytometer  Sigma Aldrich Z359629 For counting cells and assessing cell size
Dissecting microscope For removing embryos from chorion
Tissue culture microscope For assessing single cell digestion
FACS machine For isolating cells of interest

Referências

  1. Speicher, M. R. Single-cell analysis: toward the clinic. Genome medicine. 5, (2013).
  2. Macaulay, I. C., Voet, T. Single cell genomics: advances and future perspectives. PLoS genetics. 10, e1004126 (2014).
  3. Marco, E., et al. Bifurcation analysis of single-cell gene expression data reveals epigenetic landscape. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111, 5643-5650 (2014).
  4. Yin, H., Marshall, D. Microfluidics for single cell analysis. Current opinion in biotechnology. 23, 110-119 (2012).
  5. Garlanda, C., Dejana, E. Heterogeneity of endothelial cells. Specific markers. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 17, 1193-1202 (1997).
  6. Diaz-Cano, S. J. Tumor heterogeneity: mechanisms and bases for a reliable application of molecular marker design. International journal of molecular sciences. 13, 1951-2011 (2012).
  7. Guo, G., et al. Mapping cellular hierarchy by single-cell analysis of the cell surface repertoire. Cell stem cell. 13, 492-505 (2013).
  8. Guo, G., et al. Resolution of cell fate decisions revealed by single-cell gene expression analysis from zygote to blastocyst. Developmental cell. 18, 675-685 (2010).
  9. Treutlein, B., et al. Reconstructing lineage hierarchies of the distal lung epithelium using single-cell RNA-seq. Nature. 509, 371-375 (2014).
  10. Kimmel, C. B. Genetics and early development of zebrafish. Trends in genetics : TIG. 5, 283-288 (1989).
  11. Liu, J., Stainier, D. Y. Zebrafish in the study of early cardiac development. Circulation research. 110, 870-874 (2012).
  12. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 203, 253-310 (1995).
  13. Zhao, S., Fung-Leung, W. P., Bittner, A., Ngo, K., Liu, X. Comparison of RNA-Seq and microarray in transcriptome profiling of activated T cells. PloS one. 9, e78644 (2014).
  14. McCall, M. N., McMurray, H. R., Land, H., Almudevar, A. On non-detects in qPCR data. Bioinformatics. 30, 2310-2316 (2014).
  15. Schmittgen, T. D., Livak, K. J. Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T) method. Nature. 3, 1101-1108 (2008).
  16. Lyons, I., et al. Myogenic and morphogenetic defects in the heart tubes of murine embryos lacking the homeo box gene Nkx2-5. Genes & development. 9, 1654-1666 (1995).
  17. Chen, J. N., Fishman, M. C. Zebrafish tinman homolog demarcates the heart field and initiates myocardial differentiation. Development. 122, 3809-3816 (1996).
  18. Zhou, Y., et al. Latent TGF-beta binding protein 3 identifies a second heart field in zebrafish. Nature. 474, 645-648 (2011).
  19. Paffett-Lugassy, N., et al. Heart field origin of great vessel precursors relies on nkx2.5-mediated vasculogenesis. Nature cell biology. 15, 1362-1369 (2013).
  20. McCurley, A. T., Callard, G. V. Characterization of housekeeping genes in zebrafish: male-female differences and effects of tissue type, developmental stage and chemical treatment. BMC molecular biology. 9, 102 (2008).
  21. Tang, R., Dodd, A., Lai, D., McNabb, W. C., Love, D. R. Validation of zebrafish (Danio rerio) reference genes for quantitative real-time RT-PCR normalization. Acta biochimica et biophysica Sinica. 39, 384-390 (2007).
  22. Serbedzija, G. N., Chen, J. N., Fishman, M. C. Regulation in the heart field of zebrafish. Development. 125, 1095-1101 (1998).
  23. de Pater, E., et al. Distinct phases of cardiomyocyte differentiation regulate growth of the zebrafish heart. Development. 136, 1633-1641 (2009).
  24. Hami, D., Grimes, A. C., Tsai, H. J., Kirby, M. L. Zebrafish cardiac development requires a conserved secondary heart field. Development. 138, 2389-2398 (2011).
  25. Yelon, D., Horne, S. A., Stainier, D. Y. Restricted expression of cardiac myosin genes reveals regulated aspects of heart tube assembly in zebrafish. Developmental biology. 214, 23-37 (1999).
  26. Molina, N., et al. Stimulus-induced modulation of transcriptional bursting in a single mammalian gene. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 20563-20568 (2013).

Play Video

Citar este artigo
Samsa, L. A., Fleming, N., Magness, S., Qian, L., Liu, J. Isolation and Characterization of Single Cells from Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (109), e53877, doi:10.3791/53877 (2016).

View Video