Summary

Differensial Merking av Cell-overflaten og internalisert Proteiner etter Antistoff Fôring av Levende Cultured Neuroner

Published: February 12, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver en fremgangsmåte for å merke proteiner på overflaten av levende neuroner ved å bruke et spesifikt polyklonalt antistoff til ekstracellulære epitoper. Protein bundet av antistoff på celleoverflaten og senere internaliseres via endocytose kan skilles fra protein som gjenstår, eller trafikk til, overflaten i løpet av inkuberingen.

Abstract

For å demonstrere den celleoverflaten lokalisering av et antatt transmembranreseptoren i dyrkede nevroner, merket vi proteinet på overflaten av levende neuroner med en bestemt primær antistoff reist mot en ekstracellulær del av proteinet. Gitt at reseptorer er trafikkert til og fra overflaten, hvis celler er permeabilized etter fiksering og deretter både celle-overflate og interne protein vil bli detektert av den samme merket sekundært antistoff. Her vi tilpasset en metode som brukes for å studere protein handel ("antistoff feeding") for å differensielt etikett protein som var blitt internalisert etter endocytose ved antistoffet inkubasjonstrinn og protein som enten forble på celleoverflaten eller er trafikkert til overflaten i løpet av denne perioden . Evnen til å skille mellom disse to dammer av protein ble gjort mulig ved inkorporering av en over natten blokkering trinn med høyt konsentrert umerket sekundært antistoff etter en innledende inkuberingn av unpermeabilized nevroner med en fluorescently-merket sekundært antistoff. Etter blokkerende trinn, permeabilization av neuronene tillatt påvisning av internalisert basseng med et fluorescerende sekundært antistoff som er merket med en annen fluorofor. Ved hjelp av denne teknikken vi var i stand til å innhente viktig informasjon om den subcellulære plasseringen av denne antatte reseptor, avslører at det var faktisk smugles til celleoverflaten i nevroner. Denne teknikken er bredt anvendelig på en rekke celletyper og celle-overflateprotein, og gir et egnet antistoff til en ekstracellulær epitope er tilgjengelig.

Introduction

I etablere funksjonen av nylig identifiserte proteiner, kan etterforskningen av den subcellulære lokalisering og trafficking av proteinet i spørsmålet gi viktige ledetråder om den sannsynlige rolle / s av protein 1,2. Bioinformatiske analyse av transcriptome av utviklings neocortex 3 gitt oss en liste av gener som viser endret uttrykk under mus hjernen corticogenesis. Vi deretter vedtatt et gen knockout tilnærming for å fastslå at proteinet kodet av en av disse genene, sez6, har en nøkkelrolle i nevroner utvikling. Vi observerte at Seizure-relatert gen 6, eller Sez6, protein ligger i utviklings dendritter og er også til stede i dendrittutløperne, spesialiserte strukturer på dendritter som mottar og integrerer eksitatoriske signaler. Videre, når dette proteinet mangler, dendritter og eksitatoriske synapser mislykkes i å danne fullstendig 4.. Den sannsynlige dominerende isoform av proteinet har funksjonene til et transmembrane reseptoren selv, når den subcellulære fordeling av immunolabeled protein ble undersøkt ved konfokal mikroskopi eller ved immunoelectron mikros de fleste, om ikke alle, av signalet først forbundet med små blærer i somatodendritic rommet med liten, eller ingen, protein merket på plasmamembranen på celleoverflaten.

