Summary

Specifikationen av Telencephalic glutamaterg nervceller från mänskliga pluripotenta stamceller

Published: April 14, 2013
doi:

Summary

Detta förfarande ger telencephalic nervceller genom att gå igenom checkpoints som liknar de som observerats under människans utveckling. Cellerna får spontant differentiera, utsätts för faktorer som driver dem mot det neurala härstamning, isoleras och stryks ut på täckglas för att möjliggöra terminal differentiering och mognad.

Abstract

Här har en stegvis procedur för att effektivt generera telencephalic glutamaterga nervceller från mänskliga pluripotenta stamceller (PSC) har beskrivits. Differentieringen initieras genom att bryta de mänskliga PSC till klumpar som avrunda att bilda aggregat när cellerna placeras i en suspensionskultur. Aggregaten odlas sedan i hESC medium från dag 1-4 för att medge spontan differentiering. Under denna tid, cellerna har förmåga att bli någon av de tre groddblad. Från dag 5-8, är cellerna placerade i en neural induktion medium för knuffa dem i neurala linjen. Omkring dag 8, cellerna fick fästa på 6 brunnars plattor och differentiera under vilken tid neuroepitelceller formuläret. Dessa neuroepitelceller kan isoleras på dag 17. Cellerna kan därefter hållas så neurosfärer tills de är redo att plattades på täckglas. Med hjälp av ett basiskt medium utan caudalizing faktorer neuroepitelceller är specified till telencephalic prekursorer, som sedan kan ytterligare differentieras i rygg telencephalic föregångare och glutamaterga neuroner effektivt. Sammantaget ger vårt system ett verktyg för att generera humana glutamaterga nervceller för forskare att studera utvecklingen av dessa neuroner och de sjukdomar som påverkar dem.

Introduction

Mänskliga pluripotenta stamceller (PSC), både mänskliga embryonala stamceller (hESCs) och inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs), har kapacitet att generera alla celltyp i kroppen, inklusive nervceller 1-3. Riktad differentiering av olika neuronala subtyper från mänskliga PSC är nyckeln för tillämpningen av dessa celler i regenerativ medicin. Den generation av funktionella neuronala subtyper under utveckling är en komplex process som involverar induktion av neurala härstamning, specifikation av regionala stamfäder längs Rostro-caudal axeln och differentieringen av post-mitotiska neuron typer från de regionala stamceller 4,5. Från och med 2001 har flera system etablerats för att generera neurala härkomst från hESCs som har gett en plattform för nästa generation av neuronala subtyper 6,7. Baserat på utvecklingsmässiga principer, flera neuron typer såsom spinal motoriska neuroner 8-12, mitthjärnan DOPaminergic neuroner 13-15 och neurala näthinnans celler 16,17 har effektivt anges från humana PSC. Detta gjordes genom att kritiska morfogener som är viktiga för att specificera dessa neuron typer under in vivo-utvecklingen. Andra protokoll har också utvecklats för att främja differentiering av hESCs till nervceller med hjälp av antingen ytterligare faktorer 18-20 såsom små molekyler eller genom samodling med andra celltyper för att främja differentiering 21.

Den mänskliga neocortex är högt utvecklad och innehåller många celltyper, inklusive glutamaterga nervceller som spelar en viktig roll i inlärning, minne och kognitiv funktion 22,23. Det första steget vid generering av glutamaterga neuroner i odling är att ange telencephalic progenitorceller. Yoshiki Sasai grupp rapporterade först riktade differentiering av telencephalic prekursorer från mus ekonomiska och sociala råd (mESCs) med en serumfritt suspensioN-kulturen i närvaro av DKK1 (som inhiberar Wnt signalering) liksom LeftyA (som inhiberar nodal signalering) 24. Därefter har flera grupper inklusive vår rapporterade också specifikationen av telencephalic prekursorer från mänskliga PSC i serumfritt medium 25-27. Den generation telencephalic prekursorer från mänskliga PSC kräver inte användning av exogena morfogener och effektivitet i att generera dessa prekursorer är mycket högre än den från mESCs 26,27. Här har ett kemiskt definierat system för neural induktion som väl grundades av Zhang grupp 7 har beskrivits. Utan tillsats av exogena caudalizing faktorer genererar detta protokoll effektivt telencephalic prekursorer från mänskliga PSC 27. Dessa stamfäder kan sedan delas in i dorsala eller ventrala föregångare genom att reglera signalering av Wnt-och Sonic hedgehog (SHH). Den dorsala stamfäder vidare kan differentiera till glutamaterga neuron efficiently 27. Dessutom fungerar detta protokoll också väl för generering av glutamaterga neuroner från humant iPSCs 28, som möjliggör generering av patientspecifika neuroner som kan utnyttjas för att undersöka verkningsmekanismen samt potentiella terapier för en stor mängd sjukdomar . Dessutom ger vårt system också en plattform för att undersöka möjligheten att utarbeta och specifikation av olika neuronala typer i telencephalon.

