Hier beschrijven we een efficiënte methode voor isolatie, identificatie en zuivering van muizen thymus epitheelcellen (TEC). Het protocol kan worden gebruikt voor studies van thymus functie voor normale T-cel ontwikkeling, thymus en T cel reconstitutie.
De thymus is een vitaal orgaan voor T-lymfocyten ontwikkeling. Van thymus stromale cellen, thymus epitheelcellen (TEC) zijn vooral belangrijk bij meerdere stadia van de T-cel ontwikkeling: T-cel betrokkenheid, positieve selectie en negatieve selectie. Toch blijft de functie van TEC in de thymus onvolledig begrepen. In het artikel geven we een methode om TEC subsets van verse muis thymus met behulp van een combinatie van mechanische verstoring en enzymatische afbraak te isoleren. De werkwijze maakt thymus stromale cellen en thymocyten efficiënt vrijkomen van cel-cel en cel-extracellulaire matrix verbindingen en een eencellige suspensie. De geïsoleerde cellen kunnen multiparameter flowcytometrie worden toegepast op de identificatie en karakterisering van TECs en dendritische cellen. Omdat TEC een zeldzame celpopulatie in de thymus, ook een effectieve manier te verrijken en zuiveren TEC door afbreken thymocyten, het meest voorkomende celtype in de thymus te beschrijven. Follovleugel verrijking, celsortering tijd worden verminderd zodat het verlies van cellevensvatbaarheid tijdens zuivering van TEC's worden geminimaliseerd. Gezuiverde cellen zijn geschikt voor verschillende stroomafwaartse analyses zoals Real Time-PCR, Western blot en genexpressie. Het protocol onderzoek TEC functie en evenals de ontwikkeling van in vitro T-cel reconstitutie promoten.
Vroeg in T-cel ontwikkeling, zijn beenmerg hematopoietische stamcellen afgeleide multipotente voorlopercellen aangeworven om de cortex van de thymus, ondergaan inzet voor T afstamming en word T cel precursoren 1. In de cortex, T-cel voorloper CD4-en CD8 dubbele ontkenning (DN) thymocytes uitbreiden en differentiëren in onvolwassen CD4 en CD8 dubbel positieve (DP) thymocytes, de vorming van een grote pool van voorouders met zeer variabele T-cel-receptoren 1. Slechts een select MHC-beperkte subset van DP cellen CD4 en CD8 enkele positieve (SP) thymocyten worden, migreren naar de medulla van de thymus en differentiëren tot functioneel bevoegde rijpe T-cellen, een gebeurtenis die wordt aangeduid als positieve selectie 2- 6. In tegenstelling, klonen van auto-reactieve thymocytes ondergaan negatieve selectie en verwijderd via apoptose, omgerekend naar regulatoire T-cellen voor zelf-tolerantie, of omgeleid naar intra-epitheliale lymfocyten voor doeleinden die nog niet duidelijk 3,7-10.
In de thymus, thymus stromale cellen vormen een unieke micro-omgeving verschaffen signalen voor deze verschillende T cel ontwikkeling lot 5,11,12. Thymus stromale cellen zijn samengesteld uit de thymus epitheelcellen (TEC) – waaronder corticale TEC's (cTECs) en medullaire TEC (mTECs), dendritische cellen, macrofagen, fibroblasten, endotheelcellen, neurale-kuif afgeleid pericytes en andere mesenchymale cellen 13-15. Onder deze, TEC's zijn cruciaal in de verschillende stadia van de T-cel ontwikkeling 1,2,16,17. Echter, het ontbreken van een robuuste manier om TEC te isoleren een uitgebreide kennis van hun functies 16 belemmerd. Vooral cTECs, die een driedimensionaal netwerk rond voorlopers in de cortex vormen, zijn essentieel voor positieve selectie 13,18,19 om redenen die nog niet duidelijk. Eerdere studies die aanwijzingen in verband met de heterogeniteit en de rol van de TEC, meestal een beroep op morfologische en histologische gereedschap 13 </sup>. Onlangs werden de unieke rol van de TEC subsets aangepakt door genetische benaderingen in muismodellen 12,20. Een robuuste en reproduceerbare manier om TEC te isoleren is fundamenteel voor onpartijdige karakterisering van TEC subsets, kwantitatieve en kwalitatieve evaluatie van de TEC-functies, en verduidelijking van de mechanismen te realiseren hoe cTECs ondersteunen positieve selectie.
