Summary

Long Term intra multiphoton Mikros Imaging av immunceller i friske og syke leveren Bruke CXCR6.Gfp Reporter Mus

Published: March 24, 2015
doi:

Summary

Stable intravital high-resolution imaging of immune cells in the liver is challenging. Here we provide a highly sensitive and reliable method to study migration and cell-cell-interactions of immune cells in mouse liver over long periods (about 6 hours) by intravital multiphoton laser scanning microscopy in combination with intensive care monitoring.

Abstract

Leverbetennelse som en respons på skade er en svært dynamisk prosess som involverer infiltrering av distinkte subtyper av leukocytter, inkludert monocytter, neutrofiler, T-celle-undergrupper, B-celler, naturlige killer (NK) og NKT-celler. Intramikroskopi av leveren for overvåking av immuncellemigrasjon er spesielt utfordrende på grunn av de høye krav til prøveopparbeidelse og fiksering, optisk oppløsning og langsiktig dyr overlevelse. Likevel, kan dynamikken i inflammatoriske prosesser samt cellulære interaksjonsstudier gi viktig informasjon for bedre å forstå initiering, progresjon og regresjon av inflammatorisk leversykdom. Derfor, ble en svært følsom og pålitelig metode etablert for å studere migrasjon og celle-celle-interaksjoner av forskjellige immunceller i muselever over lange perioder (ca. 6 timer) ved intravital to-foton laser scanning mikroskop (TPLSM) i kombinasjon med intensiv pleie overvåking.

ent "> Fremgangsmåten omfatter gitt en svak preparat og stabil fiksering av leveren med minimal forstyrrelse av organet; langtidsintravital avbildning ved hjelp av flerfarget multiphoton mikroskopi med praktisk talt ingen fotobleking eller fototoksiske effekter over en tidsperiode på opp til 6 timer, slik at sporings av spesifikke leukocytt-undersett, og stabile avbildningsforhold på grunn av omfattende overvåking av mus viktige parametere og stabilisering av sirkulasjonen, temperatur og gassutveksling.

For å undersøke lymfocyttmigrering ved leverinflammasjon CXCR6.gfp knock-in-mus ble utsatt for intravital leveravbildning i henhold til grunnlinjebetingelser og etter akutt og kronisk leverskade indusert ved intraperitoneal injeksjon (e) av karbontetraklorid (CCI4).

CXCR6 er en kjemokinreseptor uttrykt på lymfocytter, hovedsakelig på Natural Killer T (NKT) -, Natural Killer (NK) – og undergrupper av T-lymfocytter som CD4 T-celler, men også slimhinne associrerte invariant (MAIT) T-celler 1. Etter den vandrende mønster og posisjonering av CXCR6.gfp + immunceller tillatt en detaljert innsikt i deres endrede adferd på leverskade og derfor sitt potensial engasjement i sykdomsprogresjon.

Introduction

Visualisering av celler og cellefunksjoner i hele organer eller hele organismer har vært av stor interesse for mer enn 50 år, inkludert nesten alle deler av kroppen 2. Derfor noen tidlige studier allerede anvendt intravital avbildning av leveren 3,4. Men flere begrensninger eksisterer oppdatert om langsiktig stabil høyoppløselig avbildning av leveren vev.

På grunn av den anatomiske stilling av leveren i nær kontakt med membranen og mage-tarmkanalen 5, er den mest vanlig problem for mikroskopisk intrabilde bevegelse på grunn av respirasjon, og, i mindre grad, peristaltiske av tarmkanalen 6. I forhold til andre faste organer, er leverkirurgi spesielt utfordrende. På grunn av den tette microvascular struktur, kan kirurgisk manipulering føre til massive hemoragisk lesjoner, nedsatt mikrosirkulasjon 7 og også aktivering av bosatt i-immun celler som Kupffer celler 8. Derfor, mekanisk fiksering av vevet som i andre sammenhenger 6,9 er sannsynlig å forstyrre den intramikros bildebehandling.

