Denne prosedyren gir telencephalic nevroner ved å gå gjennom sjekkpunkter som er lik de som ble observert i løpet av menneskelig utvikling. Cellene tillates å spontant skille, er utsatt for forhold som presse dem mot den nevrale avstamning, er isolert, og er belagt på dekkglass for å tillate terminal differensiering og modning.
Her har en trinnvis prosedyre for effektivt å generere telencephalic glutamatergic nevroner fra menneskelige pluripotente stamceller (PSCs) blitt beskrevet. Differensieringen prosessen initiert ved å bryte menneskelige PSCs inn klumper som runder opp til å danne aggregater når cellene er plassert i en suspensjon kultur. Aggregatene dyrkes så i hESC medium fra dag 1-4 for å tillate spontan differensiering. I løpet av denne tid, vil cellene har evne til å bli en av de tre bakterie lag. Fra dager 5-8, blir cellene plassert i et nevralt induksjon middels å presse dem inn i den nevrale avstamning. Rundt dag 8, blir cellene tillatt å feste på 6 brønners plater og skille hvorav tid neuroepithelial celler form. Disse neuroepithelial celler kan isoleres ved dag 17. Cellene kan deretter holdes så neurospheres før de er klare til å bli belagt på dekkglass. Ved hjelp av en enkel medium uten caudalizing faktorer, neuroepithelial celler er specified til telencephalic forløpere, som deretter kan ytterligere differensiert i dorsal telencephalic forfedre og glutamatergic nevroner effektivt. Samlet gir systemet vårt et verktøy for å generere menneskelige glutamatergic nevroner for forskere å studere utviklingen av disse nevronene og sykdommer som påvirker dem.
Menneskelige pluripotente stamceller (PSCs), inkludert både menneskelige embryonale stamceller (hESCs) og indusert pluripotent stamceller (iPSCs), har kapasitet til å generere hver celletype i kroppen, inkludert nerveceller 1-3. Rettet differensiering av ulike nevrale subtyper fra menneskelige PSCs har nøkkelen for anvendelse av disse cellene i regenerativ medisin. Den generasjonen av funksjonelle nevrale subtyper under utvikling er en kompleks prosess som involverer induksjon av nevrale avstamning, spesifikasjonen av regionale stamfedre langs Rostro-caudal aksen, og differensiering av post-mitotiske Nevron typer fra de regionale forfedre 4,5. Starten i 2001, har flere systemer er etablert for å generere nevrale avstamning fra hESCs, som har gitt en plattform for den påfølgende generasjonen av nevrale subtyper 6,7. Basert på utviklingsmessige prinsipper, flere neuron som for eksempel spinal motor 8-12 nevroner, midbrain dopaminergic nevroner 13-15, og nevrale retinal celler 16,17 er effektivt spesifisert fra menneskelige PSCs. Dette ble gjort ved å bruke kritiske morphogens som er viktige for spesifisering av disse neuron typer under in vivo utvikling. Andre protokoller er også utviklet for å fremme differensieringen av hESCs i nevroner ved hjelp av enten ytterligere faktorer 18-20 for eksempel små molekyler, eller ved ko-dyrking med andre celletyper å bidra til å fremme differensiering 21.
Den menneskelige neocortex er høyt utviklet og inneholder mange celletyper, inkludert glutamatergic nevroner som spiller en viktig rolle i læring, hukommelse og kognitiv funksjon 22,23. Det første trinnet i å generere glutamatergic nevroner i kultur er å spesifisere telencephalic stamceller. Yoshiki Sasai gruppe først rapporterte rettet differensiering av telencephalic forløpere fra mus ESCs (mESCs) med en serum-free suspension kulturen i nærvær av NOK1 (som hemmer Wnt signalering) samt LeftyA (som hemmer nodal signalering) 24. Senere har flere grupper inkludert vår også rapportert spesifisering av telencephalic forløpere fra menneskelige PSCs i serum fritt medium 25-27. Generering av telencephalic forløpere fra menneskelige PSCs krever ikke bruk av eksogene morphogens og effektiviteten i å generere disse forløperne er mye høyere enn det fra mESCs 26,27. Her har et kjemisk definert system for neural induksjon som var godt etablert av Zhang gruppe 7 blitt beskrevet. Uten tilsetning av eksogene caudalizing faktorer, genererer denne protokollen effektivt telencephalic forløpere fra menneskelige PSCs 27. Disse stamfedre kan deretter differensiert i dorsal eller ventral stamfedre ved å regulere signalering av Wnt og sonic hedgehog (ssh). De dorsale stamfedre kan videre skille ut glutamatergic nevroner efficiently 27. I tillegg fungerer denne protokollen også godt for generering av glutamatergic nevroner fra menneske 28 iPSCs, som gjør det mulig for generering av pasient-spesifikke nevroner som kan benyttes til å utforske virkningsmekanismen så vel som potensielle terapi for et stort utvalg av sykdommer . Dessuten gir systemet vårt også en plattform for å utforske utvikling og spesifisering av ulike nevrale typer i telencephalon.
