Summary

Ex vivo d'imagerie en temps réel de simples divisions cellulaires dans neuroépithélium de souris

Published: April 30, 2013
doi:

Summary

Ici, nous développons les outils nécessaires pour<em> Ex vivo</em> Imagerie en temps réel à tracer des divisions cellulaires simples dans la souris E8.5 neuroépithélium

Abstract

Nous avons développé un système qui intègre l'imagerie en direct de marqueurs fluorescents et des tranches de culture du neuro-épithélium embryonnaire de la souris. Nous avons profité de lignées de souris existants pour la cellule génétique lignée de traçage: une ligne Cre inductible par le tamoxifène et une ligne de journaliste exprimant Cre DsRed lors de la recombinaison Cre-médiation. En utilisant un niveau relativement bas du tamoxifène, nous étions capables d'induire la recombinaison dans un petit nombre de cellules, ce qui permet de suivre les divisions cellulaires individuels. En outre, nous avons observé la réponse transcriptionnelle à Sonic Hedgehog (Shh) de signalisation utilisant un Olig2-eGFP transgénique ligne 1-3 et nous avons suivi la formation des cils en infectant la tranche cultivé avec le virus exprimant le marqueur de cils, SSTR3-GFP 4. Afin d'image à l'neuroépithélium, nous avons récolté embryons à E8.5, isolé du tube neural, fixé la tranche de neurones dans des conditions de culture appropriées dans la chambre de formation d'image et réalisée en accéléré imagerie confocale. Notre exvivo méthode imagerie en temps réel permet de tracer des divisions cellulaires simples pour évaluer la chronologie relative de la formation des cils primaires et la réponse Shh d'une manière physiologiquement pertinents. Cette méthode peut être facilement adapté en utilisant des marqueurs fluorescents distinctes et fournit le terrain, les outils permettant de surveiller le comportement des cellules in situ et en temps réel.

Protocol

souris adultes sont euthanasiés par dislocation cervicale mécanique. Toutes les procédures d'animaux ont été approuvés par le IACUC et le Comité de biosécurité de l'Université Emory. 1. Embryon Generation Cross tamoxifène Cre inductible ligne, CAGGCreER, et la ligne de journaliste dsRedCre (Tg (CAG-Bgeo,-DsRed * MST) 1Nagy) (Figure 1) 5,6. Pour suivre la chronologie relative de la réponse Shh dans les cellules filles, croix CAGGCreER…

Representative Results

Ici, nous avons effectué ex vivo l'imagerie en direct de divisions cellulaires simples dans le neuroépithélium souris E8.5. Pour marquer les cellules individuelles, nous avons provoqué la recombinase Cre dans un sous-ensemble de cellules contenant une ligne de journaliste Cre celle exprimée DsRed lors de la recombinaison 5,6 (figure 3A). Ainsi, 48 heures plus tard, nous avons pu observer des divisions cellulaires simples pendant ex imagerie in vivo …

Discussion

Notre système ex vivo nous permet d'observer directement divisions cellulaires uniques dans le neuroépithélium développement en temps réel. À titre d'exemple, nous avons examiné les divisions cellulaires dans le tube neural embryonnaire de la souris et surveillés soit la formation cil ou réponse Shh. Nous avons confirmé nos résultats d'imagerie (n = 24) ont été cohérents avec les résultats des sections fixes (n = 178) indiquant notre technique fournit des données ph…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce projet de recherche a été soutenue par un supplément ARRA, 5 R01 NS056380. Un soutien supplémentaire a été fourni par le vecteur viral de base et le noyau de microscopie de l'Emory Neuroscience NINDS les principales installations de subvention, P30NS055077. Nous remercions la souris transgénique Emory et Gene Targeting base pour dériver la lignée de souris à partir de GENSAT; Greg Pazour pour la lignée cellulaire SSTR3-GFP IMCD3 stable et Bradley Yoder pour le SSTR3-GFP lentiviral construisons. Les anticorps monoclonaux ont été obtenus à partir des études du développement Hybridoma Bank, élaboré sous les auspices du NICHD, et entretenus par l'Université de l'Iowa, Département des sciences biologiques, Iowa City, IA 52242. Toutes les procédures d'animaux ont été approuvés par le IACUC et le Comité de biosécurité de l'Université Emory.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Z/RED line (STOCK Tg(CAG-Bgeo,-DsRed*MST)1Nagy/J Jackson Laboratory 005438  
Olig2-eGFP line (STOCK Tg(Olig2-EGFP)EK23Gsat/Mmcd MMRRC, 010555-UCD  
CAGGCreER Jackson Laboratory 003724  
Tamoxifen Sigma T5648  
DMEM/F12 (1:1) GIBCO 21041-025  
Newborn calf serum Lonza 14-416F  
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122  
Rat Serum SD male Harlan Bioproducts 4520  
1M Hepes BioWhittaker 17-737E  
L-Glutamine GIBCO 21041-025  
Light mineral oil Sigma M8410  
Sstr3-GFP lentivirus Emory Viral Core    
Micro-knife, size 0.025 mm Electron Microscopy Sciences 62091  
35 mm poly-L-lysine coated glass bottom dish MatTek P35GC-0-10-C  
100% petroleum jelly Kroger FL9958c  
A1R Laser Scanning Confocal Inverted Microscope Nikon    
NIS Elements software Nikon    
Imaris 3D software Bitplane AG Imaris 7.2.3  
OCT Tissue-Tek 4583  
Cryostat Leica CM1850  
Heat-inactivated sheep serum Invitrogen 16210-072  
Triton X-100 Fisher Scientific BP151  
Parafolmaldehyde Sigma P6148  
Phosphate Buffer Lab made    
Rat monoclonal anti-RFP (5F8) Chromotek 110411  
Rabbit anti-Arl13b serum NeuroMab    
mouse monoclonal anti-Arl13b 1:5 NeuroMab    
Rabbit anti-Olig2 Chemicon AB9610  
Mouse monoclonals Pax6 Developmental Hybridoma Bank Pax6  
Mouse monoclonalsShh Developmental Hybridoma Bank 5E1  
Mouse monoclonals Nkx2.2 Developmental Hybridoma Bank 74.5A5  
Rabbit polyclonal Ki67 Abcam AB15580  
Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11029  
Alexa Fluor 568 Molecular Probes A11031  
Alexa Fluor 350 Molecular Probes A11046  
Hoechst Fisher AC22989  
TO-PRO-3 Invitrogen T3605  
ProLong Gold anti-fade reagent Invitrogen P36934  

Referências

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Citar este artigo
Piotrowska-Nitsche, K., Caspary, T. Ex vivo Live Imaging of Single Cell Divisions in Mouse Neuroepithelium. J. Vis. Exp. (74), e4439, doi:10.3791/4439 (2013).

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