I en frisk lever, befinner seg 10 til 15% av det totale blodvolum i leveren vaskulaturen, og organ mottar rundt 25% av den totale blodsirkulasjon 10, slik at organet meget følsom for endringer i sirkulasjon (f.eks, blod trykkfluktuasjoner ). Derfor vil forstyrrelser i leverblodstrømmer på grunn av f.eks skjærspenning, fortrengning, skade av overdreven vev håndtering eller sentralisert sirkulasjon føre til kunstige endringer i leukocytter trekkadferden, nedsatt leveroksygenering og derfor ytterligere skade leveren, påvirker leveren immunresponser samt som organbevaring og total levetid av dyret.

Tidlige mikroskopiske studier var basert på intra epifluorescence microscopy, men flere tekniske begrensninger som foto bleking og lav penetrasjon dybde begrense bruken av denne teknikken for langsiktig leveren bildebehandling 4,11,12. Med utviklingen av multiphoton mikros på 1990-tallet, ble begrensningene i fotobleking eller inntrengningsdybde i hovedsak løst, som denne nye metoden var teknisk i stand til å utføre imaging studier i nesten alle organer i henhold til virkelige situasjoner 13-15. Men de viktigste gjenværende utfordringer når det gjelder diagnostikk av lever var: pusten bevegelser, autofluorescence av levervev, sikring uforandret blodgjennomstrømningen i lever sinusoids, og spesielt stabil bildebehandling for lengre perioder av flere hr 16.

Selv om flere studier adressert funksjons og migrering av forskjellige leukocytter i leveren 17, f.eks NKT-celler, T-celler 18 til 20 21,22, 23,24 levermakrofager eller neutrofiler 25, langtids multiphoton microscopy bildebehandling hadde ennå ikke er opprettet, en oppgave enda mer utfordrende i dyr med akutt eller kronisk leversykdom på grunn av den eksisterende skader og derfor høyere mottakelighet for ytterligere skade 26. Men overvåking trekkadferden og cellulær funksjon av leukocytter i leveren i sanntid gjør at ny innsikt i deres spesielle rolle i lever homeostase og sykdom 27.

Kjemokinreseptoren CXCR6 uttrykkes på flere lymfocytt-delmengdene, inkludert naturlige killer (NK) celler, NKT-celler og noen T-celle-populasjoner 18,28. Tidligere studier på mus har indikert at CXCR6 og dens beslektede ligand CXCL16 kan kontrollere patruljering av NKT celler på lever sinusoids under homeostase. Følgelig har bruken av CXCR6.gfp mus (som bærer et knock-in for grønt fluorescerende protein [GFP] i CXCR6 locus) er beskrevet for å undersøke overføringen av lymfocytter i forskjellige organer som hjernen 29og også lever 18,20, som viser økt infiltrasjon av CXCR6.gfp celler på betennelse.

Med fremgangsmåten er gitt i denne studien var det mulig å følge disse prosesser over et langt tidsrom under stabiliserte betingelser. Den intravital multiphoton basert fremgangsmåte tillater avbildning som var meget reproduserbar med minimal forstyrrelse av dyret og det organ; optimalisert for langsiktig dyr overlevelse ved omfattende overvåkning fulgt av tett kontroll av respirasjon og sirkulasjon; og svært fleksibel og enkel å ta i bruk også til andre parenkymatøs organer som nyre eller milt.

Protocol

MERK: Forsøkene ble utført i henhold til den tyske lovgivningen om dyrestudier etter den 'Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr' (NIH publikasjon, 8. utgave, 2011) og direktivet 2010/63 / EU om vern av dyr brukt til vitenskapelige formål (Den europeiske unions tidende, 2010). Offisiell tillatelse ble gitt fra statlige dyr omsorg og kontorbruk (LANUV Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Tyskland). MERK: Trinnene som kan utelates for kortsiktig bildebehandling (f.eks knip…

Representative Results

Å validere vår intra TPLSM tilnærming, vi utsatt CXCR6 GFP / + mus til intra TPLSM bildebehandling. Musene var enten ubehandlet som grunnlinjekontroller eller utsatt for en enkelt intraperitoneal injeksjon av karbontetraklorid (CCI4) for å indusere akutt leverskade 20. Videosekvenser ble utført over et tidsrom på 2-5 timer, og cellene ble spores over tid på grunn av den grønne fluorescens. Å vise generell mobilbevegelighet, ble alle sporene som ble o…

