A co-cultura de fatia cerebral organotípicas com células de carcinoma permite visualizar as alterações morfológicas por fluorescência, bem como o campo brilhante (vídeo) microscopia durante o processo de invasão de células de carcinoma de tecido cerebral. Este modelo de sistema também permite abordagens taxas de célula e de reabastecimento e oferece uma ampla variedade de manipulações e análises.
Os pacientes com metástase cerebral de carcinomas têm um prognóstico pobre. No entanto, o processo no local metastático tem sido pouco investigada, em particular, o papel das células estromais (residente). Estudos em carcinomas primários demonstrar a influência do microambiente em metástase, mesmo no prognóstico 1,2. Especialmente os macrófagos associados ao tumor (TAM) migração apoio, invasão e proliferação 3. Curiosamente, os principais locais alvo de metástase possuem macrófagos de tecidos específicos, tais como células de Kupffer do fígado ou da microglia no sistema nervoso central. Além disso, os locais metastáticos também possuem outras células de tecidos específicos, tais como os astrócitos. Recentemente, os astrócitos foram demonstradas para promover a proliferação e persistência de células de câncer 4,5. Portanto, as funções destes tipos de células específicas de tecidos parece ser muito importante no processo de metástase cerebral 6,7.
Apesar dessas observações,no entanto, até agora não há adequado modelo in vivo / in vitro disponíveis para visualizar diretamente as reações gliais durante a formação de metástase cerebral, em particular por meio de microscopia de campo claro. Recentes in vivo de imagens ao vivo de células de carcinoma demonstrou seu comportamento colonização cerebral 8. No entanto, este método é muito trabalhoso, dispendioso e tecnicamente complexa. Além disso, estes tipos de experimentos com animais são restritos a pequenas séries e vêm com um esforço substancial para os animais (pela implantação da placa de vidro, a injeção de células tumorais, a anestesia repetitiva e fixação de longa duração). Além disso, a imagem in vivo é, portanto, muito limitado para a visualização de células de carcinoma, ao passo que as interacções com células residentes ainda não foram ilustradas. Finalmente, as investigações de células de carcinoma humanos dentro animais imunocompetentes são impossíveis 8.
Por estas razões, foi estabelecido um sistema de co-cultura consipicada de uma fatia de cérebro do rato organotípica e células epiteliais embutido em matrigel (esfera celular 3D). As esferas de carcinoma de células em 3D foram colocados ao lado da borda fatia do cérebro, a fim de investigar a invasão do tecido cerebral vizinho. Isso nos permite visualizar as alterações morfológicas e interações entre as células da glia e células de carcinoma de fluorescência e até mesmo por microscopia de campo claro. Após a experiência de co-cultura, o tecido cerebral, ou os esferóides de células em 3D podem ser recolhidos e utilizados para outras análises moleculares (por exemplo, de qRT-PCR, IHC, ou immunoblot), bem como para investigações através de microscopia confocal. Este método pode ser aplicado para monitorizar os eventos dentro de um tecido cerebral vivo para dias sem efeitos deletérios para as fatias do cérebro. O modelo também permite uma supressão selectiva e substituição das células residentes por células de um tecido dador para determinar o impacto distinto de um dado genótipo. Finalmente, o modelo de co-cultura é uma alternativa viávelpara in vivo se aproxima ao testar manipulações farmacológicas alvejados.
