Summary

T-celler Capture bakterier ved Transinfection fra dendritiske celler

Published: January 13, 2016
doi:

Summary

Her en protokol præsenteres til at måle bakteriel fange af CD4 + T-celler, som opstår i løbet af antigen præsentation via transinfection fra præ-inficerede dendritiske celler (DC). Vi viser, hvordan du udfører de nødvendige skridt: isolering af primærelementer, infektion af DC / T-celle-konjugat dannelse, og måling af bakteriel T-celle transfektion.

Abstract

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic cells (DCs) by a process called transinfection. Here, we describe the analysis of the transinfection process, which occurs during the course of antigen presentation. This process was unveiled by using CD4+ T cells from transgenic OTII mice, which bear a T cell receptor (TCR) specific for a peptide of ovoalbumin (OVAp), which therefore can form stable immune complexes with infected dendritic cells loaded with this specific OVAp. The dynamics of green fluorescent protein (GFP)-expressing bacteria during DC-T cell transmission can be monitored by live-cell imaging and the quantification of bacterial transinfection can be performed by flow cytometry. In addition, transinfection can be quantified by a more sensitive method based in the use of gentamicin, a non-permeable aminoglycoside antibiotic killing extracellular bacteria but not intracellular ones. This classical method has been used previously in microbiology to study the efficiency of bacterial infections. We hereby explain the protocol of the complete process, from the isolation of the primary cells to the quantification of transinfection.

Introduction

Når et patogen inficerer sin vært, er der normalt en aktivering af de medfødte og adaptive immunrespons, som er nødvendige for bakteriel clearance. Medfødte immunforsvar er den første linje i forsvaret, der forhindrer de fleste infektioner. Medfødte immunforsvar skelner i et præcist elementer, der er bevaret blandt brede grupper af mikroorganismer (patogen-associeret molekylære mønstre, PAMPS) 1. Mekanismerne i medfødte immunitet omfatter fysiske barrierer, såsom hud, kemikalier barrierer (antimikrobielle peptider, lysozym) og de medfødte leukocytter, som omfatter fagocytter (makrofager, neutrofiler og dendritiske celler), mastceller, eosinofiler, basofiler og naturlige dræberceller 2. Disse celler identificere og fjerne patogener, enten ved at angribe dem gennem kontakt eller via fagocytose, som omfatter patogen oversvømmer og drab. Dette system tillader ikke livslang forsvar, i modsætning til adaptiv immunitet, som giver immunologisk hukommelse mod pathogens. Det adaptive immunsystem er den anden linje i forsvaret og er i stand til at genkende og reagere på specifikke antigener af multipel mikrobiel og ikke-mikrobielle stoffer 3. De vigtigste komponenter i det adaptive immunsystem er de lymfocytter, som omfatter B- og T-celler. B-celler er involveret i det humorale respons, der secernerer antistoffer mod patogener eller exogene proteiner. Imidlertid repræsenterer T-celler celle-medieret immunitet, modulering af immunresponset med cytokiner sekretion eller dræbe patogene-inficerede celler 4.

Antigenpræsenterende celler (APC'er), herunder dendritiske celler eller makrofager, bestanddele af det medfødte immunsystem, kan genkende fagocytere patogener og proces bakterielle bestanddele i antigener, der præsenteres på celleoverfladen af Major Histocompatibility Complex (MHC) 5-7. Efter APC har fagocyteres patogener, de normalt migrere til dræning lymfeknuder, hvor de interagerer med Tceller. T-lymfocytter kan genkende specifikke peptid-MHC-komplekser med deres T-cellereceptorer. Immun synapse (IS) forekommer i grænsefladen mellem et antigen-loaded APC og en lymfocyt under antigenpræsentation 8,9. Nogle bakterier kan overleve fagocytose og formidle systematisk inden APC. I denne opfattelse, inficerede APC'er tjener som bakterielle reservoirer eller "trojanske heste", som letter bakteriel spredning 10. Den intime kontakt mellem APC og lymfocytter, der finder sted i løbet af IS-dannelse fungerer også som en platform for udveksling af en del af membraner, genetisk materiale og exosomer og kan kapret for nogle virus til inficerer T-celler; denne proces kaldes transinfection 11-13.

Nogle sygdomsfremkaldende bakterier (Listeria monocytogenes, Salmonella enterica og Shigella flexneri) er i stand til at invadere T-lymfocytter in vivo og ændre deres adfærd 14-16. Vi harfor nylig beskrevet, at T-lymfocytter er også i stand til at fange bakterier ved transinfection fra tidligere inficerede dendritiske celler (DC'er) i løbet af antigenpræsentation 16. T-celle bakteriel indfange transinfection overordentlig mere effektiv (1,000-4,000x) end direkte infektioner. T-celler capture patogen og ikke-patogen bakterier indikerer end transinfection er en proces, der drives af T-celler. Slående, transinfected T (TIT) celler hurtigt dræbte de erobrede bakterier og gjorde det mere effektivt end professionelle fagocytter 16. Disse resultater, der bryder et dogme for immunologi, viser, at cellerne i adaptiv immunitet kan udføre funktioner, der var angiveligt eksklusive den medfødte immunitet. Endvidere viste vi, at Tit celler udskiller store mængder af pro-inflammatoriske cytokiner og beskytte mod bakterielle infektioner in vivo.

