Summary

Imaging potentiel de membrane avec deux types de capteurs codés génétiquement tension fluorescentes

Published: February 04, 2016
doi:

Summary

A method for imaging changes in membrane potential using genetically encoded voltage indicators is described.

Abstract

Genetically encoded voltage indicators (GEVIs) have improved to the point where they are beginning to be useful for in vivo recordings. While the ultimate goal is to image neuronal activity in vivo, one must be able to image activity of a single cell to ensure successful in vivo preparations. This procedure will describe how to image membrane potential in a single cell to provide a foundation to eventually image in vivo. Here we describe methods for imaging GEVIs consisting of a voltage-sensing domain fused to either a single fluorescent protein (FP) or two fluorescent proteins capable of Förster resonance energy transfer (FRET) in vitro. Using an image splitter enables the projection of images created by two different wavelengths onto the same charge-coupled device (CCD) camera simultaneously. The image splitter positions a second filter cube in the light path. This second filter cube consists of a dichroic and two emission filters to separate the donor and acceptor fluorescent wavelengths depending on the FPs of the GEVI. This setup enables the simultaneous recording of both the acceptor and donor fluorescent partners while the membrane potential is manipulated via whole cell patch clamp configuration. When using a GEVI consisting of a single FP, the second filter cube can be removed allowing the mirrors in the image splitter to project a single image onto the CCD camera.

Introduction

L'objectif principal de cet article est de démontrer l'imagerie optique de l'évolution des potentiels de membrane in vitro utilisant des protéines fluorescentes codées génétiquement. changements d'imagerie du potentiel de membrane offre la possibilité intéressante de l'étude de l'activité des circuits neuronaux. Lorsque des changements dans la membrane résultat potentiel à un changement d'intensité de fluorescence, chaque pixel de la caméra devient une électrode de substitution permettant des mesures non intrusives de l'activité neuronale. Depuis plus de quarante ans, des colorants sensibles à la tension organiques ont été utiles pour observer les changements de potentiel 1-4 membrane. Cependant, ces colorants manquent de spécificité cellulaire. En outre, certains types de cellules sont difficiles à teindre. indicateurs de tension génétiquement codés (GeViS) à surmonter ces limitations en ayant les cellules à étudier spécifiquement expriment la sonde fluorescente sensible à la tension.

Il existe trois classes de GeViS. La première classe de GEVI utilise la vodomaine de la phosphatase de détection de tension nsion détection soit avec une seule protéine fluorescente (FP) 5-9 ou un transfert d'énergie par résonance Förster (FRET) paire 10-12. La seconde catégorie de capteurs utilise microbienne rhodopsine comme un indicateur fluorescent directement ou par l'intermédiaire de 13 à 15 FRET électrochrome 16,17. La troisième classe utilise deux composantes, la composante génétique étant une membrane ancrée FP et un second composant étant une membrane lié trempe colorant 18-20. Tandis que les deuxième et troisième catégories sont utiles pour in vitro et trancher les expériences 19,20, seule la première classe de capteurs sont actuellement utile pour des analyses in vivo 6.

Dans ce rapport, nous allons démontrer l'imagerie du potentiel de membrane en utilisant la première classe de GeViS (Figure 1) in vitro. Cette première classe de capteurs de tension est le plus facile de faire la transition à l'imagerie in vivo. Depuis GeViS utilizing un domaine de détection de tension fusionné à un FP sont environ 50 fois plus brillante que la classe de rhodopsine de capteurs, ils peuvent être imagés en utilisant un éclairage à lampe à arc au lieu d'exiger un laser extrêmement puissant. Une autre conséquence de l'écart de brillance qui est la première classe de GeViS peut facilement dépasser l'auto-fluorescence du cerveau. Les sondes à base de rhodopsine ne peut pas. La troisième classe de capteur est tout aussi brillante que la première catégorie, mais nécessite l'ajout d'un extincteur chimique qui est difficile à administrer in vivo.

Nous allons donc démontrer l'acquisition d'une sonde avec une seule FP (Bongwoori) 8 et une sonde constituée d'une paire de FRET (Nabi 2) 12. Le FRET construit dans le présent rapport sont des versions de papillon de VSFP-CR (protéines fluorescentes sensibles à la tension – Clover-mRuby2) 11 consistant en un donneur fluorescente verte, Clover, et un accepteur de fluorescence rouge, mRuby2, nommé Nabi 2.242 et 2.244 Nabi <sjusqu'à> 12. L'introduction de ces types d'enregistrements devrait permettre aux chercheurs de mieux comprendre le type de GeViS d'information peut fournir.

