Summary

Live avbildning av Mitos i utvecklings Mouse embryonala Cortex

Published: June 04, 2014
doi:

Summary

Neural progenitor mitos är en kritisk parameter för neurogenes. Mycket av vår förståelse av neurala progenitorceller mitos bygger på analyser av fast vävnad. Live avbildning i embryonala hjärnan skivor är en mångsidig teknik för att bedöma mitos med hög tids-och rumsupplösning i en kontrollerad miljö.

Abstract

Även om en kort tid, är mitos en komplex och dynamisk process i flera steg av avgörande betydelse för utvecklingen av organ, inklusive hjärnan. I utvecklings hjärnbarken, kan abnorm mitos av neurala stamceller orsakar defekter i hjärnans storlek och funktion. Därför finns det ett kritiskt behov av verktyg för att förstå mekanismerna bakom neurala progenitorceller mitos. Kortikal utveckling hos gnagare är en enastående modell för att studera denna process. Neural progenitor mitos som brukar granskas i fasta hjärnsektioner. Detta protokoll kommer att i detalj beskriva ett tillvägagångssätt för live-avbildning av mitos i ex vivo embryonala hjärnan skivor. Vi kommer att beskriva de kritiska stegen för detta förfarande, som innefattar: hjärna utvinning, hjärna inbäddning, vibratome sektionering av hjärnan skivor, färgning och odling av skivor, och time-lapse avbildning. Vi kommer då att demonstrera och i detalj beskriva hur man utför efter förvärvsanalys av mitos. Vi inkluderar representativa resultat frOM denna analys med hjälp av det vitala färgämnet Syto11, transgena möss (histon H2B-EGFP och centrin-EGFP), och i livmodern elektroporering (mCherry-α-tubulin). Vi kommer att diskutera hur detta förfarande kan bäst optimeras och hur den kan modifieras för studier av genetiska regleringen av mitos. Live avbildning av mitos i hjärnan skivor är en flexibel metod för att bedöma effekterna av ålder, anatomi, och genetisk störning i en kontrollerad miljö, och för att generera en stor mängd data med hög tids-och rumsupplösning. Därav detta protokoll kommer att komplettera befintliga verktyg för analys av neurala progenitorceller mitos.

Introduction

Det övergripande målet med detta protokoll är att beskriva hur man ska spela live avbildning av neurala progenitorceller mitos i embryonala hjärnan skivor. Med hjälp av live-avbildning av hjärnan skivor i kultur, ger detta protokoll en enkel metod för att analysera olika aspekter av mitos i neurala stamceller i en miljö som i hög grad liknar en in vivo-miljö. Den kan tillämpas på hjärnan hos muterade djur och / eller hjärnor som har manipulerats med i livmodern elektroporering) 1-5. Denna teknik är också idealiskt för att testa effekten av farmakologiska medel på neurala prekursorer "mitos genom att helt enkelt tillsätta ett medel till odlingsmediet. Sammanfattningsvis kommer den här artikeln att göra ett tekniskt utmanande protokoll tillgänglig för dem som studerar neurogenes.

Under neurogenes, distinkta neurala stamceller populationer genomgår noggranna divisioner att generera nervceller som så småningom bidrar till de sex kortikala skikt av den vuxna neocortex 6-8. Tidigt i kortikal utveckling, det neurala föregångare poolen expanderar som neuroepiteliala (NE) celler delar symmetriskt att själv förnya. NE celler omvandlar därefter in i radiella gliaceller (RGC). Inledningsvis RGC dela symmetriskt att producera två nya RGC, men under större delen av neurogenes, är asymmetrisk RGC främsta läge för division. I asymmetrisk uppdelning ger en RGC upphov till en ny RGC och antingen en post-mitotiska neuron, eller en mer specialiserad progenitor (antingen en kort neural prekursor (SNP), en yttre radiell glia (ORG), eller en mellanprodukt progenitor (INP) 2,3,7,9. INPS SNPs och Orgs kan sedan generera nervceller på sub-ventrikulära, ventrikulär och basala regionerna av cortex, respektive. Därför är celldelning av progenitorer en grundläggande process för att generera nervceller i neocortex.

