Summary

Genmanipulation av Mouse Utveckla Hypothalamus genom<em> In utero</em> Elektroporering

Published: July 24, 2013
doi:

Summary

Trots den funktionella och medicinsk betydelse av hypotalamus,<em> I livmodern</em> Genetisk manipulation av dess utveckling har sällan prövats. Vi visar ett detaljerat förfarande för<em> I livmodern</em> Elektroporering i musen hypotalamus och utställningsresultat representativa av total och partiell (regional) hypotalamus transfektion.

Abstract

Genetisk modifiering av specifika regioner i tredje däggdjurshjärnan är en mycket kraftfull experimentell metod. Men generera mutanter nya mus är ofta frustrerande långsamt. Det har visats att tillgången till mushjärnan utvecklas i livmodern med rimlig post-operationslampan överlevnad är möjlig. Ändå har resultat med detta förfarande har rapporterats nästan uteslutande i de mest ytliga och lättillgänglig del av den växande hjärnan, dvs cortex. Thalamus, ett smalare och mer medial region, har visat sig vara svårare att rikta. Transfektion in djupare kärnor, speciellt de av hypotalamus, är kanske den mest utmanande och därför mycket få resultat har rapporterats. Här visar vi ett förfarande för att rikta hela hypotalamus neuroepitelet eller en del av det (hypotalamus regioner) för transfektion genom elektroporation. Nycklarna till vårt tillvägagångssätt är längre narkos gånger, injektion i tREDJE ventrikeln, och lämplig typ och positionering av elektroderna. Dessutom visar vi resultaten av inriktning och efterföljande histologisk analys av de försänkta hypotalamus kärnan, mammillary kroppen.

Introduction

Genetisk manipulation av embryonala mus hjärnan är en föredragen metod för att lära sig om utvecklings-reglering. Alstring av mutanta mus linjer är emellertid långsam och dyr. En kraftfull metod för att introducera specifika genetiska förändringar i utvecklingen av nervceller i däggdjur hjärnan är i livmodern elektroporering. Sammanfattningsvis består tekniken av transfekterande DNA i den embryonala hjärnan neuroepitelet med hjälp av elektriska pulser, sedan låta embryot att överleva under en viss tid, samla hjärnan och undersöka dem för eventuell roman, informativa fenotyper. På detta sätt, kan försöksledaren testa hypoteser nästan omedelbart utan långa väntetider är nödvändiga för framställning av mus mutanter.

Transfektion av DNA in i utvecklande embryon började med i ovo elektroporering på kycklingembryon 1. Den väsentliga proof-of-concept för musen utfördes i kulturen <supp> 2. Detta följdes snart av de första beskrivningarna av tekniken på musen i livmodern 3,4.

Det största problemet är att transfektera hjärnan av embryon utvecklas i livmodern utan att döda dem eller modern. Att lära sig att utföra nödvändig kirurgi (laparotomi, injektion, elektroporation) kräver en lång utbildningsperiod. När operationen har bemästrat till den punkt där embryoöverlevnad förhållandet är acceptabelt, är nästa viktiga fråga: vilka hjärnstrukturer är tillgängliga? Inte överraskande, den första publicerade artiklar visar resultat erhållna med i livmodern elektroporering fokuserat på kortikal utveckling 5-9. Detta är fortfarande sant för de flesta av de publikationer som använder denna teknik, eftersom området för det sig utvecklande mushjärnan mest tillgängliga för kirurgiska ingrepp är cortex (figur 1). Förfarandet för i livmodern elektroporering in i cortex har beskrivitsi tryck 10 och i videon 11-14. En modifiering av den teknik som kan användas för att rikta en ventral del av telencefalon, de basala ganglierna 15.

Bortom telencephalon är diencefalon (klassiskt uppdelad i thalamus och hypotalamus) en region av framhjärnan svårare att nå. Ett litet antal papper rapporter riktar sin rygg och mest tillgängliga delen, thalamus 16-19.

Hypotalamus är den mest ventrala delen av framhjärnan, varför en lokaliserad djupast från den dorsala ytan (cortex) (figur 1). Denna region är fortfarande en svår utmaning för forskarna åtagit sig att genetiskt manipulera mushjärnan i livmodern. Till vår kunskap, endast ett fåtal artiklar rapportera om resultaten av in utero transfektion i musen hypotalamus 20,21. Emellertid den funktionella betydelsen av hypothalamus cannot överskattas, eftersom det reglerar beteenden som att äta och dricka, parning, avel och föräldraskap 22. Dessutom förändringar i hypotalamus utveckling bidrar till att härröra senare i livet tillstånd som fetma, högt blodtryck, diabetes och för tidig pubertet 23. Att kunna ändra genetiskt hypotalamus under utveckling skulle ge ett mycket kraftfullt verktyg för att förstå det.

