שיטה לבידוד של לויקוציטים הדלקתי חסיד מכלי דם במוח<em> Plasmodium berghei</em> עכברי אנקה נגוע מתוארים. השיטה מאפשרת כימות, כמו גם אפיון הפנוטיפי של לויקוציטים הבודד לאחר ההכתמה עם נוגדני ניאון וניתוח שלאחר מכן על ידי cytometry זרימה.
אנו מתארים שיטה לבידוד ואפיון של תאי דלקת חסיד מכלי דם במוח של פ עכברי berghei אנקה נגוע. זיהום של-זני עכברים רגישים עם תוצאות מתח טפיל זה באינדוקציה של קדחת מוח ניסיונית, תסמונת נוירולוגית שחוזר על היבטים חשובים מסוימים של מלריה חמורה Plasmodium falciparum בתיווך ב1,2 בני האדם. צורות בוגרות של מלריה בדם שלב לבטא חלבונים טפילים על פני השטח של כדורי האדום הנגוע, המאפשר להם להיקשר לתאי האנדותל של כלי דם. תהליך זה גורם לחסימות בזרימת דם, וכתוצאה מהיפוקסיה ושטפי דם 3 וגם ממגר את הגיוס של לויקוציטים הדלקתי לאתר של קיבוע טפיל.
בניגוד לזיהומים אחרים, וירוסים כלומר neutrotopic 4-6, שני תאי המלריה parasitized דם האדומים (pRBC), כמו גם הקשור inflammleukocytes atory יישאר מוחרם בתוך כלי דם ולא מסתנן parenchyma המוח. לפיכך, כדי למנוע זיהום של לויקוציטים המוחרם עם תאים שאינם דלקתיים במחזור, זלוף intracardial הנרחב של עכברים נגועים לפני חילוץ איברים ועיבוד רקמות נדרש בהליך זה כדי להסיר את תא הדם. לאחר זלוף, המוח נקצר ומבותר לחתיכות קטנות. מבנה הרקמה שבש עוד יותר על ידי טיפול האנזימטית עם collagenase D וDNAse I. אז homogenate המוח וכתוצאה הוא centrifuged בשיפוע Percoll המאפשר פרדה של לויקוציטים מוח המוחרם (מנהלת ליגה) מהמיאלין ופסולת רקמות אחרות. תאים מבודדים אז נשטפים, נספר באמצעות hemocytometer ומוכתם עם נוגדני ניאון לניתוח שלאחר מכן על ידי cytometry זרימה.
הליך זה מאפשר אפיון הפנוטיפי מקיף של לויקוציטים הדלקתי נודד למוח מחדשsponse לגירויים שונים, כולל שבץ, כמו גם זיהומים נגיפיים או טפילים. השיטה מספקת גם כלי שימושי להערכת טיפולים חדשניים אנטי דלקתיים במודלים של בעלי חיים קדם קליניים.
הבידוד והאנליזה של מנהלת הליגה הוא שיטה המאפשרת אפיון וכימות של תאים דלקתיים הנודדים למוח בתגובה לפגיעה ברקמות או זיהום במודלים של עכברי ניסוי. ההקדמה של צעד זלוף intracardial להסרת תא הדם לפני חילוץ איברים ובידוד התא הבא היא שימושית כדי למנוע זיהום של תאים דלקתיים עם לוי?…
The authors have nothing to disclose.
המחברים מבקשים להודות למיס ליאנה מצקייביץ' לסיוע טכני. עבודה זו התאפשרה בזכות תמיכה ויקטוריאני מדינת ממשלה התפעולית תשתיות וממשלה האוסטרלית הלאומיים בריאות והמועצה למחקר הרפואי IRIISS והפרויקט גרנט 1031212.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
Solutions and buffers | |||
Giemsa’s azur eosin methylene blue solution | Merck Millipore | 1.09204.0500 | 1:10 dilution in distilled water |
RPMI medium | Mouse tonicity | ||
Mouse tonicity PBS | 20 mM Sodium Phosphate, 0.149 NaCl, pH 7.3 | ||
0.4%Trypan Blue | Sigma Aldrich | T-8154 | 1:2 dilution |
Collagenase D | Worthington Biochemical | ||
Deoxyribonuclease (DNAse) I | Sigma Aldrich | D4263-5VL | From bovine pancreas |
Percoll | GE Healthcare | 17-0891-01 | 30% solution in PBS |
Ultrapure Tris | Invitrogen | 15505-020 | |
Ammonium Chloride (NH4Cl) | AnalaR | 10017 | |
Red Cell Lysis Buffer | 17 mM Tris,14 nM NH4Cl, pH 7.2 | ||
FCS | Gibco | 1009 | |
EDTA disodium salt | Merck | 10093.5V | 0.1M, pH 7.2 |
Antibodies and conjugates | |||
Anti-mouse CD16/CD32 (Fc Block), clone 2.4G2 | BD Pharmingen | 553142 | 1 μl in 50 μl staining buffer (0.5 mg/50 ml) |
FITC-anti-mouse CD4, clone H129.19 | BD Pharmingen | 553651 | |
PE-anti-mouse NK1.1, clone PK136 | BD Pharmingen | 553165 | |
PerCPCy5.5-anti-mouse CD8, clone 53-6-7 | BD Pharmingen | 551162 | |
APC-anti-mouse TCR-β, clone H57-597 | BD Pharmingen | 553174 | |
PE-anti-mouse CXCR3, clone 220803 | R&D Systems | FAB1685P | |
Biotinylated-anti-mouse CCR5, clone C34-3448 | BD Pharmingen | 559922 | |
Steptavidin-PerCP-Cy5.5 | BD Pharmingen | 551419 | |
Equipment and material | |||
SuperFrost microscope slide | Lomb Menzel-Gläser | ||
Dissection forceps, scissors | REDA Instrumente | ||
500 ml PBS reservoir | Nalgene | ||
Rubber tubing | |||
23G needle | BD PrecisionGlide | 302008 | |
Cell dissociation kit containing metal sieve | Sigma Aldrich | CD-1 | |
70 μm nylon cell strainer | BD Falcon | 352350 | |
Hemocytometer | GmbH Neubauer | 717810 | |
Flow cytometry tubes | BD Falcon | 352008 |