Implanteren georganiseerde arrays van microwires voor gebruik in een enkele eenheid elektrofysiologische opnames presenteert een aantal technische uitdagingen. Methoden voor het uitvoeren van deze techniek en de apparatuur die nodig zijn beschreven. Ook is het nuttig gebruik van de georganiseerde Microwire arrays op te nemen van verschillende neurale subregio's met een hoge ruimtelijke selectiviteit besproken.
In vivo elektrofysiologische opnames in de wakkere, gedraagt dier zorgen voor een krachtige methode voor het begrijpen van neurale signalering bij de single-cell niveau. De techniek maakt het mogelijk om onderzoekers tijdelijk en regionaal onderzoeken specifieke afvuren patronen om opgenomen actiepotentialen correleren met de lopende gedrag. Bovendien kan een enkele unit registraties worden gecombineerd met een overvloed aan andere technieken om uitgebreide uitleg van neurale functies te bewerkstelligen. In dit artikel beschrijven we de anesthesie en de voorbereiding voor Microwire implantatie. Vervolgens hebben we een opsomming van de benodigde apparatuur en chirurgische stappen om nauwkeurig plaats een Microwire array naar een doel structuur. Tot slot beschrijven we kort de voor de registratie van elke afzonderlijke elektrode in de array apparatuur. De vaste Microwire arrays beschreven zijn zeer geschikt voor chronische implantatie en zorgen voor longitudinale opnamen van neurale gegevens in vrijwel elke gedrags preparatiop. We bespreken tracing elektrode tracks naar Microwire posities evenals manieren om Microwire implantatie combineren met immunohistochemische technieken om de anatomische specificiteit van verkregen resultaten te verhogen driehoeksmeting.
Elektrofysiologische registraties kunnen wetenschappers de elektrische eigenschappen van biologische cellen te onderzoeken. In het centrale zenuwstelsel, waarbij elektrische impulsen dienen als signaleringsmechanisme, deze opnamen van bijzonder belang voor het begrijpen van neurale functie 1-2. Tijdens de single-unit registraties in gedragen dieren, een micro-elektrode die in de hersenen is ingebracht is in staat om veranderingen op te nemen in de opwekking van een neuron van actiepotentialen in de tijd.
Terwijl veel technieken laten ons toe om de hersenactiviteit te registreren, single-unit elektrofysiologie is een van de meest precieze methoden doordat resolutie bij de enkel neuron niveau. Wanneer een hoge mate van ruimtelijke specificiteit gewenst is, kan microwires worden gebruikt om afzonderlijke sub-kernen of ensemble van cellen in de brain3 richten. Single-unit opnames ook profiteren van hoge tijdsresolutie wegens opnames zijn nauwkeurig op de microseconde niveau. En, in vivo eenkielzog opnames laten intact circuit interacties, met het natuurlijke milieu van afferente en efferente projecties, systemische chemische en hormonale invloeden, en fysiologische parameters. Neurale signalen worden afgeleid van zintuiglijke input, motorische gedrag, cognitieve verwerking, neurochemistry / farmacologie, of een combinatie. Dienovereenkomstig, de scheiding van sensorische, motorische, cognitieve, en chemische invloeden vereist doordachte experimenten met effectieve risico's en controles die kunnen toestaan dat voor de beoordeling van elk van de bovengenoemde invloeden. Al met al, opnames in gedragen dieren mogelijk maken onderzoekers om de integratie van meerdere bronnen van informatie te observeren binnen een functionerende schakeling en een meer omvattend model van circuit functie afleiden.
Enkele eenheid opnamen ook kampen met een aantal nadelen, waarvan een experimentator moet zich bewust. Eerst en vooral, kunnen opnames moeilijk uit te voeren zijn. Inderdaad, eigenschappen van the headstage versterkers en de geïmplanteerde microwires waarmee ruimtelijke en temporele specificiteit in deze opnames maakt opnamen gevoelig voor de invloed van externe elektrische signalen (bijvoorbeeld elektrische "ruis"). Dienovereenkomstig, het vermogen om problemen op te lossen in een elektrofysiologische systeem vereist een goed ontwikkelde technische kennis van elektrofysiologische principes en apparaten. Het is ook belangrijk op te merken dat, onder bepaalde omstandigheden, opgenomen elektrische signalen in extracellulaire opnames kan de optelling van verschillende neurale signalen vertegenwoordigen. Bovendien kan gegeneraliseerd enkele eenheid activiteit populatie activiteit in een doelwit gebied vaak beperkt door de mate van cellulaire heterogeniteit binnen het doelgebied (maar zie Cardin 4). Bijvoorbeeld, zou elektroden de nadruk echter op het opnemen van hoge amplitude output vormen in plaats van andere cellen. De interpreteerbaarheid van single-unit registraties wordt verhoogddoor het combineren opnames met andere technieken, waaronder, maar niet beperkt tot, elektrische (orthodromic of antidromic), chemische (bijv. iontoforetische of ontwerper receptor) of optogenetic stimulatie 4, tijdelijke neurale inactivations, sensorimotorische onderzoeken 5, ontkoppelingsprocedure of immunohistochemie 3.
