Summary

İnşaat Hücre bazlı Nörotransmiterler Optik Algılama için nörotransmitter Floresan Engineered Gazeteciler (CNiFERs)<em> İn Vivo</em

Published: May 12, 2016
doi:

Summary

Biz hacimsel nörotransmitter salınımı optik tespiti için hücre tabanlı nörotransmiter floresan mühendislik gazetecilere (CNiFERs) oluşturmak için bir protokol mevcut.

Abstract

Hücre bazlı nörotransmiter floresan mühendislik gazetecilere (CNiFERs) Nörobilimadamları optik in vivo beyinde nörotransmitterlerin salınımını tespit etmek için yeni bir araç sağlar. Belirli CNiFER sabit şekilde belirli bir G protein-eşli reseptörü, G q Çift / 11 G proteinleri ve bir oyma göre Ca2 + -detector, TN-XXL eksprese eden bir insan embriyonik böbrek hücre oluşturulur. reseptörünün aktivasyonu FRET sinyali bir artışa yol açar. Bir CNiFER klonu dopamin için D2R, örneğin, belirli bir nörotransmitter için yerel reseptörünü kullanır, çünkü CNiFERs nM duyarlılık ve saniye zamansal tepki var. CNiFERs doğrudan beyne implante in vivo hacim iletimi ölçmek için idealdir, daha az yüz mikron mekansal çözünürlükte nörotransmitter salınımını anlamda sağlayarak vardır. CNiFERs da vi olası çapraz reaktivite için diğer ilaçları taramak için kullanılabilirvo. Biz son zamanlarda GPCRs G i / o G proteinleri bu çift eklemek için CNiFERs ailesi genişledi. CNiFERs asetilkolin (ACh), dopamin (DA) ve norepinefrin (NE) tespit edilmesi için kullanılabilir. Herhangi bir GPCR CNiFER bir roman oluşturmak için kullanılabilir göz önüne alındığında yaklaşık insan genomunda 800 GPCR'ler olduğunu tasarlar, gerçekleştirmek ve CNiFER her türlü test etmek için buraya genel prosedürü açıklar.

Introduction

Tam nöronlar beyinde nasıl iletişim anlamak için, in vivo nörotransmitterlerin salınımını ölçmek için bir yöntem olması gereklidir. In vivo olarak nörotransmitter ölçmek için çeşitli iyi bilinen teknikler vardır. Genel olarak kullanılan bir teknik, bir kanül, beyin içine yerleştirilir ve beyin omurilik sıvısı, küçük bir hacme ve yüksek performanslı sıvı kromatografisi ve elektrokimyasal algılama 1 kullanılarak analiz edildiği mikrodiyaliz vardır. Mikrodiyaliz sondası birkaç çapları düzeyinde bir uzaysal çözünürlüğü, örneğin ~ 200 mikron çapında mikroprob 0.5 mm. Bu tekniğin zamansal çözünürlüğü, Bununla birlikte, tipik olarak ~ 5 dakika 1 ya da daha uzun süre örnekleme aralıkları yavaştır. Ayrıca, analizler gerçek zamanlı olarak yapılmaz. Başka bir teknik beyin içine yerleştirilen bir karbon-fiber prob kullanır hızlı tarama döngüsel voltametri (FSCV) 'dir. FSCV mükemmel temp vardırOral çözünürlük (subsecond), yüksek hassasiyet (nanomolar), ve 30 mikron 5 prob çapları uzamsal çözünürlük. Bununla birlikte, FSCV bir karbon potansiyometrik prob 2 gerilimi ile tipik bir oksidasyon ve redüksiyon profili üretmek vericiler ile sınırlıdır.

Nörotransmitterlerin ölçmek için üçüncü bir teknik genetik olarak kodlanmış nörotransmitter (NT) biyosensörler 3 ile doğrudan. Bu yöntemde, bir füzyon proteini, bir flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) fluorophores 4 merkezli bir çift ya da sırası değiştirilerek GFP 5 bağlanmış bir verici için bir ligand bağlayıcı etki alanı içeren oluşturulur. Önceki iki yöntemlerden farklı olarak, bu biyosensörler genetik olarak kodlanmış ve transgenik hayvanların üretimi yoluyla veya akut hücreleri enfekte viral ajanların kullanımı ile, örneğin, bir nöron olarak, bir konak hücrenin yüzeyi üzerinde ifade edilmiştir. Bugüne kadar, genetik olarak kodlanmış biyosensörler yalnızca algılama gibi geliştirilmiştirg glutamat GABA 3-5. Bu teknikler ile sınırlamalar nM aralığında düşük hassasiyet, ve G-protein bağlı reseptör (GPCR) aracılığıyla sinyal örneğin vericiler, klasik nörotransmitterler, nöropeptitler ve nöromodülatör, çok sayıda algılama genişletmek yetersizlik olmuştur. Aslında, insan genomunda yaklaşık 800 GPCR'ler vardır.