Discussion

Målet for studien var å utvikle et sterkt standardisert, stabil og reproduserbar metode for intravital TPLSM avbildning av leveren. Intra bildebehandling generelt har gitt verdifull innsikt i mobilnettet oppførsel under reelle levekår følgende homing og samspillet mellom ulike leukocyttpopulasjoner i utvikling, homeostase og sykdom. Imidlertid, noe utfordrende anatomisk posisjon i leveren, grunnet som åndedretts- og peristaltiske tarmbevegelse direkte overføres til leveren, så vel som deres høye skjørhet i for…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Central Animal facility of the University Hospital Aachen for technical support. This work was supported by the German Research Foundation (DFG Ta434/2-1, DFG SFB/TRR 57) and by the Interdisciplinary Center for Clinical Research (IZKF) Aachen. This work was further supported by the Core Facility ”Two-Photon Imaging”, a Core Facility of the Interdisciplinary Center for Clinical Research (IZKF) Aachen within the Faculty of Medicine at RWTH Aachen University.

Materials

Anesthetics
Buprenorphine Essex Pharma 997.00.00 Analgeticum, 0.1 mg/kg
Fentanyl Rotex Medica charge: 30819
Fluovac anesthesia system Harvard Apparatus 34-1030
Glucose 5% Braun
ISOFLO (Isoflurane Vapor) vaporiser Eickemeyer 4802885
Isoflurane Forene Abbott B 506
Isotonic (0.9%) NaCl solution DeltaSelect GmbH PZN 00765145
Ketamin 10% ceva Charge: 36217/09
Xylazin 2% medistar Charge: 04-03-9338/23
Consumable supplies
20ml Syringe BD Plastipak
250ml Erlenmeyer flask Schott Duran 21 226 36
25mL Beaker 2x Schott Duran 50-1150
2ml syringe BD Plastipak
4-0 Vicryl suture Ethicon V7980
Agarose commercially available
Bepanthen Eye and Nose ointment Bayer Vital GmbH 6029009.00.00
Change-A-Tip Deluxe High-Temp Cautery Kit Fine Science Tools Inc. 18010-00
Cotton Gauze swabs Fuhrmann GmbH 32014
Cover Slip 24x50mm ROTH 1871
Durapore silk tape 3M 1538-1
Feather disposable scalpel Feather 02.001.30.011
Fine Bore Polythene Tubing 0,58mm ID Smiths medical 800/100/200
Histoacryl Braun 1050052 5x 0,5ml
Leukoplast BSN Medical Inc.
Microscope Slides ROTH 1879
Poly-Alcohol Haut…farblos Antisepticum Antiseptica GmbH 72PAH200
Sterican needle 18 G x 1 B. Braun 304622
Sterican needle 27 3/4 G x 1 B. Braun 4657705
Tissue paper commercially available
Surgical Instruments
Amalgam burnisher 3PL Gatz 0110?
Blair retractors (4 pronged (blunt)) x2 Storz&Klein S-01134
Dumont No.7 forceps Fine Science Tools Inc. 91197-00
Graefe forceps curved x1 Fine Science Tools Inc. 11151-10
Graefe forceps straight x2 Fine Science Tools Inc. 11050-10
Heidemann spatula HD2 Stoma 2030.00
Needle holder Mathieu Fine Science Tools Inc. 12010-14
Scissor Fine Science Tools Inc. 14074-11
Semken forceps Fine Science Tools Inc. 11008-13
Small surgical scissors curved Fine Science Tools Inc. 14029-10
Small surgical scissors straight Fine Science Tools Inc. 14028-10
Standard pattern forceps Fine Science Tools Inc. 11000-12
Vannas spring scissors Fine Science Tools Inc. 15000-08
Equipment
ECG Trigger Unit Rapid Biomedical 3000003686
MICROCAPSTAR End-Tidal Carbon Dioxide Analyzer AD Instruments
Minivent Typ 845 Harvard Apparatus 73-0043
Multiphoton microscope Trimscope I LaVision
Perfusor Compact B. Braun
PowerLab 8/30 8 channel recorder AD Instruments PL3508
Temperature controlled heating pad Sygonix 26857617
Temperature sensor comercially available
Temperature controlled System for Microscopes -Cube&Box Life Imaging Services