For definitivt å vise at denne antatte reseptor med en forutsagt stort ekstracellulært domene er trafikkert til plasmamembranen, vi innført en levende celle tilnærming ved hjelp av antiserum som vi hadde generert til en ekstracellulær del av proteinet til å merke proteiner på celleoverflaten. Ved å kombinere denne "antistoff fôring" tilnærming med to anvendelser av forskjellig-merket sekundært antistoff adskilt av en omfattende blokkering trinn og en permeabilization skritt, var vi i stand til å identifisere to ulike bassenger av protein preget av binding til fluorescently-merket sekundære antistoffer peiling forskjellige fluorescerendeent koder. Således, var vi i stand til å skille protein som var blitt internalisert etter endocytose ved antistoffet inkubasjonstrinn fra protein som enten forble på celleoverflaten eller er trafikkert til overflaten i løpet av denne perioden. Ved hjelp av denne fremgangsmåte ble det etablert at proteinet av interesse er trafikkert til og fra celleoverflaten i nerveceller. Derfor denne relativt rask og enkel teknikk vist seg mer informativ enn tradisjonelle immunocytokjemi metoder eller pre-embedding immunogold elektronmikroskopi, til tross for at vi brukte samme kanin polyklonale antiserum for alle disse teknikkene. Denne teknikk er anvendbar generelt for enhver transmembran protein ga en god antistoff gjenkjenne ekstracellulære domene epitoper er tilgjengelig. Teknikken har blitt brukt tidligere for å studere reseptor smugling av glutamat reseptor GluR1 subenhet fem.

Protocol

En. Dissociated Hippocampus Neuron Kultur Forbered Dekk (borsilikatglass): Vask i 100% etanol. Lufttørk under UV bestråling. Coat med poly-D-lysin (0,5 mg / ml i 0,15 M boratbuffer, over natten ved 4 ° C). På den neste dag (dag av kulturen) vaskes 3 ganger i PBS og deretter belegge med laminin (2,5 mikrogram / ml, naturlige mus laminin) + 5% volum / volum varmeinaktivert føtalt kalveserum (FCS) fortynnet i PBS i 2 timer ved 37 ° C. Dissekere emb…

Representative Results

Den tofargede fluorescent farging teknikk som presenteres her er nyttig for merking av ekstracellulære domener av transmembrane proteiner i levende celler (vist skjematisk i figur 1). I løpet av inkubasjonsperioden, immunoglobulinene binde tilgjengelige epitoper og en andel av befolkningen av proteinmolekyler, sammen med bundet antistoff, blir endocytosed. I tillegg kan det nylig syntetiserte proteiner når celleoverflaten via forover-handel og resirkulerte proteinmolekyler kan returneres til plasmame…

Discussion

Teknikken som beskrives her er komplementær til den av celle-overflate biotinylering (gjennomgått av Arancibia-Carcamo et al.) 12 og det er den foretrukne metode for å bevare informasjon om de subcellulære lokalisering av internalisert protein, forutsatt at et egnet primært antistoff til en ekstracellulære epitop er tilgjengelig. I tillegg kan kvantifisering av protein handel / internalisering over tid utføres (ved å feste dekkglass på forskjellige tidspunkter i løpet av levende celle inkub…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Teele Palumaa for å få hjelp med tallene. Finansiert av Project Grant 1008046 fra National Health and Medical Research Council, Australia.

Materials

PBS with Ca and Mg Invitrogen 14040182
Neurobasal medium Invitrogen 21103-049
B27 supplement Invitrogen 17504-044
L-glutamine Invitrogen 25030-081
Papain Dissociation System Worthington Biochemical Corporation PDS
Bovine Serum Albumin  Sigma Aldrich Australia A9418
Hank's balanced salt solution without calcium, magnesium, phenol red Invitrogen (Gibco) 14175-079
Poly-D-Lysine Sigma Aldrich Australia P0899
Natural mouse laminin Invitrogen 23017-015 Thaw on ice prior to making aliquots
Fetal bovine serum HyClone Thermo Fisher
fluorodeoxyuridine Sigma Aldrich Australia F0503
uridine Sigma Aldrich Australia U3003
18 mm round glass coverslips Menzel Gläser CB00180RA1
VECTASHIELD aqueous mounting medium Vector Laboratories H1400
Donkey anti-rabbit Dylight 649  Jackson ImmunoResearch Laboratories 711-495-152
AffiniPure Fab fragment Goat anti-Rabbit 1gG (H+L)  Jackson ImmunoResearch Laboratories 111-007-003
Paraformaldehyde Sigma Aldrich Australia P6148 TOXIC – handle in fume hood
Triton-X-100 Sigma Aldrich Australia T8787
Alexafluor 488-conjugated donkey anti-rabbit 2° antibody Invitrogen – Molecular Probes A21206