Den grundläggande kirurgiska protokoll för laparotomi av dräktiga möss som vi använder här är liknande den som används i andra protokoll 11,13,14,24. Vi kommer att beskriva dem här kort för fullständighet. Nyckeln till vårt förfarande, å andra sidan, är den typ av anestesi, platsen för injektionen, typen av elektroder och införande och placering av den positiva elektroden i förhållande till embryots huvud. Vi föredrar att inducera och underhålla anestesi genom gas inandning över enkel intraperitoneal anestesi, eftersom den förstnämnda möjliggörnågot längre narkos krävs för en svår operation. Isofluran inandning resulterar i snabbare återhämtning från anestesi, eftersom vanligtvis modern demonstrerar normalt beteende redan minuter efter operationen. Det enklaste punkten för injektion av DNA-lösningen med glasmikropipett är den laterala ventrikeln, som dock är helt olämpliga för hypotalamus elektroporering. Injektion direkt i den tredje ventrikeln är verkligen avgörande att rikta djupa diencephalic strukturer. Det är möjligt att transfektera hypotalamus från E12.0 eller E12.5 med standard, off-the-shelf elektroder. Vi har funnit en del av elektroderna som tillverkas av Nepa Gene (Chiba, Japan) särskilt lämpad för detta ändamål.

Med vårt förfarande erhåller vi transfektion av hela hypotalamus neuroepitelet eller delvis, regional transfektion beroende på elektrod orientering. Här kan vi demonstrera tekniken genom transfektion av mammillary kroppen, utan tvekanden djupaste och mest infälld allt hypotalamus kärnor. Dessutom visar vi detaljerad histologisk analys av de transfekterade cellerna ner till cellnivå av upplösning.

En jämförelse av i livmodern elektroporering med andra metoder för transfektion musen utvecklar hjärnan i livmodern kan hittas i diskussionen avsnittet.

Protocol

Ett. Framställning av DNA och glas Mikropipetter för injektion Bra kvalitet glas mikropipetter är viktigt att minska initial hög aborter på grund av förlust av fostervatten. Proceduren att dra glas mikropipetter har dokumenterats väl 13,18,25. Använd 1,2 mm diameter kapillärer drog i en konventionell Sutter P-97-enheten med inställningarna P = 500; Heat = 300; Pull = 40; Hastighet = 50; Tid = 50. Montera avdragaren med 3 mm "tråg" trådar (Sutter Instrument FT330B). De 2 mm sto…

Representative Results

De flesta hypotalamus nervceller föds mellan E11.5 till E15.2, enligt födelse-dejting analys hos råtta 26 översättas till något kortare musen utveckling 27,28. Toppen av hypotalamus neurogenesisen nås vid E12.5 29-31. Följaktligen, vid transfektion ålder valdes för denna studie (E12.5), kan en stor del av hypotalamus nervceller märkas vid varje given rostro-caudal nivå. Analys på E18.5 på tjocka vibratom-typ sektioner (figurerna 3A</stro…

Discussion

Om anestesi: Eftersom i livmodern elektroporering i hypotalamus kan vara tekniskt krävande och kräver längre narkos gånger, vi föredrar att inducera och underhålla anestesi genom administrering av en blandning av syre och isofluran. I vår erfarenhet, kan djuren vara lämpligt nedsövd på detta sätt för perioder på upp till en timme åtminstone, är återvinning av mamman mycket snabbt, och embryo överlevnad förbättrats. Andra tillvägagångssätt för anestesi finns också. Den enklaste förfarand…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats av det tyska Research Foundation (Deutsche Forschungsgemeinschaft).

