Gli impianti cocleari (IC) consentire l'udito attraverso la stimolazione elettrica diretta del nervo uditivo. Tuttavia, la scarsa frequenza e la risoluzione intensità limita la qualità di ascoltare con IC. Qui si descrive la stimolazione optogenetic del nervo uditivo nei topi come una strategia alternativa per la ricerca e lo sviluppo uditivo futuri CI.
Stimolazione elettrica diretta di spirale neuroni gangliari (SGNs) per gli impianti cocleari (IC) permette aperto comprensione discorso nella maggior parte dei soggetti sordi impiantati 1- 6. Tuttavia, codifica audio con IC correnti ha scarsa frequenza e intensità risoluzione a causa ampia diffusione corrente da ciascun contatto elettrodo attivando un gran numero di SGNs lungo l'asse tonotopic della coclea 7- 9. Stimolazione ottica viene proposto come alternativa alla stimolazione elettrica che promette spazialmente più limitata attivazione di SGNs e, di conseguenza, la risoluzione maggiore frequenza di codifica. Negli ultimi anni, illuminazione infrarossa diretta della coclea è stato usato per evocare risposte nel nervo uditivo 10. Tuttavia richiede energie superiori a stimolazione elettrica 10,11 e l'incertezza rimane per quanto riguarda il meccanismo sottostante 12. Qui si descrive un metodo basato sulla optogenetics per stimolare SGNsa bassa intensità di luce blu, usando topi transgenici con espressione neuronale di channelrhodopsin 2 (ChR2) 13 o espressione virus-mediata del pescato ChR2-variante 14. Abbiamo utilizzato micro-diodi emettitori di luce (μLEDs) e laser in fibra-accoppiato per stimolare SGNs ChR2-esprimono attraverso una piccola apertura artificiale (cocleostomia) o la finestra rotonda. Abbiamo dosato le risposte da registrazioni del cuoio capelluto dei potenziali evocati (light-optogenetic uditivi del tronco encefalico risposta: OABr) o da registrazioni di microelettrodi del percorso uditivo e li abbiamo confrontati con stimolazione acustica ed elettrica.
Secondo l'Organizzazione Mondiale della Sanità, 360 milioni di persone nel mondo soffrono di perdita dell'udito. Nei soggetti non udenti, la stimolazione elettrica diretta del SGNs da CIS abilitare aperto comprensione discorso nella maggior parte di essi 1,2,4,5. Anche se i CI sono stati impiantati in più di 200.000 persone, quindi essendo il neuroprosthesis di maggior successo, la codifica audio guidato dagli attuali impianti cocleari è limitata. CI sono basati su stimolazione elettrica di un certo numero di elettrodi in cui ognuno attiva una regione tonotopic del nervo uditivo bypassando così l'organo sensoriale disfunzionale del Corti nella coclea. Ascoltatori udito normale possono discriminare più di 2.000 frequenze, tuttavia IC odierni utilizzano solo fino a 12-22 canali di frequenza 4. Ciò è dovuto alla diffusa flusso di corrente da ciascun elettrodo stimolante 7,9, attivando un gran numero di SGNs che rappresentano molte diverse frequenze sonore 8,15. Questolimitazione può essere migliorata mediante stimolazione multipolare ma a scapito di una maggiore potenza assorbita 16,17. La loro uscita gamma dinamica per intensità del suono è anche limitata, di solito sotto 6-20 dB 4,18. Per queste ragioni, migliorando la frequenza e la risoluzione intensità sono obiettivi importanti per aumentare le prestazioni CI per migliorare il riconoscimento vocale in ambienti rumorosi, comprensione prosodia e percezione musicale.
Una scelta diversa per stimolare il nervo uditivo è la stimolazione ottica. La luce può essere focalizzata comodamente a bersaglio una piccola popolazione SGN, promettendo una migliore confinamento spaziale, aumentando la risoluzione di frequenza e ampliare anche la gamma dinamica, con conseguente risoluzione intensità migliore. Infatti, la stimolazione cocleare con luce infrarossa ha dimostrato un'eccellente risoluzione in frequenza in modelli animali 10,11,19. Uno svantaggio di questo tipo di stimolazione è che richiede energie superiori a stimolazione elettrica <sup> 10,11. Inoltre, le preoccupazioni circa la capacità del metodo di stimolare direttamente i neuroni uditivi sono state sollevate 12,20.