Referências

  1. Lewis, T. L., Mao, T., Arnold, D. B. A role for myosin VI in the localization of axonal proteins. PLoS Biol. 9, (2010).
  2. von Zastrow, M., Williams, J. T. Modulating neuromodulation by receptor membrane traffic in the endocytic pathway. Neuron. 76, 22-32 (2012).
  3. Gunnersen, J. M., Augustine, C., Spirkoska, V., Kim, M., Brown, M., Tan, S. -. S. Global analysis of gene expression patterns in developing mouse neocortex using serial analysis of gene expression. Mol. Cell. Neurosci. 19, 560-573 (2002).
  4. Gunnersen, J. M., Kim, M. H., et al. Sez-6 proteins affect dendritic arborization patterns and excitability of cortical pyramidal neurons. Neuron. 56, 621-639 (2007).
  5. Kennedy, M. J., Davison, I. G., Robinson, C. G., Ehlers, M. D. Syntaxin-4 Defines a Domain for Activity-Dependent Exocytosis in Dendritic Spines. Cell. 141, 524-535 (2010).
  6. Cullen, D. K., Gilroy, M. E., Irons, H. R., Laplaca, M. C. Synapse-to-neuron ratio is inversely related to neuronal density in mature neuronal cultures. Brain Res. 1359, 44-55 (2010).
  7. Grabrucker, A., Vaida, B., Bockmann, J., Boeckers, T. M. Synaptogenesis of hippocampal neurons in primary cell culture. Cell Tissue Res. , 338-341 (2009).
  8. Vaillant, A. R., Zanassi, P., Walsh, G. S., Aumont, A., Alonso, A., Miller, F. D. Signaling mechanisms underlying reversible, activity-dependent dendrite formation. Neuron. 34, 985-998 (2002).
  9. Park, M., Penick, E. C., Edwards, J. G., Kauer, J. A., Ehlers, M. D. Recycling endosomes supply AMPA receptors for LTP. Science. 305, 1972-1975 (2004).
  10. Kennedy, M. J. &. a. m. p. ;., Ehlers, M. D. Organelles and trafficking machinery for postsynaptic plasticity. Annu. Rev. Neurosci. 29, 325-362 (2006).
  11. Lasiecka, Z. M., Yap, C. C., Caplan, S., Winckler, B. Neuronal early endosomes require EHD1 for L1/NgCAM trafficking. J. Neurosci. 30, 16485-16497 (2010).
  12. Arancibia-Cárcamo, I. L., Fairfax, B. P., Moss, S. J., Kittler, J. T., Kittler, J. T., Moss, S. J. Studying the localization, surface stability and endocytosis of neurotransmitter receptors by antibody labeling and biotinylation approaches. The Dynamic Synapse: Molecular Methods in Ionotropic Receptor Biology. , (2006).
  13. Petrini, E. M., Lu, J., Cognet, L., Lounis, B., Ehlers, M. D., Choquet, D. Endocytic trafficking and recycling maintain a pool of mobile surface AMPA receptors required for synaptic potentiation). Neuron. 63, 92-105 (2009).
  14. Reider, A., Wendland, B. Endocytic adaptors – social networking at the plasma membrane. J. Cell Sci. 124, 1613-1622 (2011).

Play Video

Citar este artigo
Carrodus, N. L., Teng, K. S., Munro, K. M., Kennedy, M. J., Gunnersen, J. M. Differential Labeling of Cell-surface and Internalized Proteins after Antibody Feeding of Live Cultured Neurons. J. Vis. Exp. (84), e51139, doi:10.3791/51139 (2014).

View Video