Det er flere kritiske trinnene under nevrale differensiering prosessen. Det er viktig å sikre at de menneskelige PSCs er pluripotent fordi ellers cellene kan allerede være forutinntatt mot å bli en ikke-nevronale avstamning. Dette kan bekreftes ved farging menneskelige PSCs med antistoffer mot pluripotency markører som Oct4, Sox2, Nanog, og Tra-1-60 1-3. Hvis de menneskelige PSCs ikke feste veldig godt etter passaging dem, kan ROCK inhibitor (Y27632) legges til hjelp. For de som har vanskeligheter med å …
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne ønsker å takke dr. Y. Sasai for sjenerøst gi FOXG1 antistoff. Dette arbeidet ble støttet av Connecticut stamcelleforskning Grants (08-SCB-UCHC- 022 og 11-SCB24) og spastisk paraplegi Foundation.
Reagent | Supplier | Catalog # |
Dulbecco’s modified eagle medium with F12 nutrient mixture (DMEM/F12) | Gibco | 11330-032 |
Knockout Serum Replacer | Gibco | 10828-028 |
L-glutamine (200 mM) | Gibco | 25030 |
Non Essential Amino Acids | Gibco | 1140-050 |
2-Mercaptoethanol (14.3 M) | Sigma | M-7522 |
Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 |
N2 | Gibco | 17502-048 |
B27 | Gibco | 12587-010 |
Heparin | Sigma | H3149 |
Poly-L-ornithine hydrobromide (polyornithine) | Sigma | 116K5103 |
Laminin (human) | Sigma | L-6274 |
Laminin (mouse) | Invitrogen | 23017-015 |
FBS | Gemini | 100-106 |
Bovine serum albumin (BSA) | Sigma | A-7906 |
Dispase | Gibco | 17105-041 |
Collagenase | Invitrogen | 17104-019 |
Accutase | Innovative Cell Technologies | AT104 |
ROCK Inhibitor | Stemgent | 04-0012 |
SB431542 | Stemgent | 04-0010 |
Dorsomorphin | Stemgent | 04-0024 |
Fibroblast growth factor 2 (FGF2, bFGF) | Invitrogen | 13256-029 |
Trypsin inhibitor | Gibco | 17075 |
0.1% gelatin | Millipore | ES-006-B |
Foxg1 antibody | Dr. Y. Sasai | |
Hoxb4 antibody (1:50) | Developmental Studies Hybridoma Bank | I12 |
Pax6 antibody (1:5000) | Developmental Studies Hybridoma Bank | PAX6 |
Nkx2.1 antibody (1:200) | Chemicon | MAB5460 |
Tbr1 antibody (1:2000) | Chemicon | AB9616 |
vGLUT1 antibody (1:100) | Synaptic Systems | 135302 |
Brain derived neurotrophic factor (BDNF) | PrepoTech Inc. | 450-02 |
Glial derived neurotrophic factor (GDNF) | PrepoTech Inc. | 450-10 |
Insulin growth factor 1 (IGF1) | PrepoTech Inc. | 100-11 |
Cyclic AMP (cAMP) | Sigma | D-0260 |
Sonic hedgehog (SHH) | R&D | 1845-SH |
50 ml tubes | Becton Dickinson (BD) | 352098 |
15 ml tubes | BD | 352097 |
6 well plates | BD | 353046 |
24 well plates | BD | 353047 |
T25 flasks (untreated) | BD | 353009 |
T75 flasks (untreated) | BD | 353133 |
Coverslips | Chemiglass Life Sciences | 1760-012 |
6 cm Petri dishes | BD | 353004 |
9” glass pipetes | Fisher | 13-678-20D |
Steriflip filters (0.22 μM) | Millipore | SCGP00525 |
Stericup filters 1,000 ml (0.22 μM) | Millipore | SCGPU10RE |
Phase contrast microscope (Observer A1) | Zeiss | R2625 |
Carbon dioxide incubator (Hera Cell 150) | Thermo Electron Corporation | |
Biosafety hood (Sterilgard III Advance) | The Baker Company | |
Centrifuge (5702 R) | Eppendorf |