Мы опишем метод для пассивации поверхности стекла с использованием полиэтиленгликоля (ПЭГ). Этот протокол охватывает очистки поверхности, поверхности функционализации и PEG покрытие. Введем новую стратегию для обработки поверхности с молекулами ПЭГ в течение двух раундов, что дает высокое качество пассивации по сравнению с существующими методами.
Одиночных молекул флуоресцентная спектроскопия оказалась важную роль в понимании широкий спектр биологических явлений на наноуровне. Важные примеры того, что эта техника может уступать биологических наук являются механистические идеи о белок-белковых и взаимодействий белок-нуклеиновых кислот. Когда взаимодействия белков исследовали на уровне в одиночных молекул, белки или их субстраты часто иммобилизованных на поверхности стекла, что позволяет для долгосрочного наблюдения. Эта схема иммобилизации может ввести нежелательных артефактов поверхности. Таким образом, очень важно для пассивации поверхности стекла, чтобы сделать его инертным. Покрытие поверхности с использованием полиэтиленгликоля (ПЭГ) выделяется своей высокой производительности в предотвращении белки от неспецифически взаимодействовать с поверхности стекла. Однако процедура полимерное покрытие трудно, в связи с осложнением, вытекающие из серии поверхностных обработок и строгих требований, что поверхность должнабыть свободным от любых флуоресцентных молекул в конце процедуры. Здесь мы предоставляем надежный протокол с шаг за шагом инструкции. Она охватывает очистку поверхности, включая пираньи травления, функционализации поверхности с аминогруппами и, наконец, ПЭГ покрытия. Для получения высокой плотности слоя PEG, введем новую стратегию обработки поверхности с молекулами ПЭГ в течение двух раундах, а это заметно повышает качество пассивации. Мы предоставляем репрезентативные результаты, а также практические советы для всех критических этапах, так что любой может достичь качества пассивации поверхности высокую.
При выполнении исследование белка одиночных молекул важно для достижения высокого качества пассивации поверхности так, что эксперимент свободен от любой неисправности поверхностного белка, вызванной денатурации или 1,2. В то время как стеклянная поверхность обрабатывают поверхностно-активных веществ, таких как бычий сывороточный альбумин, обычно используется для одной молекулы нуклеиновых кислот исследований 3, степень его пассивации недостаточно высока для белковых исследований. Стеклянная поверхность с полимерным покрытием (полиэтиленгликоля, ПЭГ) превосходит в производительности пассивация 4-6. Таким образом, она стала повсеместно используется для белковых одной молекулы исследований с тех пор она была введена в одиночных молекул флуоресцентного исследования 7-10. Процедура полимерное покрытие требует нескольких обработки поверхности 7,11,12. Таким образом, это трудно следовать всю процедуру без подробных инструкций. Часто степень пассивации поверхности изменяется в зависимости от того, какой протокол яс последующим. Здесь мы представляем надежную протокол с шаг за шагом инструкции, что позволит удалить один из основных узких мест исследований белковых одиночных молекул. См. рисунок 1 для обзора.
Критические шаги в рамках этого протокола
Очень важно, чтобы сделать поверхность гидрофильной перед реакцией амино-силанизации. Это было достигнуто за счет пираньи травления, который генерирует свободные гидроксильные группы на стекло / поверхности кварца. Рекомендуется не держать пираньи протравленной поверхности подвергаются либо H 2 O или воздуха в течение длительного периода времени с момента гидрофильности поверхности постепенно понижается.
Молекулы NHS-эфир ПЭГ являются реактивными. Это рекомендуется сделать аликвоты и хранить их в атмосфере азота в -20 º С. Срок хранения химической APTES при комнатной температуре коротка. Рекомендуется заменить его на новый каждый месяц.
Модификации этого протокола
Если вы не можете использовать пираньи травление для любого практического разума, вы можете травления с использованием КОН в течение длительного периода времени (например, оvernight), который также сделает подвергается гидроксильные группы. Ловушка этого альтернативного подхода является то, что слайд становится непригодным для использования после нескольких рециклов из-за тяжелых царапин.
Это часто практикуется сжечь стекло / кварцевый поверхность с помощью пропановой горелки, которая является эффективной в устранении люминесцентные органических материалов 7. Эта процедура не была включена в этот протокол, потому что он является излишним в пираньи травления. Следует отметить, что эта процедура будет потенциально может привести к окислению гидроксильными группами. Таким образом, эта процедура не должна осуществляться один раз в поверхность травили с использованием КОН или пираньи решение.
Когда буфер с рН менее 7 используется для формирования изображения одиночных молекул, конформация ПЭГ изменяется от "гриба" до "кистью", который уменьшает степень пассивации. Таким образом, при рН ниже, чем 7,0 используется, рекомендуется для дальнейшего пассивации поверхности с помощью дисукцинимидил тартрат <SUP> 7.