Ett flertal studier pekar på ett samband mellan specifika mitotiska drag av RGC: er och ödet av dotterceller. Haydar et al. Och Takahashi et al.har visat att RGC mitotiska varaktighet och cellcykel ökad längd som neurogenesis fortskrider, ekade en slutsats i uppföljningsstudier 10-13. Ett antal studier har visat att mitotiska spindeln orientering i förhållande till kammaren påverkar aspekter av neurogenes och corticogenesis, däribland typer av nervceller genereras och placering av avkomma i hjärnan, respektive 3,10,14-16. Oavsett om klyvning plan orientering påverkar direkt cell öde är kontroversiell, men slutsatsen kvarstår att detta mitotiska parameter effekter neurogenes. Vidare understryker vikten av mitos är iakttagelsen att många gener som är involverade i mekaniken i mitos är avgörande för neurogenes och för korrekt hjärnans utveckling 17-20.

Mitos är en dynamisk process, men hittills mest studier som beskriver neurala progenitorceller mitos utnyttja analys av sektioner eller avbildning av neurala stamceller fast vävnad via cellodling in vitro. Således, de traditionella metoder för att utvärdera mitos bara ge en ögonblicksbild av denna process och misslyckas med att avslöja hur celler beter sig i en vävnad. Live avbildning av neurala progenitorceller mitos har allt mer blivit ett viktigt verktyg för att förstå neural progenitor funktion. För exempel hänvisas till dessa referenser 4,8,10,21-25. Flera framstående protokoll har publicerats för förberedelse och avbildning av hjärnan skivor 26,27. Men till dags dato har ett omfattande protokoll för avbildning och analys av mitosen inte beskrivits eller visats i videon.

Denna teknik ger flera viktiga fördelar jämfört med fasta analys av hjärnsektioner. Time-lapse analys av hjärnan skivor möjliggör generering av betydligt fler datapunkter som kan analyseras på ett flexibelt sätt. För det första är data som samlats in vid enskilda tidpunkter under loppet av flera minuter eller flera timmar. Man kan analysera enskilda tidpunkter (för att skapa en statisk montage) ellerkan kombinera olika tidpunkter i filmer. För det andra, konfokal avbildning av skivor gör det möjligt att ta fram uppgifter på olika Z-sektioner i hjärnan skivor. Som ett resultat kan de enskilda sektionerna skall analyseras. Alternativt kan högar av enskilda avsnitt kombineras till en maximal intensitet projektion. För det tredje, är analys görs i samband med en vävnad, avslöjar hur celler delar i förhållande till angränsande celler och strukturer. För det fjärde är den idealisk för analys av mutanter som visar vissa tecken på mitotiska defekter. Tillsammans detta protokoll kommer att bidra till att klargöra viktiga steg för att hjälpa utredarna som vill utföra live-avbildning av neurala progenitorceller mitos i sina egna laboratorier.

Protocol

1. Beredning av media (figur 1, steg 1) Slice Kultur Medium 25 ml skiva odlingsmedium är tillräcklig för att bereda 5 glas botten rätter med 2 skivor per brunn. I ett 50 ml koniskt rör, tillsätt 250 | il av en 100x N2 lösning och 500 | il av en 50x B27 lösning utan vitamin A. Lägg DMEM/F12 till en volym av 22,5 ml. Filtrera sterilisera lösningen och därefter lägga till 1,25 ml värmeinaktiverat hästserum och 1,25 ml fetalt bovint serum. Inkubera lösning i e…

Representative Results

Framgången för denna analys och observation av flera mitotiska celler under en live-avbildning session beror till stor del på både integritet och anatomiska nivå för den del där förvärv görs. Såsom diskuteras nedan är det anatomiska nivån på en skiva en viktig faktor. Figur 3A visar rostro-kaudala och mediala-laterala platser där vi har varit mest framgångsrika. För ytterligare diskussion om detta ämne, se Noctor 26. Integriteten av den del kan variera i olika regioner av se…

Discussion

Den stora fördelen med det protokoll som vi har beskrivit är att den tillhandahåller en dynamisk tidsupplösning av mitos av neurala stamceller. Normalt är analyser för att visualisera mitos i den växande hjärnan utförs med hjälp av immunofluorescens sektioner fast vävnad. Men denna metod ger endast en ögonblicksbild av mitos vid en tidpunkt.

