パイエル板の細胞の特定の亜集団(PPS)、腸管関連リンパ組織の主要な誘導部位の免疫学的機能を理解する上で関心が高まっている。ここでは、フローサイトメトリー解析と免疫染色のためのPPの凍結切片のための単一細胞調製物を調製するためのPPのパラレルプロトコルの概要を説明します。
パイエル板(PPS)は腸管関連リンパ組織(GALT)の不可欠な構成要素であり、腸の免疫監視と恒常性に中心的な役割を果たします。腸管腔における粒子状抗原や微生物を連続濾胞関連上皮にPP M細胞によってサンプリング(FAE)と樹状細胞(DC)、マクロファージ、リンパ球の基盤となるネットワークに輸送される。この記事では、我々は、マウスのPPは、(i)単一細胞懸濁物に解離され、フローサイトメトリーにかけ、(ii)の凍結セクショニングと免疫染色のために準備されているプロトコルについて説明します。フローサイトメトリーのために、PPは機械的に解離され、次に上皮細胞と大きな破片の自由な単一の細胞懸濁液を生成するために70μmの膜を通して濾過した。 20から25 PPS(4匹から)以降では、この度は迅速かつ再現性のある方法は、> 90%の細胞生存率> 2.5×10 6細胞集団が得られます。凍結セクショニングのため、新鮮なLY孤立PPはcryomicrotomeを使用して、最適切断温度(OCT)培地、液体窒素で瞬間凍結し、切片に浸漬される。組織切片(5-12μm)は、アセトンやメタノールで固定し、空気乾燥され、その後免疫標識を行った。
パイエル板(PPS)は、ヒトおよびマウスの小腸( 図1)を全体に存在する組織化されたリンパ濾胞の巨視的凝集体であると粘膜免疫応答は食物抗原、共生細菌、病原微生物、及び経口ワクチンに対して開始されるときの主要な部位を構成1-4。このような腸間膜リンパ節など他の末梢リンパ組織とは異なり、PPは、輸入リンパ管を欠いている。このように、PPSに適応免疫応答は、腸管腔に由来する抗原に応答して駆動されています。管腔の抗原のサンプリングは、腸およびM細胞として知られている抗原のサンプリングセルの両方で構成されている濾胞関連上皮(FAE)によって達成される。 FAEの下に、サブ上皮ドーム(SED)の領域では、マクロファージ、B細胞、CD4 + T細胞は5月9日と混ざり樹状細胞(DC)のネットワークがあります。各PPリンパfolliclの中核にeは、濾胞樹状細胞(FDCS)とT細胞が豊富な濾胞ゾーンが隣接のB細胞が豊富な中央の胚中心である。のIgA + B細胞plasmablastsとCD4 +エフェクターとメモリセルの開発にPPSの結果による抗原サンプリングその種子周囲の粘膜固有層および粘膜侵略に広い範囲への耐性を提供します。
PPSの抗原サンプリング、処理、プレゼンテーションに関連する複雑な免疫学的事象を解剖すると、PP細胞が腸管粘膜における総リンパ球様細胞のごく一部を構成することを考えると、大変な作業です。この環境における細胞の in vitro での特性評価で支援するために、我々は、フローサイトメトリーおよび機能解析だけでなく、免疫蛍光顕微鏡および免疫組織学のための凍結切片を調製するためのPPのプロトコルのために全マウスのPP細胞を調製するためのプロトコルを提供する。覚書の分離、特性評価、および免疫染色のために、我々のプロトコル電子PPの細胞は、これらの技術を5,6,9-11を引用し 、25年以上さかのぼる多くの参照があるという事実によって証明されるように、 それ自体は小説ではありません。むしろ、我々のプロトコルは、初めてPPを集める研究者のための合理化された(とビジュアル)メソッドを提供します。私たちが説明する技術を容易に習得し、容易に> 90%の細胞の生存率を持つ細胞を大量に産出されています。凍結セクショニングプロトコルは、理想的には、免疫蛍光染色し、共焦点イメージングに適した再現性の高い連続切片が得られます。さらに、我々のプロトコルは、2つの他の最近のJoveの記事を補完します。最初は、福田らは、12のPP M細胞による病原細菌の取り込みを評価するためにライゲート回腸ループアッセイの使用について説明します。もう一つは、Geemらによる、マウスの腸粘膜からの樹状細胞やマクロファージの単離および特性を説明していますが、明示的に分析13からPPを除外。
この記事では、我々は免疫染色、フローサイトメトリーおよび機能解析および凍結切片のための単一細胞調製物を調製するためのPPのパラレルプロトコルを提供してきました。どちらの方法でも、フローサイトメーターとクライオスタットが利用可能である限り、再現性の高い、容易にアクセス可能です。初めての調査官のためには、脾臓と比較すると、PPSからの全細胞収量が比較的貧弱で?…
The authors have nothing to disclose.
我々は、パラフィン切片を調製するための細胞分析とヘレン·ジョンソン(ワズワースセンター動物組織病理コア)を支援するためのRenjie·ソング(ウォッズワースセンターのフローサイトメトリーコア)に感謝。我々は、共焦点顕微鏡と画像収集の支援については博士リチャードA·コール(ウォッズワースセンター光顕微鏡コア)に感謝。我々は、アニメーションの支援についてはアンディベントレー(ウォッズワースセンターの写真とイラスト)承認したいと思います。
MDJは、ライフサイエンス研究財団、ハワードヒューズ医学研究所(HHMI)フェローシップでサポートされています。 SAはワズワースセンター·ヘルスリサーチ株式会社学内ポスドクでサポートされています。この作品は、NIHの助成HD061916とGM082978によって部分的にサポートされていました。
Item | Company | Cat. # | Comments (optional) |
OCT Compound | Tissue-Tek | 4583 | |
7x7x5 mm Base Molds | Fisherbrand | 22-363-552 | |
ImmEdge Pen | Vector Labs | H-4000 | |
Superfrost Plus Slides | Thermo Scientific | 4951 | |
Edge Rite Blade | Thermo Scientific | 4280L | |
Anti-Mouse CD11c-PE | eBioscience | 17-0114-82 | |
Anti-Mouse CD45R/B220-APC | BD Pharmigen | 553092 | |
Anti-Mouse CD3-FITC | BD Pharmigen | 561798 | |
Anti-Mouse CD4-PE | BD Pharmigen | 553652 | |
Anti- Mouse CD8-PE | BD Pharmigen | 553032 | |
Anti-Mouse CD19-PercP | BioLegend | 115531 | |
Hank’s balanced salt solution (HBSS) without phenol red | Fisher Scientific | 14175-079 | |
70 μm cell strainer | BD Falcon | 352350 | |
Spleen Dissociation Medium | Stem Cell Technologies | 7915 | |
Goat serum | Invitrogen | 16210-072 | |
Fc Block | ATCC 2.4.G2 | HB-197 | Supes obtained from cell line 2.4.G2 |
Curved Scissor | F.S.T | 14061-09 | |
Cryostat | Leica | 3050S | |
FACS Calibur | BD | ||
Countess Cell Counter | Invitrogen | ||
Hematoxylin | Richard Allan | 7211 | |
Eosin | Richard Allan | 71304 | |
Formalin | Starplex Scientific | 3661 | |
Table 1. Reagents and equipment used in this study. |