Investigações histológicas anteriores de metástase cerebral demonstrou mudanças rápidas e drásticas das células gliais residentes, especialmente de astrócitos e microglia 13. Para estudar essas mudanças e interações com as células de carcinoma, este sistema de co-cultura romance é bem adequado. Outros campos de pesquisa já tem experiência de longa data com organotípicas fatias do cérebro do hipocampo. Uma vantagem é que as culturas organotípicas do hipocampo do cérebro de fatia são viáveis e eficazmente conservados durante dias ou semanas, tornando-o adequado para as experiências de longo prazo. Desde a introdução de Stoppini do sistema de fatia de hipocampo organotípicas em 1991, tem sido amplamente utilizada, por exemplo, na pesquisa de doenças degenerativas. Assim, este sistema de co-cultura de inovar representa uma modificação de um método bem estabelecido com uma variedade de aplicações em biologia tumoral 9,11. A modificação nos ofereceu um modelo reproduzível para avaliar o grau de invasão tumoral afterwards e culturas cultivadas pelo método de interface são idealmente adequado para experiências que requerem uma estrutura tridimensional. Várias técnicas têm sido utilizadas para co-cultura de fatias de hipocampo organotípicas com outras células. Estes incluem um sistema indirecto entre as células de macrófagos e a fatia de cérebro organotípica 14, e um co-cultura directa de duas fatias diferentes da região do hipocampo 15. Agregados glioma também foram co-cultivadas com fatias de cérebro 16. Estes modelos podem ser utilizados para analisar eventos celulares e moleculares nas fatias do cérebro, mas não permitem o contato direto, fisiológica entre as células tumorais, microglia e parênquima cerebral. Além disso, este método permite a observação da microglia, sem contaminação de osso derivadas de medula periféricas monócitos / macrófagos. A utilização do modelo de ratinho transgénico CCR2 e CX3CR1 é uma melhoria fundamental devido ao facto de que é difícil de distinguir da microglia residentes invadam monócitoscom base em suas propriedades semelhantes 17,18,19. Embora a injecção intracerebral de células de carcinoma permite investigar a progressão do tumor, não se pode dizer tanto quanto a saber se as células semelhantes a macrófagos rodeadas originam a população residente microglia do cérebro ou da medula óssea derivadas de monócitos / macrófagos periféricos 17. A equipe de Kettenmann introduziu um modelo fatia do cérebro organotípica que envolveu a inoculação de células de glioma em fatias de cérebro com um micromanipulador 20. No entanto, gliomas malignos primários diferem em muitos aspectos de carcinomas metastáticos. Primeiro, gliomas malignos são de origem mesenquimal, não metástase fora do sistema nervoso, e migrar / invadir células individuais como sem fronteira entre tumor e tecido cerebral. Por outro lado, o crescimento infiltrativa é uma característica típica patológico, e tais carcinomas geralmente migram / invadir como coortes. Em segundo lugar, os carcinomas frequentemente tentam reconstruir estruturas epiteliais no cérebro, ao passo que as células gliaistente separar o tumor a partir do tecido do cérebro por um (pseudo) da cápsula. Considerando-se características biológicas e morfológicas, glioma maligno e metástase dos carcinomas não são realmente comparáveis. Por estas razões, é modificado e desenvolvemos um sistema de co-cultura em que não co-cultura de injectar mas um tampão de células de carcinoma adjacente à fatia cerebral. Além disso, observou-se acumulação de microglia e astrócitos, na fronteira do bujão do tumor, o que significa que a microglia inserir a ficha do tumor e pode ser facilmente detectada por microscopia de campo brilhante e confirmados posteriormente por meio de microscopia confocal. As células cancerosas invadir na fatia do cérebro, que é comparável à do real em situação vivo e uma observação feita por Baumert e seus colegas, que encontraram uma zona de infiltração em 63% dos casos de autópsia com metástases cerebrais 21.
Por causa da falta de perfusão de sangue, existem apenas residente macrófagos / microglia nesta cultura. Além disso, por causa da mcélulas Issing T e, portanto, ausentes alo-reactividade, as células de carcinoma humano pode ser utilizado para a co-cultura, mesmo com fatias de cérebro de ratos imunocompetentes como em ratos (NMRI, B6, ou Wistar). Tal pode servir como uma alternativa para o modelo do ratinho nu. Desde 4-5 fatias pode ser obtido a partir de cada ratinho, são necessários números significativamente reduzidos de animais, em comparação com os modelos de injecção existentes. Além disso, os animais não sofrem durante um longo período de doença metastática e não submetidos a procedimentos operatórios repetitivamente 22.
Com este sistema de co-cultura, que demonstraram a activação da microglia por células cancerosas e a capacidade de promover a invasão de células de cancro. Além disso, esta é a primeira vez, para o nosso conhecimento, microglia foram encontrados para transportar activamente células de carcinoma 23.