Bu eksiklikleri gidermek için, biz bir GPCR aracılığıyla sinyal herhangi nörotransmiter optik ölçüsü serbest bırakmak için yenilikçi bir araç geliştirdik. CNiFERs (hücre bazlı nörotransmiter flüoresan tasarlanmış muhabir), uyarıldığında, [Ca2 +] bir genetik olarak kodlanmış FRET göre Ca2 + sensörü tarafından tespit edilir hücre içi bir artış tetikleyen belirli bir GPCR ifade etmek üzere geliştirilen klonal HEK 293 hücreleri TN-XXL. Bu nedenle, CNiFERs nörotransmiter reseptörü floresansında bir değişiklik olarak bağlanan bir doğrudan ve gerçek zamanlı bir optik r temin dönüşümüYerel nörotransmitter faaliyet ead-out. Belirli bir nörotransmitter doğal reseptörü kullanılarak, CNiFERs kimyasal özgüllük, afinite ve endogen şekilde eksprese reseptörlerin zamansal dinamikleri saklayın. Bugüne kadar, CNiFERs üç tip dopamin tespit etmek için M1 reseptörü, tek kullanılarak asetilkolin saptanması için bir oluşturduk D2 reseptörü kullanılarak ve α1a reseptör 6,7 ile norepinefrin saptanması için bir. CNiFER teknolojisi GPCR her tür o mükellef hale kolayca genişletilebilir ve ölçeklenebilir. Bu vallahi yazıda tarif ve herhangi bir uygulama için in vivo CNiFERs olarak, tasarım gerçekleştirmek için metodoloji ve testi göstermektedir.

Protocol

Bu çalışmada yapılan tüm hayvan prosedürleri Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) kurallarına uygun olarak, ve Sina Dağı'nda Tıp Icahn Okulu ve University of California, San Diego IACUCs tarafından onaylanmıştır. 1. HEK293 Hücreleri Dönüşüm için lentivirüs GPCR ifade eden oluşturun Ticari bir kaynağı, örneğin, cdna.org belirli bir GPCR için cDNA elde edin. Seçenek olarak ise, PCR kullanılarak bir cDNA kütüphanesinden GPCR genini çoğaltm…

Representative Results

Belirli bir G-proteinine bağlanmış reseptör (GPCR) ile genetik olarak kodlanmış [Ca2 +] sensör, TN-XXL A CNiFER kararlı bir şekilde en az iki protein eksprese etmek üzere bir insan embriyonik böbrek (HEK293), hücre elde edilir. TN-XXL Ca2 + iyonlarının 6,15 yanıt olarak kırmızı ve sarı floresan proteinleri sırasıyla eCFP ve sitrin, arasındaki flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) maruz kalır. Endojen G S, G proteinl…

Discussion

CNiFERs yaratılması optik in vivo beyinde nörotransmitterlerin salınımını ölçmek için yenilikçi ve benzersiz bir strateji sağlar. CNiFERs ideal nörotransmitterlerin için yani extrasynaptic açıklaması, hacim iletimi, ölçmek için uygundur. Önemli olarak, her bir CNiFER beyinde nörotransmitter seviyelerindeki değişikliklerin fizyolojik optik ölçüm sağlayan doğal GPCR özelliklerine sahiptir. Bugüne kadar, CNiFERs asetilkolin tespit etmek için oluşturulmuştur (M + -1-CNiFER…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz elektronik ile ilgili yardım için G qi5 ve G qs5 cDNA'ları, A. Schweitzer sağlamak için B. Conklin (University of California, San Francisco) teşekkür ederim, N. Taylor geçirmez okuma klonlar, Ian Glaaser ve Robert Rifkin tarama ile yardım için ve TN-XXL Olivier Griesbeck. (; DA037170 DA029706), Biyomedikal Görüntüleme ve Biyomühendislik Ulusal Enstitüsü (NIBIB) (EB003832), Hoffman-La Roche (88610A) ve "Neuroscience Bu çalışma Uyuşturucu ABD Ulusal Enstitüsü (NIDA) aracılığıyla araştırma hibeleri tarafından desteklenen NIDA (DA007315) üzerinden Kötüye "eğitim hibe Uyuşturucu ile İlgili.

