Summary

Carregando retrógrado de Nervos, folhetos, e raízes nervosas com corantes fluorescentes

Published: April 19, 2012
doi:

Summary

Nós descrevemos uma técnica simples e de baixo custo para a introdução de elevada concentração de corantes fluorescentes e de cálcio sensíveis em neurónios ou qualquer tracto neuronal, utilizando uma pipeta de sucção de polietileno.

Abstract

Marcação retrógrada de neurónios é um método padrão 1,2 anatómica que também tem sido utilizado para carregar o cálcio e sensíveis à voltagem corantes em neurónios 3-6. Geralmente, os corantes são aplicados na forma de cristais sólidos ou por injecção sob pressão local usando pipetas de vidro. No entanto, isto pode resultar na diluição da intensidade de rotulagem de corante e reduzida, particularmente quando são necessárias várias horas para a difusão do corante. Aqui demonstramos uma técnica simples e de baixo custo para a introdução de corantes fluorescentes e de iões de sensível em neurónios utilizando uma pipeta de sucção de polietileno cheio com a solução de corante. Este método oferece uma maneira fiável para a manutenção de uma elevada concentração do corante em contacto com axónios em todo o procedimento de carga.

Protocol

Dextranos fluorescentes têm sido utilizados como ferramentas de anatómicos e para geração de imagens actividade neuronal 1-4. Campos et al, (2009) 4 publicou um protocolo para aplicação de íons e sensíveis à tensão corantes tratos axonais com um foco sobre a medula espinhal como um sistema modelo. Descrevemos aqui um procedimento mais detalhado para a aplicação de corante fluorescente e / ou iões de sensível para as raízes de corte ventral, raízes dorsais ou qualquer tracto…

Discussion

<p class="jove_content"> Descrevemos aqui um protocolo simples e de baixo custo para a introdução de corantes em neurônios, nervos e tratos espinhais. Este método envolve a exposição identificados vias anatómicas a uma solução altamente concentrada de corante para a duração do processo de carregamento. Isso resulta em marcação retrógrada do site de destino com fundo pouco em comparação com microinjeções, aplicação de banho e técnicas de eletroporação. No entanto, o método é limitado aos locais no sistema nervoso, ond…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Este trabalho foi financiado pelo programa intramural do Instituto Nacional de Distúrbios Neurológicos e Derrame no National Institutes of Health. Gostaríamos também de agradecer ao Dr. George Mentis por suas contribuições anteriores para o método e os dados da Figura 3.</p>

Materials

Material Name Company Catalogue number Comments
Tubing PE90 (IDxOD:0.034″x0.050″; Wall Thikness:0.008″) Clay Adams Brand Intermedic 427421 For Type I & Type II pipettes
NSF-51(IDxOD:1/16×1/8; Wall Thikness:1/32) PharMed BPT, Cole-Parmer AY242002 For Flexible tubing
Syringe 1ml insulin Syringe U-100 Becton Dickenson 329650  
Needle 19G x1-1/2″ Metal Hub Needle MONOJECT 200136 Connecting Type II pipette to syringe
  Alcohol Lamp      
Stopcock Three-way Stopcock with Male Luer Slip Adapter Baxter Healthcare Corp. 2C6241 Use with syringe
Holder H-1 electrode holder Narishige H-1/12  
Magnet stand Narishige GJ-8  
Micromanipulator Narishige M-3333  
Tweezers S&T DUMONT Swiss 00632-11 DUMONT JF-5 TC  

*Those are suggested materials. Can be replaced with any compatible products

Referências

  1. Nance, D. M., Burns, J. Fluorescent dextrans as sensitive anterograde neuroanatomical tracers: applications and pitfalls. Brain Res. Bull. 25, 139-145 (1990).
  2. Glover, J. C., Petursdottir, G., Jansen, J. K. Fluorescent dextran-amines used as axonal tracers in the nervous system of the chicken embryo. J. Neurosci. Methods. 18, 243-254 (1986).
  3. McPherson, D. R., McClellan, A. D., O’Donovan, M. J. Optical imaging of neuronal activity in tissue labeled by retrograde transport of Calcium Green Dextran. Brain Research Protocols. 1, 157-164 (1997).
  4. Fields, D. R., Shneider, N., Mentis, G. Z., O’Donovan, M. J. Imaging nervous system activity. Curr. Protoc. Neurosci. Chapter 2, Unit 2.3 (2009).
  5. O’Donovan, M. J., Ho, S., Sholomenko, G., Yee, W. Real-time imaging of neurons retrogradely and anterogradely labelled with calcium-sensitive dyes. J. Neurosci. Methods. 46, 91-106 (1993).
  6. Wenner, P., Tsau, Y., Cohen, L. B., O’Donovan, M. J., Dan, Y. Voltage-sensitive dye recording using retrogradely transported dye in the chicken spinal cord: staining and signal characteristics. J. Neurosci. Methods. 70, 111-120 (1996).
  7. Garudadri, S., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication. J. Vis. Exp. (48), e2580 (2011).
  8. Smith, J. C., Feldman, J. L. In vitro brainstem-spinal cord preparations for study of motor systems for mammalian respiration and locomotion. J. Neurosci. Methods. 21, 321-333 (1987).
  9. Meyer, A., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology. J. Vis. Exp. (35), e1660 (2010).
  10. Shneider, N. A., Mentis, G. Z., Schustak, J., O’Donovan, M. J. Functionally reduced sensorimotor connections form with normal specificity despite abnormal muscle spindle development: the role of spindle-derived neurotrophin 3. J. Neurosci. 29, 4719-4735 (2009).
  11. Mentis, G. Z. Early functional impairment of sensory-motor connectivity in a mouse model of spinal muscular atrophy. Neuron. 69, 453-467 (2011).
  12. Blivis, D., Mentis, Z., O’Donovan, J. M. G., Lev-Tov, A. Studies of sacral neurons involved in activation of the lumbar central pattern generator for locomotion in the neonatal rodent spinal cord. Soc. Neurosci. Abstr. 564.8, (2009).
  13. O’Donovan, M. J. Imaging the spatiotemporal organization of neural activity in the developing spinal cord. Dev. Neurobiol. 68, 788-803 (2008).
  14. Kasumacic, N., Glover, J. C., Perreault, M. -. C. Segmental patterns of vestibular-mediated synaptic inputs to axial and limb motoneurons in the neonatal mouse assessed by optical recording. J. Physiol. (Lond). 588, 4905-4925 (2010).
  15. Szokol, K., Glover, J. C., Perreault, M. -. C. Organization of functional synaptic connections between medullary reticulospinal neurons and lumbar descending commissural interneurons in the neonatal mouse. J. Neurosci. 31, 4731-4742 (2011).

Play Video

Citar este artigo
Blivis, D., O’Donovan, M. J. Retrograde Loading of Nerves, Tracts, and Spinal Roots with Fluorescent Dyes. J. Vis. Exp. (62), e4008, doi:10.3791/4008 (2012).

View Video