This protocol describes the dissection and cultivation of intact testes and germ-line cysts from Drosophila melanogaster pupae. This method allows microscopic observation of spermatogenesis ex vivo. Furthermore, we describe a pharmacological assay of the effect of inhibitors on specific stages of germ-cell development in pupal testes.
在精子发生在哺乳动物和果蝇,雄性生殖细胞发育了一系列重要的发育过程。这包括从干细胞群,有丝分裂扩增,和减数分裂分化。此外,减数分裂后的生殖细胞经受急剧形态重塑过程以及生殖系染色质组蛋白对鱼精蛋白交换机的全局后生重新配置。
研究一种蛋白在减数分裂后精子通过诱变或其他遗传工具的作用往往是由必要的胚胎,预减数分裂,或者正在调查该蛋白的减数分裂功能受阻。这样的蛋白质的突变体的减数分裂后的表型可以通过较早的发育块被遮蔽,或表型的解释可能是复杂的。模式生物果蝇提供了一个绕过这个问题:完整的睾丸和从早期的蛹解剖生殖细胞囊肿甚至能够开发体外培养液中。利用这种文化使得在种系囊肿和睾丸生精活细胞显微成像。重要的是,培养睾丸和生殖细胞也成为访问药理抑制剂,从而使操纵酶功能的精子发生过程,包括减数分裂后阶段。
提出的协议描述了如何剖析和培育蛹睾丸和生殖系囊肿。在蛹的睾丸和培养条件的发展信息,提供现场旁睾丸和生殖系囊肿文化显微镜成像数据。我们还描述药理实验研究减数分裂后精子,通过针对使用组蛋白乙酰转移酶抑制剂漆树酸的组蛋白对鱼精蛋白开关的实验例证。原则上,本栽培方法可以适用于处理许多ö疗法研究问题的前,后减数分裂精子。
许多物种的雄性生殖细胞的发育是一个连续的过程。它的特点是一系列关键事件的高潮在形态和表观遗传学专业性强精子的形成。在果蝇 ,种系干细胞在睾丸鸿沟尖不对称,以产生新的干细胞和精原细胞,也就是说 ,致力于分化的子代细胞( 见图1概述)1,2 。精原细胞经过四个回合有丝分裂和减数分裂用的发作,令人印象深刻的增长和转录活性的阶段叫做精母细胞阶段。将细胞从一个精原细胞始发保持连接到彼此和开发作为同步包裹由两个体细胞 – 一种结构称为囊肿。减数分裂完成后,将雄性生殖细胞的形态是完全重组(示意于图1中示出)。最初,圆精子细胞伸长,以形成流体动压头结构,以及鞭毛发展。 5 –最终,精子细胞彼此通过所谓个性3的复合物,细胞凋亡相关机制分离。
在许多种,包括果蝇和哺乳动物物种的生殖细胞都伴随着单倍体雄性生殖系染色质的一个显着的表观遗传重排的形态的变化,被称为组蛋白对鱼精蛋白开关(HP开关)6 – 9。可能几乎所有规范组蛋白和许多组蛋白变体分子从DNA的剥离和由小的碱性蛋白质,在鱼精蛋白,从而导致特定于成熟精子染色质的高度紧凑的精蛋白的结构所取代。惠普交换机的一般特性为t他替换规范组蛋白的第一个由组蛋白变体,然后通过过渡蛋白,最后通过鱼精蛋白。所有这一切都伴随着一些改变表观遗传标记,如组蛋白H4的乙酰化水平激增之前,为了去除组蛋白7,10 – 12。
大多数,如果不是全部,上述过程是成熟的,完全可育的精子的发展至关重要。这不仅是在果蝇中,而且在人类中为真,如哺乳动物精子股与无脊椎动物系统1,8,9相当量的相似性。研究男性生殖细胞发展极大地促进了果蝇模型系统。果蝇在遗传上非常方便。突变的产生,以及建立即时株表达融合基因或RNA干扰结构需要多大的努力。然而,在减数分裂后精子发生,利用突变体的研究中ð简单的遗传工具可能会达到一个极限。在果蝇精子发生,转录停止几乎完全进入减数分裂。因此,减数分裂后精子的主要依据是在扩展减数分裂前期13合成翻译压抑和存储的mRNA – 16。因此,如RNA干扰或使用非条件突变体工具不适合用于学习具体的基因产物也满足在预减数分裂或减数分裂的生殖细胞发育所必需的功能的减数分裂后的角色。
果蝇的一个优点是,可以在这样的情况下被利用是解剖完好睾丸和生殖细胞甚至囊肿开发体外培养液中4,12,17的能力– 20。睾丸或生殖系孢囊的解剖和培养可以在活细胞中不仅显微镜观察生殖细胞的发展,但LSO使用药理试验用中, 例如:酶复合物的抑制剂,例如组蛋白乙酰转移酶(HATS),组蛋白脱乙酰酶(HDACs),拓扑异构酶,或蛋白酶。由此,能够减数分裂后精子发生过程中操纵酶功能和监视的发展结果不论胚胎,预减数分裂或减数分裂功能4,12。
