Cette nouvelle méthode permet l'enregistrement simultané intracellulaire d'une souris adulte seul motoneurone et la mesure de la force produite par les fibres musculaires. L'enquête combine des propriétés électriques et mécaniques des unités motrices chez les animaux normaux et génétiquement modifiées est une percée pour l'étude du système neuromusculaire.
Le motoneurone spinal a longtemps été un bon modèle pour l'étude de la fonction nerveuse parce que c'est un neurone du système nerveux central avec des propriétés uniques de (1) ayant des cibles facilement identifiables (les fibres musculaires) et donc ayant une fonction bien connue (pour contrôler la contraction musculaire), (2) d'être la cible de convergence de plusieurs réseaux spinaux et descendant, d'où le nom de «voie finale commune», et (3) ayant une grande soma qui permet de les pénétrer avec de fortes électrodes intracellulaires . En outre, lorsqu'ils sont étudiés in vivo, il est possible d'enregistrer simultanément l'activité électrique des neurones moteurs et la force développée par leurs cibles musculaires. Effectuer des enregistrements intracellulaires de motoneurones in vivo donc mis l'expérimentateur dans la position unique d'être en mesure d'étudier, dans le même temps, tous les compartiments de l '"unité moteur" (le nom donné à l'motoneurone, son axone, etles fibres musculaires qu'il innerve 1): les entrées empiétant sur le motoneurone, les propriétés électrophysiologiques du motoneurone, et l'impact de ces propriétés sur la fonction physiologique des motoneurones, c'est à dire la force produite par son moteur. Cependant, cette approche est très difficile parce que la préparation ne peut pas être paralysé et donc la stabilité mécanique de l'enregistrement intracellulaire est réduite. Ainsi, ce type d'expériences a été réalisée que chez les chats et les rats. Cependant, l'étude des systèmes spinaux pourrait faire un bond formidable s'il était possible de réaliser des expériences similaires chez les souris normales ou génétiquement modifiés.
Pour des raisons techniques, l'étude des réseaux spinaux chez la souris a été principalement limitée aux nouveau-nés dans les préparations in vitro, où les motoneurones spinaux et les réseaux sont immatures, les motoneurones sont séparés de leurs objectifs, et lorsqu'ils sont étudiés en tranches, le motoneurons sont séparées de la plupart de leurs intrants. Jusqu'à récemment, seuls quelques groupes ont réussi à effectuer des enregistrements intracellulaires de motoneurones in vivo 2-4, y compris notre équipe qui a publié une nouvelle préparation qui nous a permis d'obtenir des enregistrements très stables des motoneurones in vivo chez la souris adulte 5,6. Toutefois, ces enregistrements ont été obtenus chez les animaux paralysés, c'est à dire sans la possibilité d'enregistrer la sortie de force de ces motoneurones. Ici, nous présentons une extension de cette préparation originale dans laquelle nous avons pu obtenir des enregistrements simultanés des propriétés électrophysiologiques des motoneurones et de la force développée par leur moteur. Il s'agit d'une réalisation importante, car elle nous permet d'identifier les différents types de motoneurones en fonction de leur profil de force, et révélant ainsi leur fonction. Couplés avec des modèles génétiques perturbant la colonne vertébrale segmentaire circuits 7-9, ou reproducting humaine disea10,11 soi, nous nous attendons que cette technique soit un outil essentiel pour l'étude du système moteur spinal.
La préparation décrite ici est la première qui permet, chez la souris adulte, simultanée d'un enregistrement intracellulaire motoneurone lombaire et la mesure de la force produite par les fibres musculaires innervées par son axone.
En raison de la petite taille de l'animal, les compétences chirurgicales nécessaires pour cette préparation peut être difficile à acquérir. Cependant, une fois ces compétences sont maîtrisées, toute la chirurgie peut être réalisée en trois…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été rendu possible grâce au soutien financier de la Fondation pour la Recherche Médicale (FRM), la bourse postdoctorale Milton Safenowitz recherche sur la SLA (ALS Association), NIH NS05462 subventions du NINDS et NS034382, et l'ANR HyperMND.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
Atropine sulfate | Aguettant | ||
Methylprenidsolone | Pfizer | Solu-Medrol | |
Sodium pentobarbitone | Sanofi-Aventis | Pentobarbital | |
Ketamine | |||
Xylazine | |||
Glucose | |||
Plasma expander | Roger Bellon | Plasmagel | |
Blunt scissors | FST | 14079-10 | |
Blunt fine scissors | FST | 15025-10 | |
Vannas Spring Scissors | FST | 15002-08 | |
Fine forceps serrated | FST | 11370-32 | |
Fine forceps serrated | FST | 11370-31 | |
Cunningham Spinal Adaptor | Stoelting Co. | ||
Kwik-Cast sealant | WPI | #KWIK-CAST | |
Ventilator | CWE Inc | SAR-830/AP | |
Capnograph | CWE Inc | μcapstar | |
Heating blanket | Harvard Apparatus | 507221F | |
Intracellular amplifier | Axon Instruments | Axoclamp 2B | |
Pipette puller | Sutter Instruments | P-97 | |
KCl | Sigma-Aldrich | P9333-500G |