Protocol

1. Generering av Human Cell pluripotenta stamceller aggregat (D1-D4) Humana pluripotenta stamceller odlas på mus embryonala fibroblast (MEF) matare i närvaro av hESC medium kompletterat med basisk fibroblasttillväxtfaktor (bFGF, 4 ng / ml). Efter 5-7 dagar i odling, när kolonierna är stora men fortfarande differentierade, är de redo för nästa steg. Enzymlösningen bör först beredas. I en 50 ml rör, upplösa dispas (eller kollagenas) vid en 1 mg / ml koncentration i DMEM/F12-medium. Efters…

Representative Results

Här, till ett protokoll differentiera mänskliga PSC till telencephalic glutamaterga nervceller genom flera viktiga steg: bildandet av PSC aggregat har induktion av neuroepitelceller, generering av telencephalic föregångare, och terminal differentiering av dessa stamfäder till telencephalic neuroner (figur 1) beskrivits. Detta system är robust och effektiv vid generering av telencephalic progenitorer och glutamaterga neuroner. Som ett exempel (figur 2), utan tillsats av caudalizing…

Discussion

Det finns flera viktiga steg under den neurala differentiering processen. Det är viktigt att säkerställa att de humana PSC är pluripotenta eftersom annars cellerna kan redan vara förspänd mot att bli en icke-neuronal härstamning. Detta kan bekräftas genom färgning av humana PSC med antikroppar mot pluripotensbestämmande markörer såsom Oct4, Sox2, nanog, och Tra-1-60 1-3. Om de mänskliga PSC inte fäster mycket väl efter passage dem, kan ROCK-hämmare (Y27632) läggas att hjälpa till. För dem s…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Dr Y. Sasai för generöst ge FOXG1 antikroppen. Detta arbete stöddes av Connecticut Stem Grants Cell Research (08-SCB-UCHC- 022 och 11-SCB24) och spastisk paraplegi Foundation.

Materials

Reagent Supplier Catalog #
Dulbecco’s modified eagle medium with F12 nutrient mixture (DMEM/F12) Gibco 11330-032
Knockout Serum Replacer Gibco 10828-028
L-glutamine (200 mM) Gibco 25030
Non Essential Amino Acids Gibco 1140-050
2-Mercaptoethanol (14.3 M) Sigma M-7522
Neurobasal medium Gibco 21103-049
N2 Gibco 17502-048
B27 Gibco 12587-010
Heparin Sigma H3149
Poly-L-ornithine hydrobromide (polyornithine) Sigma 116K5103
Laminin (human) Sigma L-6274
Laminin (mouse) Invitrogen 23017-015
FBS Gemini 100-106
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A-7906
Dispase Gibco 17105-041
Collagenase Invitrogen 17104-019
Accutase Innovative Cell Technologies AT104
ROCK Inhibitor Stemgent 04-0012
SB431542 Stemgent 04-0010
Dorsomorphin Stemgent 04-0024
Fibroblast growth factor 2 (FGF2, bFGF) Invitrogen 13256-029
Trypsin inhibitor Gibco 17075
0.1% gelatin Millipore ES-006-B
Foxg1 antibody Dr. Y. Sasai  
Hoxb4 antibody (1:50) Developmental Studies Hybridoma Bank I12
Pax6 antibody (1:5000) Developmental Studies Hybridoma Bank PAX6
Nkx2.1 antibody (1:200) Chemicon MAB5460
Tbr1 antibody (1:2000) Chemicon AB9616
vGLUT1 antibody (1:100) Synaptic Systems 135302
Brain derived neurotrophic factor (BDNF) PrepoTech Inc. 450-02
Glial derived neurotrophic factor (GDNF) PrepoTech Inc. 450-10
Insulin growth factor 1 (IGF1) PrepoTech Inc. 100-11
Cyclic AMP (cAMP) Sigma D-0260
Sonic hedgehog (SHH) R&D 1845-SH
50 ml tubes Becton Dickinson (BD) 352098
15 ml tubes BD 352097
6 well plates BD 353046
24 well plates BD 353047
T25 flasks (untreated) BD 353009
T75 flasks (untreated) BD 353133
Coverslips Chemiglass Life Sciences 1760-012
6 cm Petri dishes BD 353004
9” glass pipetes Fisher 13-678-20D
Steriflip filters (0.22 μM) Millipore SCGP00525
Stericup filters 1,000 ml (0.22 μM) Millipore SCGPU10RE
Phase contrast microscope (Observer A1) Zeiss R2625
Carbon dioxide incubator (Hera Cell 150) Thermo Electron Corporation  
Biosafety hood (Sterilgard III Advance) The Baker Company  
Centrifuge (5702 R) Eppendorf  