Materials

      REAGENTS
Acepromazine Sanofi GmbH   anesthetic
Isoflurane Baxter HDG9623 anesthetic
Ketamin Pharma GmbH   anesthetic
Fast Green Fluka 44715  
Rimadyl Pfizer   non-steroidal anti-inflammatory
Braunoderm Braun 3887138 povidone-iodine
Phosphate Buffer Saline PBS Gibco 14190  
Temgesic (buprenorphine) Essex Pharma   opioid analgesic
Eye Ointment Pan-Ophtal 7136926  
Xylazine Bayer    
      EQUIPMENT
Anaesthetic Device Komesaroff Mark-5 Medical Developments Australia ACN 004 903 682  
Capillary puller P-97 Sutter Instrument Co. P-97  
Compresstome Precisionary Instr. VF-300 Vibratome-type device
Confocal Microscope Zeiss LSM700  
Cryostat Leica CM3050S  
Electroporator Nepa Gene Co. Ltd. CUY21EDIT  
Electrode 1 Nepa Gene Co. Ltd. CUY550-10 Stainless Steel Needle Electrode, 10 mm-Tip, 0. 5 mm diam.
Electrode 2 Nepa Gene Co. Ltd. CUY700P4L Cover Round Platinum Plate 4 mm diameter
Fiberoptic cold light source Leica KL2500 LCD  
Glass capillaries Harvard Apparatus GC120T-15 1. 2 mm O.D. x 0. 94 mm I.D.
Glass bead sterilizer Fine Science Tools FST250  
Heating pad Harvard Apparatus py872-5272  
Injection device World Precision Instruments Pneumatic Pico Pump PV820  
Suture Thread Coated Vicryl Ethicon V4914 Peritoneal Suture
Suture Thr. Supramid Serag Wiessner TO07171L Skin Suture

