La mesure de haute précision (mieux que 100 ppm / unité de masse atomique) zinc composition en isotopes stables n'a été possible pendant environ 15 ans grâce au développement de multi-capteurs plasma source spectromètres de masse et a depuis été essentiellement appliquée dans la Terre et des sciences planétaires. Les applications dans le domaine médical sont nouveaux et ont un fort potentiel en tant que biomarqueurs pour les maladies qui modifient le métabolisme du zinc (par exemple, la maladie d'Alzheimer). Cet article présente une méthode pour mesurer avec une grande précision les ratios des isotopes stables naturels de zinc dans divers organes de la souris. La même chose pourrait être applicable à des échantillons humains. Le procédé comprend la dissolution des organes, la purification chimique de zinc par rapport au reste des atomes, et ensuite l'analyse du rapport isotopique sur un spectromètre de masse.

La qualité des mesures isotopiques de Zn est tributaire de la qualité de la purification chimique (pureté de Zn, faible échantillon viergeARED à la quantité de Zn présent dans l'échantillon, le rendement chimique élevée de la procédure) et sur le contrôle de la polarisation instrumentale. La grande pureté de la fraction Zn finale est nécessaire pour enlever les deux interférences isobares et les interférences non isobarique qui créent un effet de matrice. Nucléides isobariques créent des interférences directes (par exemple, ⁶⁴ Ni). Des interférences isobariques non génèrent l'effet dit "matrice" et modifier la précision des mesures d'analyse en modifiant l'état de l'ionisation par rapport à la norme de zinc pur à laquelle les échantillons sont comparés à ^une. Un faible vide (<10 ng) indique qu'il n'y a aucune contamination des échantillons par Zn externe qui biaiserait de la composition isotopique mesurée. Comme isotopes Zn peuvent être fractionnés au cours de la Chromatographie d'échange d'ions ^2, la collection de tous les atomes de Zn assure qu'aucun fractionnement isotopique se produit, ce qui implique que le procédé chimique doit avoir un rendement complet. Enfin, la correction du fractionnement isotopique instrumentale pendant la mesure de spectrométrie de masse se fait via la méthode "de bracketing standard".

Par conséquent, les principales difficultés pour obtenir des mesures précises sont le contrôle de la contamination externe (c.-bas blanc), la production d'une purification chimique de plein rendement qui est propre de tous les autres atomes ou de molécules, et la correction du fractionnement isotopique instrumentale sur le spectromètre de masse. Dans cet article, nous allons décrire notre protocole analytique pour séparer Zn à partir d'organes de la souris ainsi que les mesures de spectrométrie de masse.

L'extraction se fait en utilisant une faible quantité d'acides dilués (HBr / HNO ₃ de médias) sur les micro-colonnes (0,5 pi et 0,1 pi) de résine échangeuse d'anions. Il dispose d'un plein rendement et les mesures ont une reproductibilité externe supérieure à 50 ppm sur le rapport Zn ^66/64 Zn. Un autre avantage de la méthod est qu'il est très rapide. La méthode est donc très bien adaptée aux sciences médicales, dans lesquels on a besoin d'analyser un grand nombre d'échantillons par rapport aux géosciences, où ces méthodes analytiques ont été développés.