CD4+ Regulatory T cells are potent immune-modulators and serve important functions in immune homeostasis. The paucity of these cells in peripheral blood makes functional studies challenging, specifically in the context of HIV-1-infection. We here describe a method to isolate and expand functional CD4+ Tregs from peripheral blood from HIV-1-infected individuals.
CD4 + regulatoriske T-celler (Tregs) er potente immunmodulatorer og tjener en viktig funksjon i menneskers immun homeostase. Nedbryting av Tregs har ført til målbare økninger i antigen-spesifikke T-celle-responser i vaksinesammensetninger innstillinger for kreft og infeksiøse patogener. Imidlertid forblir deres rolle i HIV-1 immuno-patogenese kontroversielt, da de kan enten tjene til å undertrykke skadelige HIV-1-assosiert aktivering av immunsystemet og dermed bremse HIV-1 sykdomsprogresjon eller alternativt undertrykke HIV-1-spesifikk immunitet, og derved fremme virus spre seg. Forståelse og modulerende Treg funksjon i forbindelse med HIV-1 kan føre til potensielle nye strategier for immunterapi eller HIV-vaksiner. Men viktige åpne spørsmål forbli på sin rolle i forbindelse med HIV-1-infeksjon, som må nøye studert.
Representerer ca 5% av menneskelige CD4 + T celler i perifert blod, studere Treg befolkningen har vist seg å være vanskelig, especially hos HIV-1-infiserte individer der HIV-1-assosiert CD4 T celler og med at Treg uttømming oppstår. Karakteriseringen av regulatoriske T-celler hos individer med fremskredet HIV-1-sykdom eller vevsprøver, hvor bare meget små, biologiske prøver kan oppnås, er derfor svært utfordrende. Vi foreslår en teknisk løsning for å overvinne disse begrensningene ved hjelp av isolasjon og utvidelse av Tregs fra HIV-1-positive individer.
Her beskriver vi en enkel og robust metode for å lykkes utvide Tregs isolert fra HIV-1-infiserte individer in vitro. Flow-sorteres CD3 + CD4 + CD25 + CD127 lav Tregs ble stimulert med anti-CD3/anti-CD28 belagte perler og dyrket i nærvær av IL-2. Den utvidede Tregs uttrykte høye nivåer av foxp3, CTLA4 og HELIOS sammenlignet med konvensjonelle T-celler og ble vist seg å være svært undertrykkende. Enklere tilgang til et stort antall Tregs vil tillate forskere å ta important spørsmål om sin rolle i HIV-1 immunpatogenese. Vi mener å svare på disse spørsmålene kan gi nyttig innsikt for utvikling av en effektiv HIV-1 vaksine.
Med mer enn 34 millioner mennesker som lever med HIV / AIDS på verdensbasis og anslagsvis 2,5 millioner mennesker smittet i 2011, behovet for en effektiv HIV-vaksine for å dempe den globale HIV-epidemien er fortsatt viktig. Men til tross for tre tiår med intens forskningsinnsats, har HIV-1 vaksine effektstudier hittil resultert i bare beskjeden beskyttelse 1-3 og korrelater til beskyttende immunitet forbli dårlig forstått. Å belyse naturen av immunresponsen nødvendig for beskyttelse er viktig for den strategiske utforming av en effektiv HIV-1-vaksine og andre immunterapeutiske strategier rettet mot HIV-1 infeksjon.
Naturlig CD4 + regulatoriske T-celler (Tregs) er kritiske til vedlikehold av immunceller homeostase ved å kontrollere overdreven aktivering av immunsystemet, og dermed begrense immun-mediert vevsskade. Men de kan også undertrykke immunreaksjoner mot patogener og hindre deres klaring. Kreft og HepaTitis B-vaksine studier har vist at å redusere aktiviteten til Tregs kan forbedre vaksineresponsen og antigen-spesifikk immunitet mot virus 4-7. Men i forbindelse med HIV-1-infeksjon, forblir nøyaktige virkningen av regulatoriske T-celler ufullstendig forstått. Tregs ble vist å redusere virusreplikasjon i aktiverte T-celler 8 og muligens påvirke immunaktivering ni. De ble også vist seg å undertrykke HIV-1-spesifikk immunrespons, som kan ha negative utfall for sykdomsutvikling 10,11. Således, før de blir i stand til å modulere Treg aktivitet for å øke effekten av et HIV-1-vaksine, er det viktig å få ytterligere innsikt i sin funksjon i denne sammenheng sykdommen.