Figure 1
Figure 1. Deux types d'indicateurs codés génétiquement tension (GeViS) imagés dans le présent rapport (A) A __gVirt_NP_NN_NNPS<__ FP mono GEVI base ayant un domaine de détection de tension trans-membrane et une protéine fluorescente. (B) Un GEVI base de FRET composé d'un domaine de détection de tension trans-membrane, un donneur de FRET et l'accepteur. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Protocol

déclaration éthique: Le protocole d'expérimentation animale a été approuvé par l'Institutional Animal Care et l'utilisation Comité à KIST protocole animale 2014-001. 1. Équipement Setup installation d'imagerie Placer un microscope à fluorescence inversée sur une table anti-vibrations. Utiliser un fort grossissement (60X lentille à immersion d'huile avec une ouverture numérique de 1,35) et une lentille d'objectif cube de filtre muni d&#…

Representative Results

De manière transitoire des cellules transfectées peuvent présenter une variation significative de l'intensité de fluorescence et le degré d'expression de la membrane plasmique. Même sur le même lamelle certaines cellules auront divers niveaux de fluorescence interne. Ceci est probablement dû à la quantité d'agent de transfection absorbé par la cellule. Parfois, trop expression provoque la cellule de connaître la réponse de la protéine dépliée résultant de l&#…

Discussion

Le système nerveux utilise une tension de plusieurs manières différentes, l'inhibition entraîne une légère hyperpolarisation, entrée synaptique provoque une légère dépolarisation et une action résultats potentiels d'une variation relativement importante de tension. La capacité de mesurer les changements dans le potentiel de membrane par GeViS offre le potentiel prometteur de l'analyse de plusieurs composants de circuits neuronaux simultanément. Dans ce rapport, nous démontrons une méthode fond…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the World Class Institute (WCI) program of the National Research Foundation of Korea funded by Ministry of Education, Science, and Technology of Korea Grant WCI 2009-003 and Korea Institute of Science and Technology Institutional Program Project 2E24210. Sungmoo Lee was supported by Global Ph.D. Fellowship program (NRF-2013H1A2A1033344) of the National Research Foundation (NRF) under the Ministry of Education (MOE, Korea).

Materials

Inverted Microscope Olympus IX71
60X objective lens (numerical aperture = 1.35) Olympus UPLSAPO 60XO
Excitation filter Semrock  FF02-472/30 For voltage imaging of super ecliptic pHluorin in Bongwoori
Dichroic mirror Semrock FF495-Di03-25×36
Emission filter Semrock FF01-497/LP
75W Xenon arc lamp CAIRN OptoSource Illuminator LEDs and lasers are also effective light sources
Slow speed CCD camera Hitachi KP-D20BU
Dual port camera adaptor Olympus U-DPCAD
High speed CCD camera RedShirtImaging, LLC NeuroCCD-SM
Image splitter CAIRN Optosplit 2
Excitation filter Semrock FF01-475/23-25 For voltage imaging of FRET pair based GEVI consisting of Clover and mRuby2)
Dichroic mirror Semrock FF495-Di03-25×36
Emission filter Chroma ET520/40
Dichroic mirror Semrock FF560-FDi01-25X36
Emission filter Chroma ET645/75
Vibration isolation system Kinetic systems 250BM-IC, 5702E-3036-31
Patching chamber Warner instruments RC-26G, 64-0235
#0 Micro Coverglass (22x40mm) Electron Microscopy Sciences 72198-20
Temperature controller Warner instruments TC-344B
#0 (0.08~0.13mm) – 10mm diameter glass coverslip Ted Pella 260366
Lipofection agent Life Technologies 11668-027
Calcium phosphate reagent Clontech – Takara 631312
Patch clamp amplifier HEKA EPC 10 USB amplifier
Multi-channel data acquisition software HEKA Patchmaster
Image acquisition and analysis software RedShirtImaging Neuroplex
Spreadsheet application software Microsoft Microsoft Excel 2010
Data analysis software OriginLab OriginPro 8.6.0
Demagnifier Qioptiq LINOS Optem standard camera coupler 0.38x SC38 J clamp
Confocal microscope Nikon Nikon A1R confocal microscope
Anti-fade reagent Life Technologies P36930

Referências

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Citar este artigo
Lee, S., Piao, H. H., Sepheri-Rad, M., Jung, A., Sung, U., Song, Y., Baker, B. J. Imaging Membrane Potential with Two Types of Genetically Encoded Fluorescent Voltage Sensors. J. Vis. Exp. (108), e53566, doi:10.3791/53566 (2016).

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