Referências

  1. Dusseaux, M., et al. Human MAIT cells are xenobiotic-resistant, tissue-targeted, CD161hi IL-17-secreting T cells. Blood. 117 (4), 1250-1259 (2011).
  2. Reese, A. J. The effect of hypoxia on liver secretion studied by intravital fluorescence microscopy. Br J Exp Pathol. 41, 527-535 (1960).
  3. Bhathal, P. S., Christie, G. S. Intravital fluorescence microscopy study of bile ductule proliferation in guinea pigs. Gut. 10 (11), 955 (1969).
  4. Stefenelli, N. Terminal vascular system and microcirculation of the rat liver in intravital microscopy. Wien Klin Wochenschr. 82 (33), 575-578 (1970).
  5. Hori, T., et al. Simple and sure methodology for massive hepatectomy in the mouse. Ann Gastroenterol. 24 (4), 307-318 (2011).
  6. Tanaka, K., et al. Intravital dual-colored visualization of colorectal liver metastasis in living mice using two photon laser scanning microscopy. Microsc Res Tech. 75 (3), 307-315 (2011).
  7. Schemmer, P., Bunzendahl, H., Klar, E., Thurman, R. G. Reperfusion injury is dramatically increased by gentle liver manipulation during harvest. Transpl Int. 13, S525-S527 (2000).
  8. Schemmer, P., et al. Activated Kupffer cells cause a hypermetabolic state after gentle in situ manipulation of liver in rats. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 280 (6), G1076-G1082 (2001).
  9. Toiyama, Y., et al. Intravital imaging of DSS-induced cecal mucosal damage in GFP-transgenic mice using two-photon microscopy. J Gastroenterol. 45 (5), 544-553 (2010).
  10. Zimmon, D. S. The hepatic vasculature and its response to hepatic injury: a working hypothesis. Yale J Biol Med. 50 (5), 497-506 (1977).
  11. Wong, J., et al. A minimal role for selectins in the recruitment of leukocytes into the inflamed liver microvasculature. J Clin Invest. 99 (11), 2782-2790 (1997).
  12. Bonder, C. S., et al. Essential role for neutrophil recruitment to the liver in concanavalin A-induced hepatitis. J Immunol. 172 (1), 45-53 (2004).
  13. Xu, C., Zipfel, W., Shear, J. B., Williams, R. M., Webb, W. W. Multiphoton fluorescence excitation: new spectral windows for biological nonlinear microscopy. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (20), 10763-10768 (1996).
  14. Centonze, V. E., White, J. G. Multiphoton excitation provides optical sections from deeper within scattering specimens than confocal imaging. Biophys J. 75 (4), 2015-2024 (1998).
  15. Amore, J. D., et al. In vivo multiphoton imaging of a transgenic mouse model of Alzheimer disease reveals marked thioflavine-S-associated alterations in neurite trajectories. J Neuropathol Exp Neurol. 62 (2), 137-145 (2003).
  16. Hickey, M. J., Westhorpe, C. L. V. Imaging inflammatory leukocyte recruitment in kidney, lung and liver–challenges to the multi-step paradigm. Immunol Cell Biol. 91 (4), 281-289 (2013).
  17. McLellan, M. E., Kajdasz, S. T., Hyman, B. T., Bacskai, B. J. In vivo imaging of reactive oxygen species specifically associated with thioflavine S-positive amyloid plaques by multiphoton microscopy. J Neurosci. 23 (6), 2212-2217 (2003).
  18. Geissmann, F., et al. Intravascular Immune Surveillance by CXCR6+ NKT Cells Patrolling Liver Sinusoids. PLoS Biology. 3 (4), (2005).
  19. Velázquez, P., et al. Cutting edge: activation by innate cytokines or microbial antigens can cause arrest of natural killer T cell patrolling of liver sinusoids. J Immunol. 180 (4), 2024-2028 (2008).
  20. Wehr, A., et al. Chemokine receptor CXCR6-dependent hepatic NK T Cell accumulation promotes inflammation and liver fibrosis. J Immunol. 190 (10), 5226-5236 (2013).
  21. Khandoga, A., Hanschen, M., Kessler, J. S., Krombach, F. CD4+ T cells contribute to postischemic liver injury in mice by interacting with sinusoidal endothelium and platelets. Hepatology. 43 (2), 306-315 (2006).
