このビデオでは、我々は生きたマウスの背側脊髄の上に慢性光学イメージング室を移植するための手順を説明します。室、外科的手順、および慢性のイメージングを見直し、実証されている。
Studies in the mammalian neocortex have enabled unprecedented resolution of cortical structure, activity, and response to neurodegenerative insults by repeated, time-lapse in vivo imaging in live rodents. These studies were made possible by straightforward surgical procedures, which enabled optical access for a prolonged period of time without repeat surgical procedures. In contrast, analogous studies of the spinal cord have been previously limited to only a few imaging sessions, each of which required an invasive surgery. As previously described, we have developed a spinal chamber that enables continuous optical access for upwards of 8 weeks, preserves mechanical stability of the spinal column, is easily stabilized externally during imaging, and requires only a single surgery. Here, the design of the spinal chamber with its associated surgical implements is reviewed and the surgical procedure is demonstrated in detail. Briefly, this video will demonstrate the preparation of the surgical area and mouse for surgery, exposure of the spinal vertebra and appropriate tissue debridement, the delivery of the implant and vertebral clamping, the completion of the chamber, the removal of the delivery system, sealing of the skin, and finally, post-operative care. The procedure for chronic in vivo imaging using nonlinear microscopy will also be demonstrated. Finally, outcomes, limitations, typical variability, and a guide for troubleshooting are discussed.
無傷の生物の生体内顕微鏡でタイムラプスは、免疫組織化学などの従来の単一の時点分析にアクセスできない複雑な生物学的プロセス、の直接可視化を可能にします。具体的には、多光子顕微鏡法(MPM)1は、2,3-まで4 1mmの過剰の撮像が達成されたげっ歯類の新皮質のような組織散乱における撮像を可能にする。シングル手順は数週間から数ヶ月のために、脳への光アクセスを許可する5-7れる外科の準備と組み合わせることで、これらの顕微鏡のアプローチは、健康と病気の状態8-11に、脳内の動的なプロセスを研究するために使用されている。また、プロトコルは行動アッセイ中の細胞の解像度機能イメージングを可能にし、目を覚まし( すなわち、非麻酔下の)動物でのin vivoイメージングのために提供する12,13開発されてきた。これらのプロトコルはcomparisために使用されている相関神経活動14のアドオンは、麻酔し、目を覚ました動物で15シグナリングアストロサイトのカルシウムは、タスク固有のニューロンのクラスタ16の同定、および神経細胞の能力は、ウィスカの刺激17上に物体の位置を判別する。
in vivoイメージング健康および病理学的機構を解明するために、このアプローチの潜在的な、経時所与の疾患機構18のような急性の軸索変性症(AAD)の同定を可能にする、マウス脊髄(SC)に適用した。その後の研究は、後根神経節(DRG)軸索再生19、軸索再生20における血管の役割は、傷害21に応答してグリア走化性、実験的自己免疫性脳脊髄炎におけるT細胞の遊走(EAE)22、活性に対する末梢病変の影響を調査しミクログリア23,24とamyotrophに応答したアストロサイト25のIC側索硬化症(ALS)、SC損傷(SCI)26後の軸索発芽におけるSTAT-3の役割、およびEAE 27における軸索喪失と回復のメカニズム。これらのアプローチの成功にもかかわらず、すべてのこれらの研究は、アクセス可能な時点の数を制限することにより、すべての撮影時点における短期のダイナミクスの研究、あるいは動物の必要な繰り返しの外科的開口部を制限する、単一イメージングセッションに限られていたと交絡実験的な成果物の可能性を増加させる。これらの手術のためのプロトコルは、以前28,29公開されている。
最近、我々は繰り返し手術を必要とせずに、複数の週の上にマウスSCにタイムラプスMPMイメージングを有効に慢性脊髄室の移植のための技法30を発表した。簡単に言えば、この外科的準備が低く胸椎における椎弓切除と4部構成室の注入を行う含まれています。チャンバーは含ま椎弓切除を取り囲む椎骨、及びカバーガラスSC上に配置され、シリコーンエラストマーで固定クランプ3つのカスタム加工されたステンレス鋼製部品。この技法は、繰り返し手術を必要とせずに健康で負傷した状態での術後以上の5週間に出ルーチンイメージングを可能にした。撮像時間点の数は、動物が麻酔導入を許容できる周波数によって制限された。イメージング寿命は、SCの表面上に密集し、線維組織の成長によって制限されていた。さらに、我々は、外科用インプラントは、運動機能には長期的な影響を及ぼさなかったことを確認した。
我々の最初の出版以来、またSCの長期イメージングを可能にする別のアプローチは、他の場所31-33に記載されている。このプロトコルは、当社が開発した脊髄室を移植するための私たちの手順を示しています。