Det finns flera steg som är mest kritiska för avbildning mitos i hjärnan skivor: 1) De hjärnan skivor bör sitta kvar i agaros, för att…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner finansiering från NINDS / NIH, R00-NS064197 och NINDS / NIH, R01NS083897 (både till DLS).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
100X N2 Life technologies 17502048 for culture medium
50X B27 without vitamin A Life technologies 12587010 for culture medium
DMEM/F12 Life technologies 11320033 for culture medium
Heat-inactivated horse serum Sigma Aldrich H1138-500ml for culture medium
Heat-inactivated calf serum Sigma Aldrich F4135-500ML for culture medium
FGF R&D Sytems 3139-FB-025 for culture medium
EGF for culture medium
10X HBSS Life technologies 14065-056 for the dissection of the embryos
Hepes Free Acid Sigma Aldrich  H4034 dilute to 1M (pH7.4)
2.5M D-Glucose Sigma Aldrich G8769 for the dissection of the embryos
0.9M NaHC03 Life technologies 25080-094 for the dissection of the embryos
low-melting agarose Fisher  BP165-25 for generating slices
Loctite 404 glue Loctite 404 46551 keep at 4˚C
syto11 Life technologies S7573 Make 5µl aliquots
3 mg/ml collagen type I  Life technologies A1048301 for culturing slices
glass bottom dish MatTek P35G-1.5-14-C for culturing slices
petri dishes for dissection of the embryos
digital thermometer to measure the temperature of the agarose
spatula to transfer brains
paintbrush alternative to transfer brains
vibratome Leica VT1000s for generating slices
dissecting microscope dissecting out embryos
imaging microscope A confocal microscope is required, it needs to be equipped with an incubation chamber