Materials

pCDH-CMV-MCS-EF1-Puro  System Biosciences CD510B-1 Cloning: for generating lentivirus
12×75 *BD Falcon High Clarity Polypropylene Round Bottom Test Tube BD Biosciences 352063 FACS
BD 40 um Falcon cell strainers BD Biosciences 352340 FACS
0.05% Trypsin EDTA  Invitrogen 25200056 FACS
96 Well Plate, flat bottom, clear  Corning  3596 FACS
96 well cell culture plates  Corning  CLS3997 Flexstation
Optilux black clear bottom  Corning  3603 Flexstation
Flexstation pipet tips Molecular Devices 9000-0911 Flexstation
Acetylcholine Chloride   SimgaAldrich A2661 Flexstation
Norepinephrine   SimgaAldrich A7256 Flexstation
Dopamine Hydrochloride   SimgaAldrich PHR1090 Flexstation
GABA   SimgaAldrich A2129 Flexstation
Histamine   SimgaAldrich H7125 Flexstation
Glutamate   SimgaAldrich 49621 Flexstation
Epinephrine   SimgaAldrich E4642 Flexstation
Somatostatin    SimgaAldrich S1763 Flexstation
5HT    SimgaAldrich H9523 Flexstation
VIP  Alpha Diagnostics Inc.    SP-69627 Flexstation
Orexin A Alpha Diagnostics Inc.    12-p-01 Flexstation
Substance P   SimgaAldrich S6883 Flexstation
Adenosine SimgaAldrich A4036 Flexstation
Melatonin  SimgaAldrich M5250C Flexstation
Fluorescence Plate Reader & software Molecular Devices Flexstation 3 Flexstation
 DMEM (high glucose) with Glutamax   Life Technologies 10569-010 Tissue culture
 Fetal bovine serum Life Technologies 10082-139 Tissue culture
 Pen/Strep  Life Technologies 15140-122 Tissue culture
 Puromycin   InvivoGen ant-pr-1 Tissue culture
 Fibronectin  SimgaAldrich F0895 Tissue culture
CoolCell LX Alcohol-free controlled-rate cell freezing box Bioexpress D-3508) Tissue culture
cyanoacrylate glue  Loctite Loctite no. 495 surgery and stereotaxic injection
plastic paraffin film  VWR Parafilm® surgery and stereotaxic injection
NANOINJECTOR Drummond 3-000-204 surgery and stereotaxic injection
GLASS ELECTRODES Drummond 3-000-203G surgery and stereotaxic injection
hand held drill OSADA Exl-M40 surgery and stereotaxic injection
Burrs for drill Fine Scientific 19007-05; 19007-07) surgery and stereotaxic injection
Sterilizing bath FST 18000-45, Hot Bead Sterilizer surgery and stereotaxic injection
isoflurane chamber/mask Highland Medical Equipment 564-0427, HME 109 Table Top Anesthetic Machine with Isoflurane Vaporizer, O2 Flowmeter, Gang Valve; 564-0852, Induction Chamber 16X7X7.5cm surgery and stereotaxic injection
3D scope with arm Zeiss surgery and stereotaxic injection
fiber optic light surgery and stereotaxic injection
Betadine  surgery and stereotaxic injection
70 % (v/v) isopropyl alcohol surgery and stereotaxic injection
Povidone-Iodine Prep Pads dynarex 1108 surgery and stereotaxic injection
NaCl 0.9% (INJECTION, USP, 918610) surgery and stereotaxic injection
CYCLOSPORINE (INJECTION, USP) surgery and stereotaxic injection
Buprenex (INJECTION) buprenorphine (0.03 μg per g rodent) Sigma surgery and stereotaxic injection
Ophthalmic ointment  Akorn NDC 17478-235-35 surgery and stereotaxic injection
Surgifoam Ethicon surgery and stereotaxic injection
Grip dental cement Dentsply #675571, 675572 surgery and stereotaxic injection
Instant SuperGlue  NDindustries surgery and stereotaxic injection
LOCTITE 4041 surgery and stereotaxic injection
METABOND C&B surgery and stereotaxic injection
no. 0 cover glass Fisher surgery and stereotaxic injection
stereotaxic frame  Kopf surgery and stereotaxic injection
Rectal probe and heating pad FHC 40-90-8D, DC Temperature Controller,40-90-2-06, 6.5X9.5cm Heating Pad40-90-5D-02, Rectal Thermistor Probe surgery and stereotaxic injection
optical breadboard for imaging Thorlabs surgery and stereotaxic injection
Mineral oil Fisher S55667 surgery and stereotaxic injection
Kwik-Cast (Silicone elastomer) World Precision Instruments surgery and stereotaxic injection
Suture   Ethicon 18’’, 1667, 4-0 surgery and stereotaxic injection
Scissors Fine Scientific Tools 91500-09, 15018-10 surgery and stereotaxic injection
Forcepts Fine Scientific Tools 11252-30; #55, 11295-51; Grafe, 11050-10 surgery and stereotaxic injection
Student Halsted-Mosquito Hemostats Fine Scientific Tools 91308-12 surgery and stereotaxic injection
Small Vessel Cauterizer Kit Fine Scientific Tools 18000-00 surgery and stereotaxic injection
Hot Bead Sterilizers Fine Scientific Tools 18000-45 surgery and stereotaxic injection
Instrument Case with Silicone Mat Fine Scientific Tools 20311-21 surgery and stereotaxic injection
Plastic Sterilization Containers with Silicone Mat Fine Scientific Tools 20810-01 surgery and stereotaxic injection
2P fixed-stage fluorescence scope for in vivo imaging Olympus FV1200 MPE in vivo imaging
Multiphoton laser SpectraPhysics Mai Tai DeepSee in vivo imaging
Green Laser Olympus 473 nm Laser in vivo imaging
xy translation base Scientifica MMBP in vivo imaging
FRET filter cube for YFP and CFP Olympus in vivo imaging
25-X water immersion objective Olympus in vivo imaging
air table Newport in vivo imaging
custom built light-tight cage Thorlab in vivo imaging

