Detta förfarande ger telencephalic nervceller genom att gå igenom checkpoints som liknar de som observerats under människans utveckling. Cellerna får spontant differentiera, utsätts för faktorer som driver dem mot det neurala härstamning, isoleras och stryks ut på täckglas för att möjliggöra terminal differentiering och mognad.
Här har en stegvis procedur för att effektivt generera telencephalic glutamaterga nervceller från mänskliga pluripotenta stamceller (PSC) har beskrivits. Differentieringen initieras genom att bryta de mänskliga PSC till klumpar som avrunda att bilda aggregat när cellerna placeras i en suspensionskultur. Aggregaten odlas sedan i hESC medium från dag 1-4 för att medge spontan differentiering. Under denna tid, cellerna har förmåga att bli någon av de tre groddblad. Från dag 5-8, är cellerna placerade i en neural induktion medium för knuffa dem i neurala linjen. Omkring dag 8, cellerna fick fästa på 6 brunnars plattor och differentiera under vilken tid neuroepitelceller formuläret. Dessa neuroepitelceller kan isoleras på dag 17. Cellerna kan därefter hållas så neurosfärer tills de är redo att plattades på täckglas. Med hjälp av ett basiskt medium utan caudalizing faktorer neuroepitelceller är specified till telencephalic prekursorer, som sedan kan ytterligare differentieras i rygg telencephalic föregångare och glutamaterga neuroner effektivt. Sammantaget ger vårt system ett verktyg för att generera humana glutamaterga nervceller för forskare att studera utvecklingen av dessa neuroner och de sjukdomar som påverkar dem.
Mänskliga pluripotenta stamceller (PSC), både mänskliga embryonala stamceller (hESCs) och inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs), har kapacitet att generera alla celltyp i kroppen, inklusive nervceller 1-3. Riktad differentiering av olika neuronala subtyper från mänskliga PSC är nyckeln för tillämpningen av dessa celler i regenerativ medicin. Den generation av funktionella neuronala subtyper under utveckling är en komplex process som involverar induktion av neurala härstamning, specifikation av regionala stamfäder längs Rostro-caudal axeln och differentieringen av post-mitotiska neuron typer från de regionala stamceller 4,5. Från och med 2001 har flera system etablerats för att generera neurala härkomst från hESCs som har gett en plattform för nästa generation av neuronala subtyper 6,7. Baserat på utvecklingsmässiga principer, flera neuron typer såsom spinal motoriska neuroner 8-12, mitthjärnan DOPaminergic neuroner 13-15 och neurala näthinnans celler 16,17 har effektivt anges från humana PSC. Detta gjordes genom att kritiska morfogener som är viktiga för att specificera dessa neuron typer under in vivo-utvecklingen. Andra protokoll har också utvecklats för att främja differentiering av hESCs till nervceller med hjälp av antingen ytterligare faktorer 18-20 såsom små molekyler eller genom samodling med andra celltyper för att främja differentiering 21.
Den mänskliga neocortex är högt utvecklad och innehåller många celltyper, inklusive glutamaterga nervceller som spelar en viktig roll i inlärning, minne och kognitiv funktion 22,23. Det första steget vid generering av glutamaterga neuroner i odling är att ange telencephalic progenitorceller. Yoshiki Sasai grupp rapporterade först riktade differentiering av telencephalic prekursorer från mus ekonomiska och sociala råd (mESCs) med en serumfritt suspensioN-kulturen i närvaro av DKK1 (som inhiberar Wnt signalering) liksom LeftyA (som inhiberar nodal signalering) 24. Därefter har flera grupper inklusive vår rapporterade också specifikationen av telencephalic prekursorer från mänskliga PSC i serumfritt medium 25-27. Den generation telencephalic prekursorer från mänskliga PSC kräver inte användning av exogena morfogener och effektivitet i att generera dessa prekursorer är mycket högre än den från mESCs 26,27. Här har ett kemiskt definierat system för neural induktion som väl grundades av Zhang grupp 7 har beskrivits. Utan tillsats av exogena caudalizing faktorer genererar detta protokoll effektivt telencephalic prekursorer från mänskliga PSC 27. Dessa stamfäder kan sedan delas in i dorsala eller ventrala föregångare genom att reglera signalering av Wnt-och Sonic hedgehog (SHH). Den dorsala stamfäder vidare kan differentiera till glutamaterga neuron efficiently 27. Dessutom fungerar detta protokoll också väl för generering av glutamaterga neuroner från humant iPSCs 28, som möjliggör generering av patientspecifika neuroner som kan utnyttjas för att undersöka verkningsmekanismen samt potentiella terapier för en stor mängd sjukdomar . Dessutom ger vårt system också en plattform för att undersöka möjligheten att utarbeta och specifikation av olika neuronala typer i telencephalon.