在药理试验,我们以前分析了布罗莫蛋白在减数分裂前期的乙酰化相关的本地化版本,以及组蛋白乙酰化水平在减数分裂后精子的后生惠普交换机通过使用针对帽子和12,21的HDAC抑制剂具体的相关性。针对这些试验的高压开关成为可能通过使用飞菌株表达的融合基因histone2AvD-RFP和protamineB-EGFP 12,22的内生模式,通过观察发现蛹睾丸的精子首先经过24及48小时薏仁12之间的高压开关。
提出的协议描述了果蝇蛹,培养条件和药理实验与完整蛹睾丸和睾丸囊肿的剥离。为了这个目的,在puparium形成(APF)后约24小时,蛹睾丸解剖(参见图1和图2)。此时,睾丸没有作连接至其它组织和仅由薄的外皮,这允许更好地渗透通过该抑制剂化合物23,24包围。睾丸是可以很容易地考虑到培养bean-或梨形的器官。这些睾丸解剖,进行培养,并用特异性抑制剂治疗。接着,将抑制剂的效果是使用免疫荧光分析,并融合蛋白表达的荧光显微镜监测,并通过核morphol的比较术处理过的细菌细胞,以未处理的生殖细胞中。在这个协议中提出的条件,也允许开发睾丸和生殖系包囊在培养的实时成像。
所提出的协议描述了解剖果蝇睾丸和单种系囊肿在给定的发育阶段以及对在培养皿的体外发展这些细胞和组织的能力基于两个两个不同的应用程序。一个应用是生命过程的精子发育过程中的药理操纵。重要的是,允许访问不容易使用基于动态遗传学分析功能得到减数分裂后精子。另一种应用是在显微镜下观察生活和发展中的生殖细胞和睾丸。特别是从果蝇细胞和器官的培养的能力本申请的好处生存,并在室温和常压下开发。因此,配备有加热阶段(加热到25℃,标准育种温度)倒置显微镜成像是足以获得在实时成像实验有意义的结果。更多此外,许多表达荧光蛋白标记的蛋白质的实时成像的转基因蝇菌株存在或可以容易地确定。
以获得特定的发育阶段的蛹睾丸或生殖系囊肿,至关重要的是,一个是熟悉果蝇发育的时序。每个阶段的确切时间可能实验室,培养条件而异,并且飞菌株,并且必须凭经验确定。如上文所述,这是为药理学试验,例如,针对高压开关尤其重要。对于这样的实验中,最好是总是检查精子与实际抑制剂试验前的ProtamineB-eGFP的信号,因为定时甚至可以在一个人口略有不同。
按照上述协议应使实验者解剖,从早期蛹的阶段睾丸免费的附加脂肪人体组织器官的完整。这些睾丸,更是这样,通用电气隔离RM行囊肿是很脆弱的。因此,关键的是要开发的手巧和必要的处理和使用镊子,针和移液管转移的睾丸和囊肿的经验。特别是针对减数分裂和早期减数分裂后的生殖细胞发育的研究将受益于这一点。虽然它是比较容易的解剖晚期精子细胞和成年睾丸长鞭毛囊肿,它是很难获得的早期阶段。解剖从下面这个协议的早期蛹睾丸囊肿这是更有效的。请记住,在一般的飞应变,蛹,只有约 50%是男性。因此,准备至少两次解剖许多蛹所需睾丸的数目。或者,也可以使用立体显微镜来识别男性L3幼虫,如睾丸可以识别嵌入在横向脂肪身体组织的完整幼虫23,34的半透明圆形器官,并收集它们在新鲜培养瓶中的可以用来接预蛹的分期和解剖。它也可能识别雄性预蛹35。
我们发现,无论是分离的生殖系囊肿和在培养的完整蛹睾丸对光敏感,如也已先前18报告。这光敏感度可能还保持在药理试验中使用的一些化学物质。因此,最好是保持在黑暗中的测定法的培养皿中孵育期间。同样地,规划时间推移成像实验开发睾丸,当特别的,孤立的囊肿,记住,过长的曝光时间和/或过高的采样率可能会抑制离体的发展。适当的采样速率应通过试验确定。
细菌和/或真菌感染和过度生长在培养皿上提出了严重的问题。感染培养皿中有太多的细菌不支持体外德韦讲习班中的睾丸和囊肿。因此,所描述的培养基中含有青霉素和链霉素(参见步骤1.1),但在长期的培养后,这些抗生素可能变差和它们的活性可能降低。这可以是一个使用上述的协议时,观察到培养的囊肿的原因的生存时间有限(最多72小时)。然而这个时间帧不能被定期更换的菜肴培养基中进行扩展。我们得出结论,其它因素可能影响生存中培养,如缺乏由生殖道的其它组织生长信号。另一方面,减数分裂后发展是在果蝇快于哺乳动物。在果蝇中 ,精子需要大约90小时,和HP交换机将减数分裂9,12后50至60小时之间。因此,围绕48小时取得与该协议通常的存活时间是非常适合于跟随在SPE关键发育过程rmatogenesis,如减数分裂或HP交换机。虽然细菌或霉菌污染,可避免使用清洁工具和媒体所提出的协议不利用严格的无菌条件下工作,因为苍蝇和飞睾丸已经包含细菌时,在标准条件下提出的。然而,这种文化技术的一些应用程序可能会受益于解剖苍蝇,甚至在无菌条件下饲养(对协议 ,见17,36,37)。