Перспективы
Эта работа обеспечила надежную протокол для достижения высокого качества поверхности пассивации. Этот протокол будет полезен для одиночных молекул исследований флуоресценции, которые связаны с белками 14, а также белковых комплексов в пределах клеточных экстрактов и иммунопреципитаты 15. Это будет широко использоваться для других методов одиночных молекул, таких как силовой спектроскопии и крутящего момента спектроскопии 16. Это будет также полезно для предотвращения клетки от адсорбции к поверхности 17.
Протокол предоставляется в этой работе требует для своих многоступенчатых процедур. Пассивации поверхности с помощью липидного-ПЭГ 8 и поли-лизин ПЭГ 9 доступны в качестве альтернативного подхода. Так, они не требуют никаких химических реакций это легко осуществить. Тем не менее, степень пассивации не выше, чем достигается путем химического MODIFication поверхности.
The authors have nothing to disclose.
SDC, ACH, и CJ были поддержаны Начиная грантов (ERC-STG-2012-309509) через Европейский исследовательский совет. Ж.-MN при поддержке Национального исследовательского фонда (ПЗФ) (2011-0018198) Корея; и Программа научно-исследовательский центр Pioneer (2012-009586) через NRF Корея финансируется Министерством науки, ИКТ, и будущее планирования (MSIP). Эта работа была поддержана Центром BioNano здравоохранения-гвардии финансируемого MSIP Корея в качестве глобального проекта Frontier (Н-GUARD_2013-M3A6B2078947). YKL и Ж.-HH были поддержаны Сеул научное общество Программы Сеула, Корея. Меченый белок Rep был щедрый подарок от доктора Суа Мен.
1. Slide preparation and cleaning | |||
Acetone | Sigma | 32201 | 1 L |
Coverslips | VWR | 631-0136 631-0144 631-0147 | 24x32mm2, 22x40mm2, 24x50mm2 (No.1½, Rectangular) |
Diamond drill bits | MTN-Giethoorn, The Netherlands | LA-0564-00DB | 3/4 mm |
Duran slide holder | LGS, The Netherlands | 213170003 | |
Glass staining dishes | Fisher Scientific | 300101 | |
H2O2 | Boom | 6233905 | Opened bottles should be stored at 4 °C. 1 L, hydrogen peroxide 30% |
H2SO4 | Boom | 80900627.9010 | Sulfuric acid 95-98% |
KOH | Sigma | 30603 | Potassium hydroxide |
Methanol | Sigma | 32213 | 1 L |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
Quartz slides | Finkenbeiner | 1” x 3”, 1 mm thick | |
2. Coverslip cleaning | |||
Duran slide holder | LGS, The Netherlands | 213170003 | |
KOH | Sigma | 30603 | Potassium hydroxide |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
3. Amino-silanization of slides and coverslips | |||
Acetic acid | Sigma | 320099-500ML | Acetic acid, glacial |
APTES | Sigma-Aldrich | 281778-100ML | Store at the room temperature under N2 . Replace once in a month. 3-aminopropyl trimethoxysilane |
Flask (200mL) | VWR | Flask (200 mL) | Have one flask dedicated for aminosilanization. Pyrex flask |
Methanol | Sigma | 32213 | 1 L |
Sonicator | Branson | Tabletop ultrasonic cleaner, 3510 | |
4. Surface passivation using polymer (the first round) | |||
Biotin-mPEG | Laysan Bio | Biotin-PEG-SVA-5000-100mg | Store aliquots of 1-2 mg (enough for 10 slides) at -20 °C under N2. Biotin-PEG-SVA, MW 5,000 Da |
mPEG | Laysan Bio | MPEG-SVA-5000-1g | Store aliquots of 80 mg (enough for 10 slides) at -20 °C under N2. mPEG-succinimidyl valerate (SVA), MW 5,000 Da |
Sodium bicarbonate | Sigma | S6014-500G | |
6. Surface passivation (the second round) | |||
DMSO | Sigma-Aldrich | D8418-100ML | Dimethyl sulfoxide BioReagent, for molecular biology, ≥99.9% |
DST | Pierce | 20589 | Disuccinimidyl tartarate |
MS4-PEG | Pierce | 22341 | Dissolve 100 mg MS4-PEG in 1.1 mL DMSO. Store 20 mL aliquots at -20 °C. Short NHS-ester PEG, MW 333 Da |
Sodium bicarbonate | Sigma | S6014-500G | |
7. Assembling a microfluidic chamber | |||
Double sticky tape | Scotch | 10mm wide | |
Epoxy | Thorlabs | G14250 | Devcon 5 minute epoxy |
NaCl | Sigma-Aldrich | S9888-1 KG | Sodium chloride |
Neutravidin | Pierce | 31000 | Stock in 5 mg/mL in H2O at 4 °C. ImmunoPure NeutrAvidin Biotin-Binding protein |
Streptavidin | Invitrogen | S-888 | Stock 5 mg/mL in H2O or T50 at 4 °C. |
Trizma base | Sigma-Aldrich | T1503-1 KG | Tris |