Referências

  1. Day, J. C., Kornecook, T. J., Quirion, R. Application of in vivo. microdialysis to the study of cholinergic systems. Methods. 23, 21-39 (2001).
  2. Robinson, D. L., Venton, B. J., Heien, M. L., Wightman, R. M. Detecting subsecond dopamine release with fast-scan cyclic voltammetry in vivo. Clin Chem. 49, 1763-1773 (2003).
  3. Liang, R., Broussard, G. J., Tian, L. Imaging Chemical Neurotransmission with Genetically Encoded Fluorescent Sensors. ACS Chem Neurosci. , (2015).
  4. Okubo, Y., et al. Imaging extrasynaptic glutamate dynamics in the brain. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 6526-6531 (2010).
  5. Marvin, J. S., et al. An optimized fluorescent probe for visualizing glutamate neurotransmission. Nat Methods. 10, 162-170 (2013).
  6. Nguyen, Q. T., et al. An in vivo biosensor for neurotransmitter release and in situ receptor activity. Nat Neurosci. 13, 127-132 (2010).
  7. Muller, A., Joseph, V., Slesinger, P. A., Kleinfeld, D. Cell-based reporters reveal in vivo dynamics of dopamine and norepinephrine release in murine cortex. Nat Methods. 11, 1245-1252 (2014).
  8. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. J Vis Exp. , e3998 (2012).
  9. Wang, X., McManus, M. Lentivirus production. J Vis Exp. , (2009).
  10. Conklin, B. R., Farfel, Z., Lustig, K. D., Julius, D., Bourne, H. R. Substitution of three amino acids switches receptor specificity of Gqα to that of Gjα. Nature. 363, 274-276 (1993).
  11. Cetin, A., Komai, S., Eliava, M., Seeburg, P. H., Osten, P. Stereotaxic gene delivery in the rodent brain. Nat Protoc. 1, 3166-3173 (2006).
  12. Shih, A. Y., Mateo, C., Drew, P. J., Tsai, P. S., Kleinfeld, D. A polished and reinforced thinned-skull window for long-term imaging of the mouse brain. J Vis Exp. , (2012).
  13. Drew, P. J., et al. Chronic optical access through a polished and reinforced thinned skull. Nat Methods. 7, 981-984 (2010).
  14. Shih, A. Y., et al. Two-photon microscopy as a tool to study blood flow and neurovascular coupling in the rodent brain. J Cereb Blood Flow Metab. 32, 1277-1309 (2012).
  15. Yamauchi, J. G., et al. Characterizing ligand-gated ion channel receptors with genetically encoded Ca2+ sensors. PLoS One. 6, e16519 (2011).
  16. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP calcium indicator for neural activity imaging. J. Neurosci. 32, 13819-13840 (2012).
  17. Helmchen, F., Denk, W. Deep tissue two-photon microscopy. Nat Methods. 2, 932-940 (2005).
  18. Svoboda, K., Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience. Neuron. 50, 823-839 (2006).
  19. Cui, G., et al. Concurrent activation of striatal direct and indirect pathways during action initiation. Nature. 494, 238-242 (2013).
check_url/pt/53290?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lacin, E., Muller, A., Fernando, M., Kleinfeld, D., Slesinger, P. A. Construction of Cell-based Neurotransmitter Fluorescent Engineered Reporters (CNiFERs) for Optical Detection of Neurotransmitters In Vivo. J. Vis. Exp. (111), e53290, doi:10.3791/53290 (2016).

View Video