Apesar de todas estas vantagens, o sistema de co-cultura tem, de fato, também limitações. É ainda um in vitromodelar faltando os passos de metástase antes da colonização. Por causa da falta de perfusão, não é possível estudar o extravasamento. Assim, o caminho alternativo para estudar o extravasamento é usar o modelo in vivo de injecção ou o sistema de câmara de Boyden modificada com a matriz extracelular, as HUVEC e astrócitos para imitar a barreira sangue-cérebro 22,24. O método de co-cultura fatia do cérebro é ainda um modelo confiável e reprodutível com muitas vantagens e um potencial para uma grande variedade de aplicações, tais como a análise da colonização, em particular, com um foco sobre o papel das células residentes. A combinação com outras técnicas estabelecidas (como a imuno-histoquímica, microscopia confocal e microscopia de lapso de tempo) apoia a investigação de interações diretas célula-célula. É uma alternativa e complementação de outras técnicas fáceis e oferece acesso à investigação das pistas e efeitos como impostas pelo microambiente metastático.
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem Chalid Ghadban pela sua excelente assistência técnica, Andreas Wodarz e Stephan Heermann para os seus conselhos técnicos sobre confocal e microscopia de lapso de tempo. Não há conflito de interesses por qualquer dos autores. Este trabalho é financiado pelo Conselho de Pesquisa Alemã (DFG) no Projeto 2 de Forschergruppe 942 (FOR942 BI 703/3-1), pelos Dres. Bayer-Stiftung (Baden Württembergischer Krebspreis, Alemanha) e pelo Programa de Pesquisa da Faculdade de Medicina, Georg-August-Universidade de Göttingen, na Alemanha.
Material Name | Company | Catalogue number | Comment |
Hank's balanced salt solution (HBSS) | Gibco, Darmstadt,Germany | 24020 | |
Minimum essential medium (MEM) | Gibco, Darmstadt , Germany | 32360 | |
RPMI-1640 | PAA Laboratories Inc., Cölbe, Germany | E15-840 | |
Dulbecco's phosphate buffered saline (PBS) | Pan Biotech, Aidenbach, Germany | P04-36500 | |
Normal horse serum (NHS) | Invitrogen, Karlsruhe, Germany | 16050-122 | |
Fetal calf serum (FCS) | Invitrogen, Karlsruhe, Germany | 10091148 | |
Glucose | B. Braum, Melsungen, Germany | ||
L-Glutamine-Penicillin-Streptomycin solution | Sigma, Steinheim, Germany | G1146 | |
Vibratome | Leica, Wetzlar, Germany | Leica VT1200S | |
Microtome | Leica, Wetzlar, Germany | Leica SM 2000R | |
Polycarbonate membrane | BD Falcon, Heidelberg,Germany | 353090 | transwell membrane insert (0.4 μm pore size) |
ECM gel | Trevigen, R&D, Wiesbaden-Nordenstadt, Germany | 3432-005-01 | Basement membrane extract |
Metallic spacer | Kig GmbG, Kirkel, Germany | DIN 433 | |
Confocal microscope | Zeiss, Göttingen, Germany | LSM 510 | |
Time-lapse microscope and camera | Leica, Wetzlar, Germany | DMI 6000B microscope and a DFC 350 FX CCD camera | |
Anatomy microscope | Zeiss, Göttingen, Germany | Stemi SV11 | |
Paraformaldehyde | Merck, Darmstadt, Germany | 1.04005.1000 | |
Mouse monoclonal anti-glial fibrillary acidic protein (GFAP) antibody | Sigma, Steinheim, Germany | G3893 | |
Goat anti-mouse IgG, F(ab')2– TRITC | Santa Cruz, Heidelberg, Germany | SC3796 | |
Isolectin GS-IB4 from Griffonia simplicifolia, Alexa Fluor 647 conjugate | Invitrogen, Karlsruhe, Germany | 132450 | |
DAPI (4',6'-diamidino-2-phenylindole dihyfrochloride) | Sigma, Steinheim, Germany | D8417 | |
Fluorescent mounting medium | DAKO, Glostrup, Denmark | S3023 |