In het protocol dat volgt zullen wij de materialen en stappen die nodig sommen een georganiseerde Microwire array in ratten geïmplanteerd (hoewel het protocol kan worden aangepast voor gebruik in andere soorten). De procedure en de stijl van vaste arrays gebruikt in ons laboratorium hebben betrouwbare Longitudinale opnames bewezen en kan opnames van hetzelfde neuron houden voor meer dan een maand tijd 6-8. Dit maakt deze procedure ideaal voor de behandeling van driefase reacties op experimentele stimuli, plastische veranderingen in de neurale reacties, of mechanismen van leren en motivatie.
Extracellulaire registraties vormen een krachtige experimentele techniek die in vrijwel elke experimentele opstelling in de neurowetenschappen kunnen worden opgenomen. Draden die zijn geïmplanteerd in georganiseerde arrays kunnen worden gevolgd als hun assen passeren de hersenen en in hun doelgebied (figuur 5A). Wanneer een klein, post-experimentele laesie is gecreëerd op de niet-geïsoleerde Microwire tip om een kleine ijzeren storting te maken van de roestvrij staaldraad, kan men nauwkeurig de…
The authors have nothing to disclose.
Deze studie werd ondersteund door het National Institute on Drug Abuse kent DA 006886 (MOW) en DA 032270 (DJB).
Table 1. List of Surgical Materials | |||
Gauze | Fisher (MooreBrand) | 19-898-144 | |
Cotton Swabs | Fisher (Puritan) | S304659 | |
Nembutal (Pentobarbital) | Sigma Aldrich | P3761 | |
Atropine Methyl Nitrate | Sigma Aldrich | A0382 | |
Baytril (Enrofloxacin) | Butler Shein (Bayer) | 1040007 | |
Ketamine Hydrochloride | Butler Shein | SKU# 023061 | |
Betadine (Povidone-Iodine) | Fisher (Perdue) | 19-066452 | |
Stereotax | Kopf | Model 900 | |
Cauterizing Tool | Stoelting | 59017 | |
Dissecting Microscope | Nikon | SMZ445 | |
Dental Drill | Buffalo | 37800 | |
Bacteriostatic Saline | Bulter Schein | 8973 | |
Jewlers Skrews | Stoelting | 51457 | |
Microwire Array | Microprobes | Custom (Flexible) | |
Ground Wire | Omnetics | Custom Plug | |
Dental Acrylic | Fisher (BAS) | 50-854-402 | |
Absorbable Sutures | Fisher (Ethicon) | NC0258473 | |
Puralube (Opthalamic Ointment/Lubricant) | Fisher (Henry Schein) | 008897 |
Table 2. List of Surgical Instruments | |||
2x Microforceps | George Tiemann & Co. | #160-57 | Multi-use (e.g. clearing debris in skull window) |
2x Forceps | George Tiemann & Co. | #160-93 | Multi-use (e.g. tying sutures) |
6x Hemostats | George Tiemann & Co. | #105-1125 | Clamp and open incision |
1x Small scissors | George Tiemann & Co. | #105-411 | Cut sutures after tying |
1x Tissue forceps | George Tiemann & Co. | #105-222 | Holding tissue while suturing |
1x Needle holder | George Tiemann & Co. | #105-1259 | Holding suture needle |
1x Scalpel holder (with #11 blade) | George Tiemann & Co. | #105-80 (w/ #105-71 blade) | Making skull incision |
1x # 22 Scalpel blade | George Tiemann & Co. | # 160-381 | Shaving scalp |
1x Surgical Spatula | George Tiemann & Co. | #160-718 | Scraping skull to clear tissue on skull |
Machine/Jewelers Screws | Various | N/A | 0/80 x 1/8” |
Table 3. List of Equipment for Recording Electrophysiological Signals | |||
Microwire Array & Connector | Micro Probe, Inc. (Gaithersburg, MD) | N/A | Cranially implanted in target recording region. Arrays are customized based on desired wire spacing, length, etc. |
(Part No. Based on array characteristics) | |||
Unity-Gain Harness/Headstage | M.B. Turnkey Designs (Hillsborough, NJ) | Proj 1200 | Initial amplification of neural signal; allows for propagation of small neural signals. |
Commutator (& Optional Fluid Swivel) | Plastics One, Inc. (Roanoke, VA) | SL18C | Allows animals to freely rotate while propagating electrical signal to preamp |
Pre-Amplifier | M.B. Turnkey Designs (Hillsborough, NJ) | Proj 1198 | Differentially amplifies neural signals against a reference electrode. |
Filter & Amplifier | M.B. Turnkey Designs (Hillsborough, NJ) | Proj 1199 | Band-pass filters and further amplifies the differentially amplified signal. |
Acquisition Computer | EnGen (Phoenix, AZ) | N/A (Custom Build) | Runs software and hardware for behavioral and neural data acquisition. |
A/D Card | Data Translation (Marlboro, MA) | DT-3010 | Digitizes neural signals for computer sampling. |
Digital I/O Card | Measurement Computing (Norton, MA) | PCI CTR-05 | Acquires behavioral inputs and outputs |