Referências

  1. Gal, J. S., et al. Molecular and morphological heterogeneity of neural precursors in the mouse neocortical proliferative zones. J Neurosci. 26, 1045-1056 (2006).
  2. Stancik, E. K., Navarro-Quiroga, I., Sellke, R., Haydar, T. F. Heterogeneity in ventricular zone neural precursors contributes to neuronal fate diversity in the postnatal neocortex. Journal of Neuroscience. 30, 7028-7036 (2010).
  3. Konno, D., et al. Neuroepithelial progenitors undergo LGN-dependent planar divisions to maintain self-renewability during mammalian neurogenesis. Nat Cell Biol. 10, 93-101 (2008).
  4. LoTurco, J. J., Manent, J. -. B., Sidiqi, F. New and improved tools for in utero electroporation studies of developing cerebral cortex. Cereb Cortex. 19 Suppl 1, (2009).
  5. Shimogori, T., Ogawa, M. Gene application with in utero electroporation in mouse embryonic brain. Dev Growth Differ. 50, 499-506 (2008).
  6. Lui, J. H., Hansen, D. V., Kriegstein, A. R. Development and evolution of the human neocortex. Cell. 146, 18-36 (2011).
  7. Englund, C., et al. and Tbr1 are expressed sequentially by radial glia, intermediate progenitor cells, and postmitotic neurons in developing neocortex. Journal of Neuroscience. 25, 247-251 (2005).
  8. Noctor, S. C., Flint, A. C., Weissman, T. A., Dammerman, R. S., Kriegstein, A. R. Neurons derived from radial glial cells establish radial units in neocortex. Nature. 409, 714-720 (2001).
  9. Wang, X., Tsai, J. -. W., Lamonica, B., Kriegstein, A. R. A new subtype of progenitor cell in the mouse embryonic neocortex. Nat Neurosci. 14, 555-561 (2011).
  10. Haydar, T. F., Ang, E., Rakic, P. Mitotic spindle rotation and mode of cell division in the developing telencephalon. Proc Natl Acad Sci USA. 100, 2890-2895 (2003).
  11. Takahashi, T., Nowakowski, R. S., Caviness, V. S. The cell cycle of the pseudostratified ventricular epithelium of the embryonic murine cerebral wall. J Neurosci. 15, 6046-6057 (1995).
  12. Pilaz, L. -. J., et al. Forced G1-phase reduction alters mode of division, neuron number, and laminar phenotype in the cerebral cortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106, 21924-21929 (2009).
  13. Calegari, F., Huttner, W. B. An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis. J Cell Sci. 116, 4947-4955 (2003).
  14. LaMonica, B. E., Lui, J. H., Hansen, D. V., Kriegstein, A. R. Mitotic spindle orientation predicts outer radial glial cell generation in human neocortex. Nature Communications. 4, 1665 (2013).
  15. Postiglione, M. P., et al. Mouse Inscuteable Induces Apical-Basal Spindle Orientation to Facilitate Intermediate Progenitor Generation in the Developing Neocortex. Neuron. 72, 269-284 (2011).
  16. Silver, D. L., et al. The exon junction complex component Magoh controls brain size by regulating neural stem cell division. Nat Neurosci. 13, 551-558 (2010).
  17. Pulvers, J. N., et al. Mutations in mouse Aspm (abnormal spindle-like microcephaly associated) cause not only microcephaly but also major defects in the germline. Proc Natl Acad Sci USA. , 107-16595 (2010).
  18. Feng, Y., Walsh, C. A. Mitotic spindle regulation by Nde1 controls cerebral cortical size. Neuron. 44, 279-293 (2004).
  19. Megraw, T. L., Sharkey, J. T., Nowakowski, R. S. Cdk5rap2 exposes the centrosomal root of microcephaly syndromes. Trends Cell Biol. 21, 1-11 (2011).
  20. Bond, J., et al. A centrosomal mechanism involving CDK5RAP2 and CENPJ controls brain size. Nat Genet. 37, 353-355 (2005).
  21. Shu, T., et al. Doublecortin-like kinase controls neurogenesis by regulating mitotic spindles and M phase progression. Neuron. 49, 25-39 (2006).
  22. Nelson, B. R., Hodge, R. D., Bedogni, F., Hevner, R. F. Dynamic Interactions between Intermediate Neurogenic Progenitors and Radial Glia in Embryonic Mouse Neocortex: Potential Role in Dll1-Notch Signaling. Journal of Neuroscience. 33, 9122-9139 (2013).
  23. Hu, D. J. -. K., et al. Dynein recruitment to nuclear pores activates apical nuclear migration and mitotic entry in brain progenitor cells. Cell. 154, 1300-1313 (2013).
  24. Noctor, S. C., Martínez-Cerdeño, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases. Nature Publishing Group. 7, 136-144 (2004).
  25. Tyler, W. A., Haydar, T. F. Multiplex Genetic Fate Mapping Reveals a Novel Route of Neocortical Neurogenesis, Which Is Altered in the Ts65Dn Mouse Model of Down Syndrome. Journal of Neuroscience. 33, 5106-5119 (2013).
  26. Noctor, S. C. Time-Lapse Imaging of Fluorescently Labeled Live Cells in the Embryonic Mammalian Forebrain. CSH Protoc. , (2011).
  27. Elias, L., Kriegstein, A. R. Organotypic slice culture of E18 rat brains. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2007).
  28. Shitamukai, A., Konno, D., Matsuzaki, F. Oblique radial glial divisions in the developing mouse neocortex induce self-renewing progenitors outside the germinal zone that resemble primate outer subventricular zone progenitors. Journal of Neuroscience. 31, 3683-3695 (2011).
  29. Hadjantonakis, A. -. K., Papaioannou, V. E. Dynamic in vivo imaging and cell tracking using a histone fluorescent protein fusion in mice. BMC Biotechnol. 4, 33 (2004).
  30. Higginbotham, H., Bielas, S., Tanaka, T., Gleeson, J. G. Transgenic mouse line with green-fluorescent protein-labeled Centrin 2 allows visualization of the centrosome in living cells. Transgenic Res. 13, 155-164 (2004).
  31. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. R. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2007).
  32. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev Biol. 240, 237-246 (2001).
  33. Yang, Y. -. T., Wang, C. -. L., Van Aelst, L. DOCK7 interacts with TACC3 to regulate interkinetic nuclear migration and cortical neurogenesis. Nat Neurosci. 15, (2012).
  34. Siegenthaler, J. A., et al. Retinoic Acid from the meninges regulates cortical neuron generation. Cell. 139, 597-609 (2009).
  35. Schenk, J., Wilsch-Bräuninger, M., Calegari, F., Huttner, W. B. Myosin II is required for interkinetic nuclear migration of neural progenitors. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106, 16487-16492 (2009).
check_url/pt/51298?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Pilaz, L., Silver, D. L. Live Imaging of Mitosis in the Developing Mouse Embryonic Cortex. J. Vis. Exp. (88), e51298, doi:10.3791/51298 (2014).

View Video