Referências

  1. Takahashi, K., Tanabe, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  2. Thomson, J. A., Itskovitz-Eldor, J., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
  3. Yu, J., Vodyanik, M. A., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  4. Jessell, T. M. Neuronal specification in the spinal cord: inductive signals and transcriptional codes. Nat. Rev. Genet. 1, 20-29 (1038).
  5. Wilson, S. I., Edlund, T. Neural induction: toward a unifying mechanism. Nat. Neurosci. 4, 1161-1168 (2001).
  6. Reubinoff, B. E., Itsykson, P., et al. Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 19, 1134-1140 (2001).
  7. Zhang, S. C., Wernig, M., Duncan, I. D., Brustle, O., Thomson, J. A. In vitro differentiation of transplantable neural precursors from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 19, 1129-1133 (2001).
  8. Hu, B. Y., Weick, J. P., et al. Neural differentiation of human induced pluripotent stem cells follows developmental principles but with variable potency. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 4335-4340 (2010).
  9. Singh Roy, N., Nakano, T., et al. Enhancer-specified GFP-based FACS purification of human spinal motor neurons from embryonic stem cells. Exp. Neurol. 196, 224-234 (2005).
  10. Lee, H., Shamy, G. A., et al. Directed differentiation and transplantation of human embryonic stem cell-derived motoneurons. Stem Cells. 25, 1931-1939 (2007).
  11. Boulting, G. L., Kiskinis, E., et al. A functionally characterized test set of human induced pluripotent stem cells. Nat. Biotechnol. 29, 279-286 (2011).
  12. Li, X. J., Du, Z. W., et al. Specification of motoneurons from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 23, 215-221 (2005).
  13. Perrier, A. L., Tabar, V., et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 12543-12548 (2004).
  14. Roy, N. S., Cleren, C., et al. Functional engraftment of human ES cell-derived dopaminergic neurons enriched by coculture with telomerase-immortalized midbrain astrocytes. Nat Med. 12, 1259-1268 (2006).
  15. Yan, Y., Yang, D., et al. Directed differentiation of dopaminergic neuronal subtypes from human embryonic stem cells. Stem Cells. 23, 781-790 (2005).
  16. Meyer, J. S., Shearer, R. L., et al. Modeling early retinal development with human embryonic and induced pluripotent stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 16698-16703 (2009).
  17. Osakada, F., Ikeda, H., et al. Toward the generation of rod and cone photoreceptors from mouse, monkey and human embryonic stem cells. Nat Biotechnol. 26, 215-224 (2008).
  18. Carpenter, M. K., Inokuma, M. S., et al. Enrichment of neurons and neural precursors from human embryonic stem cells. Exp. Neurol. 172, 383-397 (2001).
  19. Chambers, S. M., Fasano, C. A., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nat. Biotechnol. 27, 275-280 (2009).
  20. Chambers, S. M., Qi, Y., et al. Combined small-molecule inhibition accelerates developmental timing and converts human pluripotent stem cells into nociceptors. Nat. Biotechnol. 30, 715-720 (2012).
  21. Kawasaki, H., Mizuseki, K., et al. Induction of midbrain dopaminergic neurons from ES cells by stromal cell-derived inducing activity. Neuron. 28, 31-40 (2000).
  22. Rubenstein, J. L., Beachy, P. A. Patterning of the embryonic forebrain. Curr. Opin. Neurobiol. 8, 18-26 (1998).
  23. Hevner, R. F., Hodge, R. D., Daza, R. A., Englund, C. Transcription factors in glutamatergic neurogenesis: conserved programs in neocortex, cerebellum, and adult hippocampus. Neurosci. Res. 55, 223-233 (2006).