Her præsenterer vi de forskellige protokoller, der anvendes til at studere den bakterielle transinfection procesen musemodel. Denne model er baseret på brugen af CD4 + T-celler fra transgene OTII mus, der bærer en TCR specifik for peptid 323-339 af OVA (OVAp) i forbindelse med I-Ab 17, der interagerer specifikt med bakteriel-inficerede knogle marrow- afledte DC'er (BMDCs) 18,19 lastet med OVAp, danner stabile immune synapser.

T-celle transinfection kan visualiseres og spores ved hjælp af fluorescensmikroskopi. Derudover flowcytometri kan anvendes til påvisning af inficerede celler ved at drage fordel af fluorescens udsendt af bakterier, der udtrykker grønt fluorescerende protein (GFP) 16,20. Endvidere kan T-celle transinfection kvantificeres ved en mere følsom metode, gentamicin overlevelse assay, der tillader måling af en lang række arrangementer. Gentamicin er et antibiotikum, ikke kan trænge eukaryote celler. Derfor bruger dette antibiotikum muliggør differentiering af intracellulære bakterier, der overlevede den antibiotiske tilsætning frOM ekstracellulære dem, der blev dræbt 21.

Protocol

Bemærk: Eksperimentelle procedurer blev godkendt af Udvalget for Forskning Etik af Universidad Autónoma de Madrid og gennemføres under tilsyn af Universidad Autónoma de Madrid Leder af dyrevelfærd og sundhed i overensstemmelse med spanske og europæiske retningslinjer. Mus blev opdrættet i specifik patogen fri (SPF) hus, og de ​​blev aflivet af uddannet og kvalificeret personale ved hjælp af kuldioxid (CO 2) indånding metode. 1. Mus knoglemarv-afledte DC'er Different…

Representative Results

Heri beskrev vi, hvordan du udfører murine T-celle bakteriel transinfection fra inficerede knoglemarv afledt-DCs og hvordan man måler bakteriel transinfection via to forskellige tilgange: flowcytometri og gentamicin overlevelse assay Figur 1 opsummerer procedure for at opnå cellerne.. DC'er genereres ved inkubation af knoglemarvsceller med GM-CSF i 9 dage. Derefter er DC'er modnes med LPS for at øge MHCII på membranen for at indlæse dem på et senere tidspu…

Discussion

T-celler eller T-lymfocytter er en type af leukocytter, som spiller en central rolle i cellemedieret immunitet og tilhører immunrespons adaptive 26. T-celler er resistente over for at blive smittet in vitro, men nogle rapporter tyder på, at de kan blive inficeret in vivo 14,15. De intime kontakter APC og T-celler under immune synapse fungere som en platform for udveksling af biologisk materiale 13, herunder nogle vira som HIV 11. Det blev for nylig vist, at…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by grants BFU2011-29450, BFU2008-04342/BMC from the Spanish Ministry of Science and Innovation and PIES201020I046 from Consejo Superior de Investigaciones Cientìficas (CSIC).

Materials

RPMI Fisher Scientific SH3025501
r-GMCSF Peprotech 315-03
LPS SIGMA L2630-10mg
Na Pyruvate Thermo Scientific SH3023901
2-ME Gibco 31350-010
OVAp OTII (323–339) GenScript
Cell Strainer 70uM BD 352350
 30uM Syringe Filcons Sterile BD 340598
AutoMacs Classic Miltenyi Biotec 130-088-887
Gentamicin Normon 624601.6
Transwell Costar 3415
LB Pronadisa 1231
Agar Pronadisa 1800
Paraformaldehyde 16% Electron Microscopy Sciences 15710
Triton X-100
CD8 biot BD Biosciences 553029
IgM Biot ImmunoStep Clone RMM-1
B220 Biot BD Biosciences 553086
CD19 biot BD Biosciences 553784
MHC-II Biot (I-A/I-E) BD Biosciences 553622
CD11b biot Immunostep 11BB-01mg
CD11c biot Immunostep 11CB3-01mg
DX5 biot BD Biosciences 553856
Gr-1 biot BD Biosciences 553125
CD16/CD32 ImmunoStep M16PU-05MG
anti Salmonella ABD Serotec 8209-4006
CD11cPE BD Biosciences 553802
CD4-APC Tonbo Biosciences 20-0041-U100
Gr-1 APC BD Biosciences 553129
MHC-II (I-A/I-E) FITC BD Biosciences 553623
Alexa-Fluor 647 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Antibody, highly cross-adsorbed Invitrogen A-21245
CMAC (7-amino-4-chloromethylcoumarin) Life technologies C2110
BSA SIGMA A7030-100G
Streptavidin MicroBeads Miltenyi Biotec 130-048-101
BD FACSCanto II BD Biosciences