  22. Egen, J. G., et al. Macrophage and T cell dynamics during the development and disintegration of mycobacterial granulomas. Immunity. 28 (2), 271-284 (2008).
  23. Beattie, L., et al. Leishmania donovani-induced expression of signal regulatory protein alpha on Kupffer cells enhances hepatic invariant NKT-cell activation. Eur J Immunol. 40 (1), 117-123 (2010).
  24. Beattie, L., et al. Dynamic imaging of experimental Leishmania donovani-induced hepatic granulomas detects Kupffer cell-restricted antigen presentation to antigen-specific CD8 T cells. PLoS Pathog. 6 (3), e1000805 (2010).
  25. McDonald, B., et al. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 330 (6002), 362-366 (2010).
  26. Vanheule, E., et al. An intravital microscopic study of the hepatic microcirculation in cirrhotic mice models: relationship between fibrosis and angiogenesis. Int J Exp Pathol. 89 (6), 419-432 (2008).
  27. Jenne, C. N., Kubes, P. Immune surveillance by the liver. Nat Immunol. 14 (10), 996-1006 (2013).
  28. Zimmermann, H. W., Tacke, F. Modification of chemokine pathways and immune cell infiltration as a novel therapeutic approach in liver inflammation and fibrosis. Inflamm Allergy Drug Targets. 10 (6), 509-536 (2011).
  29. Kim, J. V., et al. Two-photon laser scanning microscopy imaging of intact spinal cord and cerebral cortex reveals requirement for CXCR6 and neuroinflammation in immune cell infiltration of cortical injury sites. J Immunol Methods. 352 (1-2), 89-100 (2010).
  30. Karlmark, K. R., et al. Hepatic recruitment of the inflammatory Gr1+ monocyte subset upon liver injury promotes hepatic fibrosis. Hepatology. 50 (1), 261-274 (2009).
  31. Heymann, F., et al. Hepatic macrophage migration and differentiation critical for liver fibrosis is mediated by the chemokine receptor C-C motif chemokine receptor 8 in mice. Hepatology. 55 (3), 898-909 (2012).
  32. Ramachandran, P., et al. Differential Ly-6C expression identifies the recruited macrophage phenotype, which orchestrates the regression of murine liver fibrosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (46), E3186-E3195 (2012).
  33. Moles, A., et al. A TLR2/S100A9/CXCL-2 signaling network is necessary for neutrophil recruitment in acute and chronic liver injury in the mouse. J Hepatol. 60 (4), 782-791 (2014).
  34. Hammerich, L., et al. Chemokine receptor CCR6-dependent accumulation of γδ T cells in injured liver restricts hepatic inflammation and fibrosis. Hepatology. 59 (2), 630-642 (2014).
  35. Syn, W. -. K., et al. NKT-associated hedgehog and osteopontin drive fibrogenesis in non-alcoholic fatty liver disease. Gut. 61 (9), 1323-1329 (2012).
  36. McDonald, B., et al. Interaction of CD44 and hyaluronan is the dominant mechanism for neutrophil sequestration in inflamed liver sinusoids. J Exp Med. 205 (4), 915-927 (2008).
  37. Egen, J. G., et al. Intravital imaging reveals limited antigen presentation and T cell effector function in mycobacterial granulomas. Immunity. 34 (5), 807-819 (2011).
  38. Singer, G., Stokes, K. Y., Granger, D. N. Hepatic microcirculation in murine sepsis: role of lymphocytes. Pediatr Surg Int. 24 (1), 13-20 (2008).
  39. Phillipson, M., Kubes, P. The neutrophil in vascular inflammation. Nat Med. 17 (11), 1381-1390 (2011).
  40. Khandoga, A. G., et al. In vivo imaging and quantitative analysis of leukocyte directional migration and polarization in inflamed tissue. PLoS One. 4 (3), e4693 (2009).

Play Video

Citar este artigo
Heymann, F., Niemietz, P. M., Peusquens, J., Ergen, C., Kohlhepp, M., Mossanen, J. C., Schneider, C., Vogt, M., Tolba, R. H., Trautwein, C., Martin, C., Tacke, F. Long Term Intravital Multiphoton Microscopy Imaging of Immune Cells in Healthy and Diseased Liver Using CXCR6.Gfp Reporter Mice. J. Vis. Exp. (97), e52607, doi:10.3791/52607 (2015).

View Video