  24. Watanabe, K., Kamiya, D., et al. Directed differentiation of telencephalic precursors from embryonic stem cells. Nat. Neurosci. 8, 288-296 (2005).
  25. Watanabe, K., Ueno, M., et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 25, 681-686 (2007).
  26. Pankratz, M. T., Li, X. J., et al. Directed neural differentiation of human embryonic stem cells via an obligated primitive anterior stage. Stem Cells. 25, 1511-1520 (2007).
  27. Li, X. J., Zhang, X., et al. Coordination of sonic hedgehog and Wnt signaling determines ventral and dorsal telencephalic neuron types from human embryonic stem cells. Development. 136, 4055-4063 (2009).
  28. Zeng, H., Guo, M., et al. Specification of region-specific neurons including forebrain glutamatergic neurons from human induced pluripotent stem cells. PLoS One. 5, e11853 (2010).
  29. Kim, D. S., Lee, J. S., et al. Robust enhancement of neural differentiation from human ES and iPS cells regardless of their innate difference in differentiation propensity. Stem Cell Rev. 6, 270-281 (2010).
  30. Zhang, X., Huang, C. T., et al. Pax6 is a human neuroectoderm cell fate determinant. Cell Stem Cell. 7, 90-100 (2010).
  31. Stern, C. D. Initial patterning of the central nervous system: how many organizers. Nat. Rev. Neurosci. 2, 92-98 (2001).
  32. Ma, L., Hu, B., et al. Human embryonic stem cell-derived GABA neurons correct locomotion deficits in quinolinic acid-lesioned mice. Cell Stem Cell. 10, 455-464 (2012).
  33. Li, W., Wei, W., et al. Generation of rat and human induced pluripotent stem cells by combining genetic reprogramming and chemical inhibitors. Cell Stem Cell. 4, 16-19 (2009).
  34. Lowry, W. E., Richter, L., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells from dermal fibroblasts. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 2883-2888 (2008).
  35. Dimos, J. T., Rodolfa, K. T., et al. Induced pluripotent stem cells generated from patients with ALS can be differentiated into motor neurons. Science. 321, 1218-1221 (2008).
  36. Ebert, A. D., Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cells from a spinal muscular atrophy patient. Nature. 457, 277-280 (2009).
  37. Lee, G., Papapetrou, E. P., et al. Modelling pathogenesis and treatment of familial dysautonomia using patient-specific iPSCs. Nature. 461, 402-406 (2009).
  38. Park, I. H., Arora, N., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134, 877-886 (2008).
  39. Chamberlain, S. J., Chen, P. F., et al. Induced pluripotent stem cell models of the genomic imprinting disorders Angelman and Prader-Willi syndromes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 17668-17673 (2010).
  40. Kiskinis, E., Eggan, K. Progress toward the clinical application of patient-specific pluripotent stem cells. J. Clin. Invest. 120, 51-59 (2010).
  41. Koch, P., Tamboli, I. Y., et al. Presenilin-1 L166P mutant human pluripotent stem cell-derived neurons exhibit partial loss of gamma-secretase activity in endogenous amyloid-beta generation. Am. J. Pathol. 180, 2404-2416 (2012).
  42. Walsh, R. M., Hochedlinger, K. Modeling Rett syndrome with stem cells. Cell. 143, 499-500 (2010).
  43. Egawa, N., Kitaoka, S., et al. Drug Screening for ALS Using Patient-Specific Induced Pluripotent Stem Cells. Sci. Transl. Med. 4, (2012).
  44. Kola, I., Landis, J. Can the pharmaceutical industry reduce attrition rates. Nature Reviews Drug Discovery. 3, 711-716 (2004).
check_url/pt/50321?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Boisvert, E. M., Denton, K., Lei, L., Li, X. The Specification of Telencephalic Glutamatergic Neurons from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (74), e50321, doi:10.3791/50321 (2013).

View Video