Referências

  1. Itasaki, N., Bel-Vialar, S., Krumlauf, R. Shocking’ developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression. Nat. Cell Biol. 1, E203-E207 (1999).
  2. Miyasaka, N., Arimatsu, Y., Takiguchihayashi, K. Foreign gene expression in an organotypic culture of cortical anlage after in vivo electroporation. Neuroreport. 10, 2319-2323 (1999).
  3. Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev. Biol. 240, 237-246 (2001).
  4. Tabata, H., Nakajima, K. Efficient in utero gene transfer system to the developing mouse brain using electroporation: visualization of neuronal migration in the developing cortex. Neurociência. 103, 865-872 (2001).
  5. Fukuchi-Shimogori, T., Grove, E. A. Neocortex patterning by the secreted signaling molecule FGF8. Science. 294, 1071-1074 (2001).
  6. Tabata, H., Nakajima, K. Neurons tend to stop migration and differentiate along the cortical internal plexiform zones in the Reelin signal-deficient mice. J. Neurosci. Res. 69, 723-730 (2002).
  7. Fukuchi-Shimogori, T., Grove, E. A. Emx2 patterns the neocortex by regulating FGF positional signaling. Nat. Neurosci. 6, 825-831 (2003).
  8. Shimogori, T., Banuchi, V., Ng, H. Y., Strauss, J. B., Grove, E. A. Embryonic signaling centers expressing BMP, WNT and FGF proteins interact to pattern the cerebral cortex. Development. 131, 5639-5647 (2004).
  9. Shimogori, T., Grove, E. A. Fibroblast growth factor 8 regulates neocortical guidance of area-specific thalamic innervation. J. Neurosci. 25, 6550-6560 (2005).
  10. Saito, T. In vivo electroporation in the embryonic mouse central nervous system. Nat. Protoc. 1, 1552-1558 (2006).
  11. Dixit, R., et al. Efficient Gene Delivery into Multiple CNS Territories Using In Utero Electroporation. J. Vis. Exp. (52), e2957 (2011).
  12. Rice, H., Suth, S., Cavanaugh, W., Bai, J., Young-Pearse, T. L. In utero Electroporation followed by Primary Neuronal Culture for Studying Gene Function in Subset of Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (44), e2103 (2010).
  13. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In Utero Intraventricular Injection and Electroporation of E15 Mouse Embryos. J. Vis. Exp. (6), e239 (2007).
  14. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In Utero Intraventricular Injection and Electroporation of E16 Rat Embryos. J. Vis. Exp. (6), e236 (2007).
  15. Borrell, V., Yoshimura, Y., Callaway, E. M. Targeted gene delivery to telencephalic inhibitory neurons by directional in utero electroporation. J. Neurosci. Methods. 143, 151-158 (2005).
  16. Haddad-Tovolli, R., Heide, M., Zhou, X., Blaess, S., Alvarez-Bolado, G. Mouse thalamic differentiation: gli-dependent pattern and gli-independent prepattern. Front Neurosci. 6, 27 (2012).
  17. Kataoka, A., Shimogori, T. Fgf8 controls regional identity in the developing thalamus. Development. 135, 2873-2881 (2008).
  18. Matsui, A., Yoshida, A. C., Kubota, M., Ogawa, M., Shimogori, T. Mouse in Utero Electroporation: Controlled Spatiotemporal Gene Transfection. J. Vis. Exp. (54), e3024 (2011).
  19. Vue, T. Y., et al. Sonic hedgehog signaling controls thalamic progenitor identity and nuclei specification in mice. J. Neurosci. 29, 4484-4497 (2009).
  20. Tanaka, S., et al. Transcriptional regulation of the hypocretin/orexin gene by NR6A1. Biochem. Biophys. Res. Commun. 403, 178-183 (2010).
  21. Tsuchiya, R., Takahashi, K., Liu, F. C., Takahashi, H. Aberrant axonal projections from mammillary bodies in Pax6 mutant mice: possible roles of Netrin-1 and Slit 2 in mammillary projections. J. Neurosci. Res. 87, 1620-1633 (2009).
  22. Canteras, N. S., Watson, C., Paxinos, G., Puelles, L. . The Mouse Nervous System. , 539-562 (2011).
  23. Caqueret, A., Yang, C., Duplan, S., Boucher, F., Michaud, J. L. Looking for trouble: a search for developmental defects of the hypothalamus. Horm. Res. 64, 222-230 (2005).
  24. Petros, T. J., Rebsam, A., Mason, C. A. In utero and ex vivo Electroporation for Gene Expression in Mouse Retinal Ganglion Cells. J. Vis. Exp. (31), e1333 (2009).
  25. Nijagal, A., Le, T., Wegorzewska, M., Mackenzie, T. C. A Mouse Model of in Utero Transplantation. J. Vis. Exp. (47), e2303 (2011).
  26. Altman, J., Bayer, S. A. The Development of the Rat Hypothalamus. Adv. Anat. Embryol. Cell Biol. 100, 1-178 (1986).
  27. Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. Translating developmental time across mammalian species. Neurociência. 105, 7-17 (2001).
  28. Clancy, B., et al. Web-based method for translating neurodevelopment from laboratory species to humans. Neuroinformatics. 5, 79-94 (2007).
  29. Ishii, Y., Bouret, S. G. Embryonic birthdate of hypothalamic leptin-activated neurons in mice. Endocrinology. 153, 3657-3667 (2012).
  30. Karim, M. A., Sloper, J. C. Histogenesis of the supraoptic and paraventricular neurosecretory cells of the mouse hypothalamus. J. Anat. 130, 341-347 (1980).
  31. Shimada, M., Nakamura, T. Time of neuron origin in mouse hypothalamic nuclei. Exp. Neurol. 41, 163-173 (1973).
  32. Alvarez-Bolado, G., Paul, F. A., Blaess, S. Sonic hedgehog lineage in the mouse hypothalamus: from progenitor domains to hypothalamic regions. Neural. Dev. 7, 4 (2012).
  33. Vann, S. D., Aggleton, J. P. The mammillary bodies: two memory systems in one. Nat. Rev. Neurosci. 5, 35-44 (2004).
  34. Gratsch, T. E., De Boer, L. S., O’Shea, K. S. RNA inhibition of BMP-4 gene expression in postimplantation mouse embryos. Genesis. 37, 12-17 (2003).
  35. Wu, N., Yu, A. B., Zhu, H. B., Lin, X. K. Effective silencing of Sry gene with RNA interference in developing mouse embryos resulted in feminization of XY gonad. J. Biomed. Biotechnol. 2012, 343891 (2012).
  36. Kikuchi, N., Nakamura, S., Ohtsuka, M., Kimura, M., Sato, M. Possible mechanism of gene transfer into early to mid-gestational mouse fetuses by tail vein injection. Gene Ther. 9, 1529-1541 (2002).
  37. Foust, K. D., et al. Intravascular AAV9 preferentially targets neonatal neurons and adult astrocytes. Nat. Biotechnol. 27, 59-65 (2009).
  38. Xin, H., et al. The brain targeting mechanism of Angiopep-conjugated poly(ethylene glycol)-co-poly(epsilon-caprolactone) nanoparticles. Biomaterials. 33, 1673-1681 (2012).
  39. Niwa, H., Yamamura, K., Miyazaki, J. Efficient selection for high-expression transfectants with a novel eukaryotic vector. Gene. 108, 193-199 (1991).
  40. Kaufman, R. J., Davies, M. V., Wasley, L. C., Michnick, D. Improved vectors for stable expression of foreign genes in mammalian cells by use of the untranslated leader sequence from EMC virus. Nucleic Acids Res. 19, 4485-4490 (1991).
  41. Tsien, R. Y. The green fluorescent protein. Annu. Rev. Biochem. 67, 509-544 (1998).
  42. Londrigan, S. L., et al. Evaluation of promoters for driving efficient transgene expression in neonatal porcine islets. Xenotransplantation. 14, 119-125 (2007).

Play Video

Citar este artigo
Haddad-Tóvolli, R., Szabó, N., Zhou, X., Alvarez-Bolado, G. Genetic Manipulation of the Mouse Developing Hypothalamus through In utero Electroporation. J. Vis. Exp. (77), e50412, doi:10.3791/50412 (2013).

View Video