Summary

Ex vivo Live-Imaging von Single Cell Divisionen in Maus Neuroepithel

Published: April 30, 2013
doi:

Summary

Hier entwickeln wir die notwendigen Werkzeuge für<em> Ex vivo</em> Live-Aufnahmen zu verfolgen einzelne Zellteilungen in der Maus E8.5 Neuroepithel

Abstract

Wir entwickelten ein System, das Echtzeit-Bildgebung von fluoreszierenden Markern und Kultivierung von embryonalen Maus Scheiben Neuroepithel integriert. Wir nutzten vorhandene Mauslinien für genetische Zelllinie Tracing: eine Tamoxifen-induzierbare Cre Linie und einer Linie, die Cre-Reporter auf Cre-vermittelte Rekombination dsRed. Durch die Verwendung einer relativ niedrigen Tamoxifen, waren wir in der Lage, um eine Rekombination in einer kleinen Anzahl von Zellen zu induzieren, was uns erlaubt, einzelne Zellteilungen folgen. Darüber hinaus beobachtet man die transkriptionelle Reaktion auf Sonic Hedgehog (Shh) Signal mit einer Olig2-eGFP transgenen Linie 1-3 und man überwacht Bildung von Zilien mittels Infektion des kultivierten Scheibe mit Virus, das die Wimpern Marker SSTR3 4-GFP. Um das Bild Neuroepithel wir geerntet Embryonen bei E8.5, isoliert das Neuralrohr, montiert die neurale Scheibe in der richtigen Kulturbedingungen in die Kammer und Bildgebung durchgeführt Zeitraffer-konfokale Bildgebung. Unsere exLive vivo-Bildgebungsverfahren ermöglicht es uns, einzelne Zellteilungen zu verfolgen, um die relative Timing Hauptwimpern Bildung und Shh Antwort in einem physiologisch relevanten Weise zu beurteilen. Dieses Verfahren kann leicht angepasst werden, mit unterschiedlichen fluoreszierenden Markern und bietet das Feld die Werkzeuge, mit denen das Verhalten der Zelle in situ und in Echtzeit zu überwachen.

Protocol

Erwachsene Mäuse werden durch mechanische Genickbruch getötet. Alle tierischen Verfahren wurden vom IACUC und der Kommission für Biosicherheit an der Emory University genehmigt. 1. Embryo-Generation Kreuz Tamoxifen-induzierbare Cre Linie, CAGGCreER und dsRedCre Reporter Linie (Tg (CAG-Bgeo,-DsRed * MST) 1Nagy) (Abbildung 1) 5,6. Um die relative Timing der Shh Reaktion in den Tochterzellen, kreuz und CAGGCreER dsRed Einklang mit dem Olig2-eGFP BAC tra…

Representative Results

Hier führten wir ex vivo Echtzeit-Bildgebung von einzelnen Zellteilungen im E8.5 Maus Neuroepithel. Um einzelne Zellen markieren, induziert wir Cre-Rekombinase in einer Untergruppe von Zellen, die ein Cre-Reporter Linie, die bei der Rekombination 5,6 (3A) dsRed ausgedrückt. So, 48 Stunden später waren wir in der Lage, einzelne Zellteilungen während ex-vivo-Bildgebung (4A-D) zu beobachten. Begleitend überwacht wir, wenn die markierten Zellen wurde Shh-re…

Discussion

Unsere Ex-vivo-System ermöglicht es uns, direkt beobachten einzelne Zelle Spaltungen innerhalb der Entwicklung Neuroepithel in Echtzeit. Als Beispiel haben wir untersucht Zellteilungen im embryonalen Neuralrohrdefekten und überwacht entweder Cilium Bildung oder Shh Antwort. Wir bestätigten unsere Imaging-Ergebnisse (n = 24) waren konsistent mit den Ergebnissen aus festen Abschnitten (n = 178), die unsere Technik bietet physiologisch relevanten Daten.

Unsere Tech…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dieses Forschungsprojekt wurde von einem ARRA Supplement, 5 R01 NS056380 unterstützt. Zusätzliche Unterstützung wurde durch den viralen Vektor-Core und der Mikroskopie Kern der Emory Neuroscience NINDS Core Facilities Grant, P30NS055077 vorgesehen. Wir danken der Emory Transgene Maus und Gene Targeting-Core für die Ableitung der Maus Linie von GENSAT; Greg Pazour für die stabile SSTR3-GFP IMCD3 Zelllinie; und Bradley Yoder für den SSTR3-GFP lentiviralen Konstrukt. Monoklonale Antikörper wurden aus dem Developmental Studies Hybridoma Bank unter der Schirmherrschaft des NICHD entwickelt, erhalten und gepflegt von der University of Iowa, Department of Biological Sciences, Iowa City, IA 52242. Alle tierischen Verfahren wurden vom IACUC und der Kommission für Biosicherheit an der Emory University genehmigt.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Z/RED line (STOCK Tg(CAG-Bgeo,-DsRed*MST)1Nagy/J Jackson Laboratory 005438  
Olig2-eGFP line (STOCK Tg(Olig2-EGFP)EK23Gsat/Mmcd MMRRC, 010555-UCD  
CAGGCreER Jackson Laboratory 003724  
Tamoxifen Sigma T5648  
DMEM/F12 (1:1) GIBCO 21041-025  
Newborn calf serum Lonza 14-416F  
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122  
Rat Serum SD male Harlan Bioproducts 4520  
1M Hepes BioWhittaker 17-737E  
L-Glutamine GIBCO 21041-025  
Light mineral oil Sigma M8410  
Sstr3-GFP lentivirus Emory Viral Core    
Micro-knife, size 0.025 mm Electron Microscopy Sciences 62091  
35 mm poly-L-lysine coated glass bottom dish MatTek P35GC-0-10-C  
100% petroleum jelly Kroger FL9958c  
A1R Laser Scanning Confocal Inverted Microscope Nikon    
NIS Elements software Nikon    
Imaris 3D software Bitplane AG Imaris 7.2.3  
OCT Tissue-Tek 4583  
Cryostat Leica CM1850  
Heat-inactivated sheep serum Invitrogen 16210-072  
Triton X-100 Fisher Scientific BP151  
Parafolmaldehyde Sigma P6148  
Phosphate Buffer Lab made    
Rat monoclonal anti-RFP (5F8) Chromotek 110411  
Rabbit anti-Arl13b serum NeuroMab    
mouse monoclonal anti-Arl13b 1:5 NeuroMab    
Rabbit anti-Olig2 Chemicon AB9610  
Mouse monoclonals Pax6 Developmental Hybridoma Bank Pax6  
Mouse monoclonalsShh Developmental Hybridoma Bank 5E1  
Mouse monoclonals Nkx2.2 Developmental Hybridoma Bank 74.5A5  
Rabbit polyclonal Ki67 Abcam AB15580  
Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11029  
Alexa Fluor 568 Molecular Probes A11031  
Alexa Fluor 350 Molecular Probes A11046  
Hoechst Fisher AC22989  
TO-PRO-3 Invitrogen T3605  
ProLong Gold anti-fade reagent Invitrogen P36934  

Referências

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Citar este artigo
Piotrowska-Nitsche, K., Caspary, T. Ex vivo Live Imaging of Single Cell Divisions in Mouse Neuroepithelium. J. Vis. Exp. (74), e4439, doi:10.3791/4439 (2013).

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