ここで実証した技術は繰り返し、タイムラプスを可能にし、多くの週まで出背マウスSCのin vivoイメージングは、その後の外科的処置を必要とせずに動作可能に投稿してください。この手順は、繰り返し手術イメージング研究の上や携帯ダイナミクスに関する情報が失われportmortem組織学的アプローチ、オーバー実質的な改善を表している。我々は以前30が インビボで SCIの病態を研究するためのこの技術の価値を実証しています。
イメージングの最大長手方向の広がりは、SCの背側表面上に密な線維組織の成長によって決定した。時間が経つにつれて、この成長は、画像コントラスト及び解像度の損失をもたらした。この成長は、代替外科の製剤31で確認されています。逸話的には、表面をシールする、この成長は慎重に血液製剤を除去するために、背側SCの表面を洗浄することにより最小限に抑えることができることを観察したシアノアクリレートとカット骨、シリコーンエラストマーとよく、チャンバの縁部をシールし、背側SCとカバーガラスとの間の間隙空間を最小化する。
近年、ポリカーボネートチャンバーを用いて我々自身に類似した別のアプローチは、32実証されている。それが私たちのステンレス鋼部品の場合ではないX線及び音響イメージングモダリティと互換性があるので、ポリカーボネートの使用が有利である。しかし、3Dプリンタの現在ユビキタス技術で、チャンバー部品は、特定のニーズに合わせて多種多様な材料から製造することができる。我々は最近、明確なフォトポリマー内のすべての私達の部分を印刷している。
密閉チャンバーの一つの重要な欠点は、薬物やSCイメージング34に適し外因性染料の繰り返し投与量を管理することができないことである。しかし、私たちの本システムの機械的安定性を活かしことにより、我々はすでに成功に私たちの現在の室を使用していたlyがあっても、閉じたチャンバーシステム(未発表)に複数の時点での薬物送達のために許可された皮下移植注入口に接続された髄腔内カテーテルを固定する。また、原因天板のモジュラー性質のため、この準備の将来のバージョンは、両方の治療剤および蛍光標識を繰り返し適用を可能にするために再シール可能なチャンバーが含まれます。これは、薬物送達のための電極、光学インサート、およびポートを記録するためのマウントを有する天板を想定することも可能である。このような追加は可能性が高いFenrich らのより多くのミニマリストシステムを使用して実装するために、より困難になる。31。結論として、私たちの室は、多様な実験が基づくことができるゲートウェイプラットフォームを提供します。
The authors have nothing to disclose.
We thank Dr. Joseph R. Fetcho for his input throughout the development of the procedure.We would like to acknowledge funding from the US National Institutes of Health (R01 EB002019 to C.B.S and DP OD006411 to Joseph R. Fetcho) and the National Science and Research Council of Canada (to M.J.F.) for financial support.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Vannas scissors | Fine Science Tools | 15000-04 | |
forceps, scissors, scalpel, etc. | Fine Science Tools | multiple | |
retractor kit -magnetic fixator | Fine Science Tools | 18200-02 | |
retractor kit -retractor | Fine Science Tools | 18200-09 | other retractors may also be used |
retractor kit -elastomer | Fine Science Tools | 18200-07 | |
feedback controlled heating blanket | CWE Inc. | Model: TC-1000 Mouse Part No. 08-13000 | |
stereotax | N/A | see Farrar et al, Nat. Meth., 9, 297, 2012, Supplement (online) | |
spinal chamber | N/A | see Farrar et al, Nat. Meth., 9, 297, 2012, Supplement (online) | |
spinal chamber holders | N/A | see Farrar et al, Nat. Meth., 9, 297, 2012, Supplement (online) | |
Cyanoacrylate glue | Loctite | Loctite 495 | multiple suppliers |
Teets Cold Cure Coral Powder (dental acrylic powder) | Teets | Mfg. Part: 8101 | multiple suppliers |
Teets Cold Cure Liquid (dental acrylic liquid) | Teets | Mfg. Part: 8501 | multiple suppliers |
Glycopyrrolate | MWI Veterinary Supply | MWI SKU: 29706 (Baxter 1001901602) | |
D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G5767 | |
Bupivacaine | MWI Veterinary Supply | MWI SKU: 029841 (Hospira 116301) | |
Ketoprofen | MWI Veterinary Supply | MWI SKU: 002800 (Pfizer 2193) | |
Dexamethasone | MWI Veterinary Supply | MWI SKU: 501012 (VetOne 1DEX032) | |
KwikSil Elastomer | World Precision Inc. | KWIK-SIL | |
KwikSil Mixing Tips | World Precision Inc. | KWIKMIX |