药理试验依赖于使用作为抑制剂或多种酶的活化剂的化学化合物。在这样的试验中常用的化合物,常常有很大的不同在他们的靶特异性。作为一个优点,这提供了针对整个酶类别的电位,例如,用漆树酸抑制P300 / CBP,PCAF,和帽子38的MYST家族成员。这种方法的缺点可能是潜在的脱靶或细胞毒性作用INDUC这类化合物主编。因此,与蛹睾丸或囊肿的测定法中使用的每种化合物应该为它的毒性和不同浓度的特定效果进行测试。此外,在培养条件下,化合物的浓度或活性的和变化中的细胞渗透性的微小变化可能导致的诱导的作用的变异性。因此,有必要监测在每个实验中的治疗的成功。例如,当我们用漆树酸,在150μM,我们观察到轻微变异之间,有时在某些睾丸的染色质缩合型的强度,而组蛋白H4的乙酰化持续减少。
药理学试验与果蝇睾丸中培养已被用于分析精子4,12,14,21的预处理和后减数分裂的机制。因为它是难以进入减数分裂后精子与遗传工具针对玩家essentia升预减数分裂和减数分裂的功能,这种体外方法构成了一种替代方法。此外,原则上,该方法可以适用于脉冲追踪实验遵循治疗生殖细胞的发育时间的推移。然而,我们还没有测试过这种可能性。利用初蛹睾丸是在药理学试验的优点。首先,年轻的蛹睾丸(约24小时,APF)的薄外套可以让化学物质的提高透气性。其次,在研究后减数分裂高压开关,蛹睾丸的解剖与鱼精蛋白表达GFP的飞线24小时薏仁能的高压开关是否受影响或不直接读出。
迄今为止,已经开发了用于体外培养的果蝇的器官和组织,包括睾丸和生殖系囊肿多个协议( 例如,见4,14,17,20,39,40)。栽培介质和使用的一般条件在这里介绍的是成立于1979年的协议17。培养体系,后来适应了体内成像的个性化机制,在后期减数分裂后囊肿成人睾丸4隔离。此前,我们曾报道,这些条件也支持生存和减数分裂和早期减数分裂后的生殖细胞分化的囊肿约48小时12。相对于其他文化系统19在这些文化所观察到的发展时机与固定样本确定(有关详细信息,请参阅第12)的时间基本一致。 H2AvD-RFP和鱼精蛋白-GFP荧光信号可用于可视化的生殖细胞中培养的核形态和染色质的组合物。我们发现,对于明确识别在培养发育阶段,这是有利的,在其它条件,如卷取囊肿。重要的是,所提出的协议不涉及除飞转的RACT或其它生长因子比胎牛血清等。此外,我们在这里表明,该条件与减数分裂离体培养的荧光显微成像相容。影像可以在支持长期发展一个易于使用的媒体合理的解决方案来获得。这是相对于协议实现短期( 约 3小时),观测在Voltalef油41,42。
上述用于种植和药物治疗蛹睾丸和单身男性生殖系囊肿的程序是很容易适应的许多基因,表观遗传学,细胞生物学,或发育问题,可以在果蝇的精子进行研究。这特别包括研究着重于生殖系干细胞。它已经表明,干细胞的发育,可接着培养的成年的实时成像睾丸20,43。然而,在成熟睾丸的蠕动运动sheatħ干扰图像采集。因此,无论是成像是使用零散睾丸43或进行成像实验的数量必须增加以考虑丢失的数据集20。蛹早期睾丸(24小时APF)尚未封闭的肌肉细胞。即使是年龄稍大的睾丸(36-45小时APF)的出现,显示几个蠕动(对比图3和补充视频1)。因此,培养年轻的蛹睾丸作为完整的器官可以作为一种替代方法。
此外,一旦掌握,解剖蛹睾丸的能力,并最终分离生殖系囊肿将允许使用单个孢囊作为一种均匀的来源,虽然小,细胞群的进一步应用。例如,它因此能够进行RT-qPCR的分析特定基因的过程中精子的限定阶段的转录调控,如已经证实<suP> 15。
The authors have nothing to disclose.
The authors wish to thank T. Noguchi for helpful advice on the initial establishment of the culture technique in our laboratory. Research in the lab of R. R.-P. was funded by the DFG within the international collaborative research center TRR81.
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