Vanwege de zeldzaamheid van TEC in de thymus en de strakke interacties vormen ze in de intacte orgaan is de isolatie van TEC uitdagend. De hier beschreven protocol gebaseerd op de eerdere ontdekkingen momenteel verkrijgbare middelen, technieken en kennis van structuur en thymus stromale samenstelling. Bijna twee decennia geleden, werden verschillende procedures gemeld aan thymus weefsels 21-27, waarbij verschillende enzymen werden gebruikt tijdens de spijsvertering, waaronder trypsine, collagenase en Dispase disaggregeren. Gray et al. tegenover deze enzymen in hun precedure 28 en meldde een verbeterde method met een multiple-stap spijsvertering enzym cocktails 29 dat werd op grote schaal gebruikt 20,30. Deze werkwijze is een lange voorbereidingstijd en complexe digestie stappen en resulteert in variabele uiteindelijke cel aantallen en percentages TEC zelfs in dezelfde muizen cohort 29,30. Enkele jaren geleden, Liberase onderzoek leerjaar enzym, met daarin sterk gezuiverd Collagenase en neutraal protease begon te worden gebruikt in de thymus weefsel dissociatie 30. We beschrijven hier een Liberase spijsvertering-gebaseerd protocol, met geoptimaliseerde mechanische scheiding procedures, dat een groot aantal levensvatbare TEC levert vanaf muis thymus weefsels. .
Om gedissocieerde stromale cellen te verrijken, hebben eerdere studies ofwel gradiënten dichtheid of magnetische kraal scheiding 21,29 gebruikt. Beide methoden leiden tot ernstige verlies van bepaalde populaties van thymus stromale cellen, met name de populatie van cTECs 29. Cytotoxische eliminatie en panning technieken <sup> 31,32 zijn op grote schaal gebruikt voor uitputting of scheiding van lymfocyten in het veld immunologische 12,31. Na vergelijking van deze technieken hebben we de huidige panning protocol voor verrijking van TEC. De zachte conditie tijdens de verrijking procedure leidt tot minder celdood en onpartijdige en verhoogde TEC herstel.
De geïsoleerde thymus celsuspensie in punt 3 beschreven kunnen direct worden aangebracht op cytometrische analyse stroom voor identificatie en karakterisatie van TEC subsets en dendritische cellen. Hoofdstuk 4 beschrijft een eenvoudige en handige manier om TEC subsets met multiparameter doorstroomcytometer identificeren. Voor experimenten die streven naar gezuiverd cTECs of mTECs, TEC verrijking en celsortering procedures te verkrijgen zijn te vinden in hoofdstuk 5 en 6.
In het protocol, kritische stappen zijn de voorbereiding van de thymus stromale cellen (hoofdstuk 3) en de verrijking van de TEC's (paragraaf 4). Het wordt sterk aanbevolen dat verse enzym wordt bereid elke keer en het weefsel wordt zo snel mogelijk behandeld. Voor samengevoegd thymi, optimale volume enzymoplossing wordt afhankelijk van het aantal thymi. Indien weefsel residuen na de verwerking, het toevoegen van meer enzymoplossing en verlenging incubatietijd kan celopbrengst toenemen. Tijdens de verrijking van TEC…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health Grant R01 AI088209 (Kah). We danken ook de Universiteit van Minnesota flowcytometrie Resource.
Anti-mouse EpCAM | eBioscience | XX-5791-YY* | Clone G8.8 |
Anti-mouse MHC II | eBioscience | XX-5321-YY* | Clone M5/114.15.2 |
Anti-mouse Ly51 | eBioscience | XX-5891-YY* | Clone 6C3 |
UEA-1 | Vector Laboratory | FL-1061 | |
Flow cytometer | BD Biosciences | LSRFortessa | |
Flow cell sorter | BD Biosciences | FACSAria | |
FACS tubes | BD Biosciences | 352052 | |
Flow cytometry analysis software | TreeStar – Flowjo | FlowJo v7/9 | |
*XX varies by fluorochrome and YY varies by vial size. |