Det finns flera viktiga steg under den neurala differentiering processen. Det är viktigt att säkerställa att de humana PSC är pluripotenta eftersom annars cellerna kan redan vara förspänd mot att bli en icke-neuronal härstamning. Detta kan bekräftas genom färgning av humana PSC med antikroppar mot pluripotensbestämmande markörer såsom Oct4, Sox2, nanog, och Tra-1-60 1-3. Om de mänskliga PSC inte fäster mycket väl efter passage dem, kan ROCK-hämmare (Y27632) läggas att hjälpa till. För dem s…
The authors have nothing to disclose.
Författarna vill tacka Dr Y. Sasai för generöst ge FOXG1 antikroppen. Detta arbete stöddes av Connecticut Stem Grants Cell Research (08-SCB-UCHC- 022 och 11-SCB24) och spastisk paraplegi Foundation.
Reagent | Supplier | Catalog # |
Dulbecco’s modified eagle medium with F12 nutrient mixture (DMEM/F12) | Gibco | 11330-032 |
Knockout Serum Replacer | Gibco | 10828-028 |
L-glutamine (200 mM) | Gibco | 25030 |
Non Essential Amino Acids | Gibco | 1140-050 |
2-Mercaptoethanol (14.3 M) | Sigma | M-7522 |
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 |
N2 | Gibco | 17502-048 |
B27 | Gibco | 12587-010 |
Heparin | Sigma | H3149 |
Poly-L-ornithine hydrobromide (polyornithine) | Sigma | 116K5103 |
Laminin (human) | Sigma | L-6274 |
Laminin (mouse) | Invitrogen | 23017-015 |
FBS | Gemini | 100-106 |
Bovine serum albumin (BSA) | Sigma | A-7906 |
Dispase | Gibco | 17105-041 |
Collagenase | Invitrogen | 17104-019 |
Accutase | Innovative Cell Technologies | AT104 |
ROCK Inhibitor | Stemgent | 04-0012 |
SB431542 | Stemgent | 04-0010 |
Dorsomorphin | Stemgent | 04-0024 |
Fibroblast growth factor 2 (FGF2, bFGF) | Invitrogen | 13256-029 |
Trypsin inhibitor | Gibco | 17075 |
0.1% gelatin | Millipore | ES-006-B |
Foxg1 antibody | Dr. Y. Sasai | |
Hoxb4 antibody (1:50) | Developmental Studies Hybridoma Bank | I12 |
Pax6 antibody (1:5000) | Developmental Studies Hybridoma Bank | PAX6 |
Nkx2.1 antibody (1:200) | Chemicon | MAB5460 |
Tbr1 antibody (1:2000) | Chemicon | AB9616 |
vGLUT1 antibody (1:100) | Synaptic Systems | 135302 |
Brain derived neurotrophic factor (BDNF) | PrepoTech Inc. | 450-02 |
Glial derived neurotrophic factor (GDNF) | PrepoTech Inc. | 450-10 |
Insulin growth factor 1 (IGF1) | PrepoTech Inc. | 100-11 |
Cyclic AMP (cAMP) | Sigma | D-0260 |
Sonic hedgehog (SHH) | R&D | 1845-SH |
50 ml tubes | Becton Dickinson (BD) | 352098 |
15 ml tubes | BD | 352097 |
6 well plates | BD | 353046 |
24 well plates | BD | 353047 |
T25 flasks (untreated) | BD | 353009 |
T75 flasks (untreated) | BD | 353133 |
Coverslips | Chemiglass Life Sciences | 1760-012 |
6 cm Petri dishes | BD | 353004 |
9” glass pipetes | Fisher | 13-678-20D |
Steriflip filters (0.22 μM) | Millipore | SCGP00525 |
Stericup filters 1,000 ml (0.22 μM) | Millipore | SCGPU10RE |
Phase contrast microscope (Observer A1) | Zeiss | R2625 |
Carbon dioxide incubator (Hera Cell 150) | Thermo Electron Corporation | |
Biosafety hood (Sterilgard III Advance) | The Baker Company | |
Centrifuge (5702 R) | Eppendorf |