In alternativa alla stimolazione infrarossi, impieghiamo optogenetics rendere SGNs sensibile alla luce. Optogenetics è un nuovo approccio che combina tecniche genetiche e ottici per non invasivo e controllo specificamente cellule con alta precisione temporale (recensioni 21- 23). La modalità attualmente utilizzata più frequentemente impiega l'espressione del microbica channelrhodopsin 2 (ChR2) gene di Chlamydomonas reinhardtii e sue varianti, che codifica per un canale cationico luce-dipendenti 24. ChR2 è una proteina transmembrana-7-elica che, quando trasdotto in neuroni e attivato dalla luce blu, agisce come canale cationico non selettivo, depolarizzanti così le cellule di 24 27. ChR2 è stato ben caratterizzato 24,28- 31 e molte varianti sono state sviluppate per modificare action spettro, gating e permeabilità proprietà 32,33. Lo scopo del nostro lavoro è quello di stabilire optogenetics cocleare per l'attivazione della via uditiva. Notiamo che l'approccio optogenetic per stimolare il nervo uditivo richiede manipolazione genetica del ganglio spirale per l'espressione di channelrhodopsin. Lavorando con topi e ratti consente l'utilizzo di animali transgenici disponibili 13,34,35, che forniscono espressione di channelrhodopsin con poca variabilità lungo l'asse tonotopic e attraverso gli animali 36. La combinazione di alleli condizionali 37 con le opportune linee Cre prevede per l'espressione specifica delle cellule. Il trasferimento genico nel ganglio spirale di altri animali richiede l'uso di virus come il virus adeno-associato che è un approccio standard in optogenetics 38 e che abbiamo dimostrato di lavorare bene nei topi 36. La manipolazione genetica ed espressione di transgeni codificanti per proteine estranee rischi orso di effetti negativi come immurisposte e / o proliferazione ne, condizione compromessa o addirittura la morte delle cellule geneticamente manipolate. Ai fini di questa dimostrazione usiamo topi transgenici che esprimono ChR2 nei neuroni gangliari a spirale sotto il Thy-1 promotore 13 per stimolare visivamente il percorso uditivo. Notiamo che altre varianti channelrhodopsin possono essere utilizzati per lo stesso scopo, come abbiamo dimostrato con il trasferimento virus-mediata delle catture variante 14 in SGNs 39.
Mentre optogenetics cocleare richiede manipolazione genetica, che offre la sintonizzazione molecolare per la stimolazione SGN ottimizzata e promesse migliorato la frequenza e la risoluzione di intensità rispetto alla stimolazione elettrica. Stimolazione optogenetic della via uditiva è molto rilevante per ascoltare la ricerca. Ad esempio, promette progressi negli studi della raffinatezza attività-dipendente di tonotopy durante lo sviluppo, nell'analisi del requisito di integrazione spettrale localizat suonoione e del grado di interazione tra specifica frequenza proiezioni afferenti al sistema uditivo centrale.
Gli esperimenti descritti dimostrano la stimolazione optogenetic delle SGNs, e possono, in linea di principio, essere utilizzati anche per stimolare le cellule ciliate interne e / o esterne, a condizione che l'espressione di opsine. Questi esperimenti richiedono molta pazienza e cura. Come detto prima, i passaggi più critici sono una buona / inserimento cocleostomia finestra rotonda e una posizione appropriata e l'orientamento della sorgente luminosa.
Ci sono limitazioni con stimola…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dal Ministero federale tedesco dell'Istruzione e della Ricerca (Bernstein Focus Neurotechnology concedere 01GQ0810, a T. Moser, e MED-EL Germania); la Fondazione tedesca per la ricerca attraverso il Centro per Nanoscale Microscopia e Fisiologia Molecolare del Cervello (FZT 103, T. Moser) e attraverso il SFB889, a N. Strenzke e T. Moser).
Urethane | Sigma Aldrich | U2500-100G | Anesthetic |
Xylazine HCl | RXV | Sedative and analgesic | |
Buprenorphine | Reckitt Benckiser | Analgesic | |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11251-10 | It is used to hold hard tissue, e.g. bone or materials. Never use them to hold soft delicated tissue |
Dumont #5 – Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | Only to be used to hold soft tissue |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | To open the skin and help with the muscle dissection |
Lempert Rongeurs | Fine Science Tools | 16004-16 | They are very useful to easily remove the bone from the bulla |
473-nm laser | Changchun New Industries | MLL-III473 | 100 mW solid state 473 nm laser |
Laser driver | Changchun New Industries | DPSSL MLL 100 mW | TTL operated laser driver |
250 µm optical fiber | Any comercial ; e.g. Thorlabs | M42L05 | |
Acousto-optical modulator | Crystal Technology, Inc. | PCAOM VIS | Control the amount of light coupled into the fiber from the laser |
Controller for Acousto-optical modulator | Crystal Technology, Inc. | 160T1-8SAR-24-0.8 | Control the acousto-optic modulator |
Solo2 laser power & energy meter | Gentec-EO | Used to measure light intensity of the LED and the fiber coupled laser | |
Blue µLED | Cree | C470UT200 | It is necessary to build several μLED devices because easily get damaged or the isolation is not good enough |
TDT System | Tucker-Davis Technologies | RZ6-A-P1 | It can be used any system for stimulus generation presentation and data acquisition |
Single-shank, 16-channel silicon probe | Neuronexus | a1x16-5mm-100-177-CM16LP | These are fragile devises, must be handled carefully and cleaned after use |
Omnidrill | World Precision Instruments | 503598 | Perform craniotomy for IC recordings and reference screw implantation |
Micro Drill Steel Burrs | any commercial; e.g. Fine Science Tools | 19007-07 | |
Self tapping bone screw | any commercial; e.g. Fine Science Tools | 19010-10 | Reference screw |
Micromanipulator | any commercial; e.g. Luigs+NeumannInVivo Unit Junior 4 axis | Positioning of recording probe |