Here, we describe methods for isolating primary mouse epicardial cells by an outgrowth culture assay and assessing the functional migration of epicardial-derived cells (EPDC) using an ex vivo heart culture system. These protocols are suitable for identifying genetic and chemical modulators of epicardial epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) and motility.
Один слой эпикарда клеточных линий сердца, обеспечивая паракринной факторов, которые стимулируют пролиферацию кардиомиоцитов и непосредственно способствует сердечно-сосудистых клеток-предшественников во время развития и болезней. В то время как ряд факторов, которые были вовлечены в клетки (EPDC) мобилизации эпикарда происхождения, механизмы, регулирующие их последующую миграцию и дифференцировку плохо изучены. Здесь мы представляем в пробирке и стратегии бывших естественных условиях для изучения EPDC моторику и дифференциации. Во-первых, мы опишем метод получения первичных эпикардиальные клеток путем вырост культуры из эмбрионального сердца мыши. Введем также подробный протокол для оценки трехмерной миграции меченых EPDC в системе органной культуры. Мы предоставляем доказательства того, используя эти методы, что генетическое удаление myocardin связанных факторов транскрипции в эпикарда затухает миграции EPDC. Такой подход служит платформой для оценки кандидатов модификаторов EPDCбиологии и может быть использовано для разработки генетических или химических экранов для выявления новых регуляторов мобилизации EPDC, которые могут быть полезны для сердца ремонта.
Эпикард представляет собой один слой мезотелиальной клеток, что линии сердца и последствия развития сердца, созревание и ремонт. Благодаря хорошо скоординированным обмена паракриновых сигналов, Интимной диалог между миокарда и эпикарда является необходимым условием для остановки роста и формирования не-миоцитов сердца родословных 1. Эпикардиального клетки , полученные из (EPDC) выходят из подмножества эпикарда клеток через эпителиальные-к-мезенхимальных перехода (EMT) 2, вторгнуться в субэпикардиального пространство и основной миокард и дифференцируются в основном в коронарных сосудов стенной клеток и сердечных фибробластов, а также к в меньшей степени, эндотелиальные клетки и кардиомиоциты 3-9.
Механизмы , регулирующие эпикардиального EMT и EPDC вторжения были отнесены к скоординированным действиям различных молекул , включая секретируемых лигандов 10-13 рецепторов клеточной поверхности и молекул адгезии 14,15, регулиляторов апикального-базальной полярности 16,17, малые GTPases 18,19 и факторов транскрипции 2,20,21. В то время как многие из молекулярных эффекторов миграции EPDC были определены, более глубокое понимание физиологических сигналов, которые стимулируют мобилизацию EPDC в зародыше может ускорить разработку стратегий для управления этим процессом в взрослых для улучшения ремонта сердца.
Исследования, направленные на выявление новых регуляторов мобилизации EPDC полагаются на очистку этой популяции клеток или проследить миграцию отдельных клеток эпикарда. Один или комбинации генов – маркеров, в том числе Wt1, Tcf21, Tbx18, и / или Aldh1a2, обычно используется для идентификации плода эпикарда 1. Тем не менее, использование этих маркеров для отслеживания миграции EPDC не является оптимальным, как экспрессия маркеров эпикарда убывание в течение развития сердца и часто теряется, когда эпикарда клетки подвергаются transdifференциации в мезенхимальных клетках.
Применение системы Cre / LoxP, в сочетании с LINEAGE-трассировку репортеров, было полезно в постоянно мечения эпикарда и его потомков в процессе развития сердца и после ишемического повреждения во взрослом 7,22,23. Несколько эпикардиальные с ограничением Cre линии были сформированы и широко используются для обозначения EPDC и условной делеции гена стратегий 1. Эти исследования привели к характеристике различных эпикардиальные линий, а также выявление критических медиаторов EPDC моторики и дифференциации. Тем не менее, накапливая данные также свидетельствуют о эпикард представляет собой гетерогенную популяцию клеток – предшественников 4,24,25. Таким образом, только часть эпикарда клеток будут направлены с использованием данного драйвера Cre.
Для того, чтобы маркировать всю эпикарда независимо от специфики Cre, ряд лабораторий использовали нарост CULTure системы или исключая виво методы органной культуры , чтобы точно изолировать или этикетку эпикардиальные клетки , не в зависимости от экспрессии генетической линии маркеров 26-28. Для исследований бывших естественных условиях миграции, эмбриональные сердца изолированы до эпикарда EMT и культивируют в среде , дополненной с зеленым флуоресцентным белком (GFP) -expressing аденовируса (Ad / GFP) 9,18. Такой подход позволяет эффективно маркировки всей эпикарда, а не подмножества клеток с помощью Cre-опосредованной рекомбинации. Сердце культуры впоследствии подвергается воздействию известных индукторов EMT , чтобы стимулировать мобилизацию EPDC 28,29. Ex естественных условиях и в естественных условиях анализов дополняются в пробирке эпикардиальные эксплантов культур, которые являются особенно полезным подходом для изучения детальных механизмов вождения миграции EPDC.