Referências

  1. Medzhitov, R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response. Nature. 449 (7164), 819-826 (2007).
  2. Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Raff, M., Roberts, K., Walter, P. . Molecular biology of the cell. , (1989).
  3. Pancer, Z., Cooper, M. D. The evolution of adaptive immunity. Annual Review of Immunology. 24, 497-518 (2006).
  4. Rhoades, R. A., Bell, D. R. . Medical Phisiology. , (2012).
  5. Cossart, P. Bacterial Invasion: The Paradigms of Enteroinvasive Pathogens. Science. 304 (5668), 242-248 (2004).
  6. Kaufmann, S. H., Schaible, U. E. Antigen presentation and recognition in bacterial infections. Current Opinion in Immunology. 17 (1), 79-87 (2005).
  7. Pizarro-Cerdá, J., Cossart, P. Bacterial Adhesion and Entry into Host Cells. Cell. 124 (4), 715-727 (2006).
  8. Dustin, M. L. T-cell activation through immunological synapses and kinapses. Immunological Reviews. 221, 77-89 (2008).
  9. Calabia-Linares, C., Robles-Valero, J., et al. Endosomal clathrin drives actin accumulation at the immunological synapse. Journal of Cell Science. 124 (5), 820-830 (2011).
  10. Westcott, M. M., Henry, C. J., Cook, A. S., Grant, K. W., Hiltbold, E. M. Differential susceptibility of bone marrow-derived dendritic cells and macrophages to productive infection with Listeria monocytogenes. Cellular Microbiology. 9 (6), 1397-1411 (2007).
  11. Geijtenbeek, T. B., Kwon, D. S., et al. DC-SIGN, a dendritic cell-specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells. Cell. 100 (5), 587-597 (2000).
  12. Izquierdo-Useros, N., Naranjo-Gòmez, M., et al. HIV and mature dendritic cells: Trojan exosomes riding the Trojan horse. PLoS Pathogens. 6 (3), e1000740 (2010).
  13. Mittelbrunn, M., Sanchez-Madrid, F. Intercellular communication: diverse structures for exchange of genetic information. Nature Reviews. Molecular cell biology. 13 (5), 328-335 (2012).
  14. McElroy, D. S., Ashley, T. J., D’Orazio, S. E. Lymphocytes serve as a reservoir for Listeria monocytogenes growth during infection of mice. Microbial Pathogenesis. 46 (4), 214-221 (2009).
  15. Salgado-Pabon, W., Celli, S., et al. Shigella impairs T lymphocyte dynamics in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (12), 4458-4463 (2013).
  16. Cruz Adalia, A., Ramirez-Santiago, G., et al. T cells kill bacteria captured by transinfection from dendritic cells and confer protection in mice. Cell Host and Microbe. 15 (5), 611-622 (2014).
  17. Barnden, M. J., Allison, J., Heath, W. R., Carbone, F. R. Defective TCR expression in transgenic mice constructed using cDNA-based alpha- and beta-chain genes under the control of heterologous regulatory elements. Immunology and Cell Biology. 76 (1), 34-40 (1998).
  18. Matheu, M. P., Sen, D., Cahalan, M. D., Parker, I. Generation of bone marrow derived murine dendritic cells for use in 2-photon imaging. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (17), (2008).
  19. Inaba, K., Inaba, M., et al. Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplemented with granulocyte/macrophage colony-stimulating factor. Journal of Experimental Medicine. 176 (6), 1693-1702 (1992).
  20. Thöne, F., Schwanhäusser, B., Becker, D., Ballmaier, M., Bumann, D. FACS-isolation of Salmonella-infected cells with defined bacterial load from mouse spleen. Journal of Microbiological Methods. 71 (3), 220-224 (2007).
  21. Vaudaux, P., Waldvogel, F. A. Gentamicin antibacterial activity in the presence of human polymorphonuclear leukocytes. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 16 (6), 743-749 (1979).
  22. Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M., Coligan, J. E. Chapter 14, The isolation and characterization of murine macrophages. Current protocols in immunology. , Unit 14.1 (2008).
  23. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. Isolation and th17 differentiation of naïve CD4 T lymphocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (79), e50765 (2013).
  24. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (41), (2010).
  25. Foucar, K., Chen, I. M., Crago, S. Organization and operation of a flow cytometric immunophenotyping laboratory. Seminars in diagnostic pathology. 6 (1), 13-36 (1989).
  26. Itano, A. A., Jenkins, M. K. Antigen presentation to naive CD4 T cells in the lymph node. Nature Immunology. 4 (8), 733-739 (2003).

Play Video

Citar este artigo
Cruz-Adalia, A., Ramírez-Santiago, G., Torres-Torresano, M., Garcia-Ferreras, R., Veiga Chacón, E. T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells. J. Vis. Exp. (107), e52976, doi:10.3791/52976 (2016).

View Video