Menneskelige CD4 + regulatoriske T-celler er en relativt knappe celle befolkningen, som representerer ca 5% av CD4 + T celler i perifert blod, og deres absolutte tall ytterligere nedgang med HIV-tilknyttede CD4 + T-celle uttømming 12 </ Sup>. Aktuelle analyser for å vurdere Treg funksjon, for eksempel T-celle spredning analyser med Treg co-kultur, bruker relativt store celle tall 12. Derfor karakterisere funksjon og spesifisitet av regulatoriske T-celler hos personer med fremskredet HIV-1 sykdommen har vært utfordrende, til tross for deres betydning for HIV patogenese.
Den ex vivo isolasjon og utvidelse av Tregs fra HIV-1 pasienter kunne representere en løsning for å overvinne noen av disse begrensningene. Her beskriver vi en enkel og robust protokoll for å utvide funksjonell Tregs avledet fra HIV-1-infiserte individer i vitro, vi videre forklare hvordan du fenotype dem og teste deres undertrykkende funksjon ved hjelp flowcytometrisk analyser. Vi tror denne protokollen vil lette tilgangen til Tregs og hjelp til å forstå sin rolle i HIV-1 sykdomsutvikling.
Using the protocol described above, Tregs can be successfully isolated and expanded from HIV-1-infected individuals in vitro. Expanded Tregs express high levels of FOXP3, CTLA4 and HELIOS, are highly suppressive and display a highly demethylated Treg-Specific Demethylation Region (TSDR) locus of the FOXP3 gene (data not shown) 15, suggesting true origin from the regulatory T cell lineage, as opposed to activation-induced transient FOXP3 upregulation. Deep sequencing demonstrated that the TCR repertoir…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported in part by research funding from the Elisabeth Glaser Pediatric AIDS Foundation (Pediatric HIV Vaccine Program Award MV-00-9-900-1429-0-00 to MMA), MGH/ECOR (Physician Scientist Development Award to MMA), NIH NIAID (KO8219 AI074405 and AI074405-03S1 to MMA), and the Harvard University Center for AIDS Research (CFAR), an NIH funded program (P30 AI060354) which is supported by the following NIH Co-Funding and Participating Institutes and Centers: NIAID, NCI, NICHD, NHLBI, NIDA, NIMH, NIA, FIC, and OAR. These studies were furthermore supported by the Bill & Melinda Gates Foundation and the Terry and Susan Ragon Foundation.
Reagents | |||
RosetteSep Human CD4+ T Cell Enrichment Cocktail | Stemcells technologies | 15062 | |
PBS | Sigma | D8537 | |
FBS | Sigma | F4135 | |
Histopaque | Sigma | H8889 | |
Anti-CD3-PECy7 | BD Pharmingen | 557851 | |
Anti-CD4-FITC | eBioscience | 11-0049-42 | |
Anti-CD25-APC | eBioscience | 17-0259-42 | |
Anti-CD127-PE | BD Pharmingen | 557938 | |
Round-Bottom tube with 35 μm a nylon mesh | BD Falcon | 352235 | |
X-VIVO 15 | Lonza | 04-418Q | |
Penicillin/Streptomycin | Mediatech | 30-001-Cl | |
Human Serum | Gemini Bio-Products | 100-512 | |
Human T-activator CD3/CD28 | Life Technologies | 111.31D | |
IL-2 | NIH Aids Research & Reference Reagent Program | 136 | |
LIVE/DEAD Fixable Violet Dead Cell Stain Kit | Life technologies | L34955 | |
Anti-CD4-qdot-655 | Life Technologies | Q10007 | |
Anti-CD25-PECy5 | eBiosciences | 15-0259-42 | |
Foxp3 / Transcription Factor Staining Buffer Set | eBiosciences | 00-5523-00 | |
Anti-FOXP3-PE | eBiosciences | 12-4776-42 | |
Anti-HELIOS-FITC | Biolegend | 137204 | |
Anti-CTLA4-APC | BD Pharmingen | 555855 | |
CellTrace Violet Cell Proliferation Kit | Life Technologies | C34557 | |
Vybrant CFDA SE Cell Tracer Kit | Life Technologies | V12883 | |
HEPES | Mediatech | 25-060-Cl | |
Treg Suppression inspector | Miltenyi Biotec | 130-092-909 | |
Anti-CD4-APC | BD Pharmingen | 340443 | |
Anti-CD8-AF700 | BD Pharmingen | 557945 | |
RPMI 1640 | Sigma | R0883 | |
Glutamine | Mediatech | 25-002-Cl | |
Materials | |||
BD Vacutainer Blood Collection Tube w/ ACID CITRATE DEXTROSE (ACD) | Becton, Dickinson and Company (BD) | 364606 | |
FACSAria IIu Cell Sorter | BD Biosciences | – | |
LSR II Flow Cytometer | BD Biosciences | – | |
FlowJo | Tree Star | v887 |