Здесь мы опишем методы выделения первичных эпикардиальные клеток для исследований в пробирке epicardiаль ЕМТ, а также система органной культуры для экс виво анализ EPDC моторики. Недавно мы продемонстрировали полезность и надежность этого метода с помощью методов генной модуляции myocardin связанных фактора транскрипции (MRTF) / коэффициент отклика сыворотки (ОСР) ось сигнализации для управления актина на основе миграции EPDC 9. В то время как наши данные подчеркивают один сигнальный путь, необходимый для регулирования миграции EPDC, эти методы пригодны для разгадке механизмов, которые в совокупности оркестрировать миграцию и дифференцировку EPDC. Кроме того, эксплантов и бывших естественных условиях системы культуры могут быть реализованы в функциональных экранов для идентификации новых регуляторов мобилизации EPDC для терапевтических применений в регенерации сердца.
Здесь мы приводим подробные методы , чтобы изолировать первичную эпикардиального клетку путем разрастания и отслеживать миграцию EPDC в бывших естественных культурах сердца. Для нарост культур, подходящее время для удаления эпикарда обедненного сердце изменяется незначительно м?…
The authors have nothing to disclose.
EMS была поддержана грантами от Национальных Институтов Здоровья (NIH) [номер гранта R01HL120919]; Американской ассоциации сердца [номер гранта 10SDG4350046]; Университет Рочестера CTSA награду от NIH [номер гранта UL1 TR000042]; и запуска средства из Aab CVRI. MAT была частично поддержана грантом в Университете Рочестера школы медицины и стоматологии от Med INTO-Град Инициатива Медицинского института Говарда Хьюза; и Национальной премии Сервис Исследования Institutional Ruth L. Kirschstein из NIH [номер гранта GM068411].
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Hyclone | SH3002201 | DMEM |
Hanks' Balanced Salt Solution | Hyclone | SH3003102 | HBSS |
Medium 199 | Hyclone | SH3025301 | M199 |
Dulbecco’s Phosphate-Buffered Saline | Hyclone | SH3002802 | DPBS |
Fetal Bovine Serum | Gemini | 100-106 | FBS |
Penicillin/Streptomycin Solution | Hyclone | SV30010 | |
Corning Biocoat Collagen I, 4-Well Culture Slides | Corning | 354557 | |
Multiwell 24-well plates | Falcon | 08-772-1 | |
Dissecting microscope | Leica | M50 | Equipped with Leica KL300 LED might source |
Confocal miscroscope | Olympus | 1X81 | Equipped with muli-argon laser 405/488/515, FV10-MCPSU laser 405/440/635, 559 laser, and mercury lamp |
Bioruptor | Diagenode | UCD-200 | |
Transforming growth factor beta 1 | R&D Systems | 100-B-001 | TGF-β1 |
Platelet-derived growth factor BB | R&D Systems | 220-BB-010 | PDGF-BB |
Trizol Reagent | Applied Biosystems | 15596-026 | Caution, hazardous material |
TURBO DNA-free Kit | Life Technologies | AM1907 | DNaseI |
iScript cDNA Synthesis Kit | BioRad | 1708891 | |
UltraPure Glycogen | Life Technologies | 10814-010 | |
SYBR Green | BioRad | 170-8880 | |
Protease inhibtor cocktail tablets | Roche | 11836170001 | |
Alexa Goat-anti-rabbit 488 | Life Technologies | A11008 | Secondary antibody |
Alexa Goat anti-rabbit 594 | Life Technologies | A-11012 | Secondary antibody |
Alexa Goat anti-mouse 594 | Life Technologies | A-11005 | Secondary antibody |
Mouse anti-smooth muscle alpha actin, Cy3-conjugated | Sigma-Aldrich | C6198 | monoclonal antibody, clone 1A4 |
Mouse anti-Wilms tumor 1 (WT1) | Life Technologies | MA1-46028 | monoclonal antibody, clone 6F-H2 |
Rabbit anti-ZO1 | Life Technologies | 40-2200 | polyclonal antibody |
Rabbit anti-Collagen Type 4 | Millipore | AB756P | polyclonal antibody |
4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride | Life Technologies | D1306 | DAPI |
Fluorescent mounting medium | DAKO | S3023 | |
16% Paraformaldehyde solution | Electron Microscopy Sciences | 15710 | PFA diluted to 4% in DPBS. Caution, hazardous material |
Sucrose | Sigma-Aldrich | S0389 | |
Tissue Freezing Medium | Triangle Biomedical Sciences | TFM-B | |
Pap pen | DAKO | S2002 | |
Disposable mictrotome blades | Sakura Finetek | 4689 | |
Microscope slides | Globe Scientific | 1358W | positively charged, 25 x 75 x 1mm |
Cryostat | Leica | CM1950 | |
Forceps | Fine Science Tools | 11295-00 | |
Surgical Scissors | Fine Science Tools | 91460-11 | |
Disposable base molds | Fisher Scientific | 22-363-553 | |
Ketamine | Hospira | NDC 0409-2051-05 | |
Xylazine | Akorn | NADA 139-236 |