描述的方法来检查鼻咽相关淋巴组织(NALT)鼻内疫苗的小鼠鼻腔和全身免疫反应的贡献。我们展示了一个外科手术,以建立一个的NALT依赖鼠标模型,<em>体外</em>提取NALT的文化。
鼻咽相关淋巴组织(NALT)发现,在人类,啮齿动物和其他哺乳动物,有助于在1-3鼻窦的免疫力。 NALT是两个平行的钟形结构位于硬腭以上的鼻腔,通常被认为是粘膜相关淋巴系统4-6二次元件。位于NALT穿插离散B和T淋巴细胞,树突状细胞抗原提呈4,7,8车厢。这些细胞被包围的上皮细胞层间与M-细胞是负责从空中通道9,10粘膜表面的抗原检索。正准备通过NALT循环的幼稚淋巴细胞回应7呼吸道病原体的第一次接触。虽然NALT在人类消失两岁,韦氏环和类似结构的淋巴器官继续坚持日roughout生活6。相反,人类,小鼠保留整个生命NALT,从而提供了一个方便的动物模型,为11鼻窦内的免疫反应的研究。
NALT单细胞悬液的文化是不实际的,由于产量低的单核细胞。然而,NALT生物学可以完整的器官体外培养的研究,该方法具有额外的优势,保持自然的组织结构。 在体内研究,提出限制到NALT缺陷的基因剔除模型是目前没有可由于缺乏了解的发展途径。例如,而淋巴毒素α基因敲除小鼠已萎缩NALT,Peyer氏斑,周围淋巴结滤泡树突状细胞和其他淋巴组织也改变了这些基因操作的小鼠12,13。作为一种替代基因敲除小鼠,手术消融带够永远接受从鼻腔消除NALT,而不影响其他组织。产生的小鼠模型已被用于建立NALT和免疫反应的疫苗1,3之间的关系。串行收集血清,唾液,鼻腔冲洗和阴道分泌物的宿主反应的基础上建立的疫苗,而直接源于NALT的免疫反应,可以通过组织培养证实是必要的。以下步骤概述了手术,组织培养和样品收集必要的检查局部和全身体液鼻腔(IN)的疫苗接种的免疫反应。
我们已经提出了发展动物模型的集体方法,取得生物样品,分析和研究的NALT相关免疫反应1-4。有其他因素考虑,在这些方法的性能。应遵循标准的无菌技术,手术和组织文化。隔离和文化,以及保持消毒仪器,工作区和消毒口味过程中使用的抗菌和抗真菌剂的组合将减少污染的风险。唾液,鼻洗涤和类似的粘膜分泌物标本应为潜在污染的血液检查,发现高浓度一般都在血清抗体。此外,粘膜分泌物应该只被轻微稀释分析,因为低浓度的抗体,这些样本中血清相比。
小鼠直接手术后必须保持温暖预发泄潜在的麻醉诱导低温。在其两侧交替休息小鼠手术后休养期间尽量减少不规则的呼吸。手术过程是三个人一起工作来完成这些任务更有效执行手术,协助举办着嘴,提供手术后护理的小鼠从麻醉中恢复。
这是需要使用颅截面H&E染色,在所有实验程序或研究,以验证每个鼠标的手术成功结束。可能手术的结果是:完整的和双边的NALT消融,消融不全,或完整NALT。因为并非所有的手术将导致NALT,完全丧失残留或完整NALT动物可作为内部控制。另一个潜在的结果是,口感未能彻底治愈,留下了一个开放连接鼻腔和口腔。不完整腭愈合会导致低体重和未能茁壮成长,这些人应该从研究中删除。
检查疫苗的反应,先用小鼠模型,将有助于建立在预期的研究成果(抗体反应,生存等)为NALT的作用。手术切除的NALT局部和全身免疫促进鼻贡献的决心。这里所描述的手术方法是最直接的方法获得NALT缺乏的小鼠模型。选择敲除小鼠模型已报告缺乏NALT,但这些动物也有缺陷,在其他二级淋巴组织的发展至关重要的细胞因子或趋化因子,并可能含有额外的缺陷12,13。此外,这里所描述的方法进行检查鼻腔内的免疫反应的几个方面。使用整个上palat研究基于我们的实验结果E从组织文化的鼠标,虽然它是可能的,可用于部分。最后,培养的NALT模型是进行组织培养试验完全。
The authors have nothing to disclose.
碧迪技术提供了支持。在本文件中所表达的意见是作者的,不旨在反映美国政府的官方政策。符合动物福利法“和其他联邦法规和规章,有关涉及动物和实验动物和以实验动物护理和使用 ,国家研究理事会,1996年” 指南 “中所列的原则,坚持进行研究。本研究进行了设施是完全认可的实验室动物保健国际评估和认证协会。
Name of the reagent | Company | Catalog number | Comments |
Stainless Steel Sterile Surgical Blades, No. 11 | Miltex | 4-311 | |
Knife Handle, No. 3 | Miltex | 4-7 | |
48-well Cell Culture Plates | Costar | 3548 | |
RPMI 1640 | Invitrogen | 11875-093 | |
Fetal Bovine Serum, Heat Inactivated | Gibco/Invitrogen | 16000-044 | Final Conc: 10% by volume in culture media |
Streptomycin Sulfate | Sigma | S9137 | Final Conc: 100 μg/mL |
Penicillin | Sigma | P7794 | Final Conc: 100 UI/mL |
Gentamicin | Sigma-Aldrich | G1397-10ML | Final Conc: 50 μg/mL |
Fungizone | Gibco/Invitrogen | 15290-018 | Final Conc: 1 μg/mL |
HEPES | Sigma-Aldrich | H0887 | Final Conc: 10 mM |
Eppendorf Microcentrifuge Tubes | Eppendorf | 022364111 | |
Nutra-gel Cherry Flavored Mouse Wet Food | Bio-Serve | S4798-TRAY | |
Metacam | Boehringer Ingelheim | 601531000 | One drop of 1.5 mg/mL Oral Suspension |
Ketamine | Pfizer | 00856440301 | Final Conc: 6.06 mg/mL |
Acepromazine | Vedco | VEDC207 | Final Conc: 0.061 mg/mL |
Xylazine | Lloyd | 4811 | Final Conc: 0.667 mg/mL |
Puralube Vet Ointment | Pharmaderm Animal Health | 1621 | |
0.9% Sodium Chloride Injection USP | Baxter | 2B1302 | |
0.5 mm Microcurette | Roboz | RS-6350 | |
Thermal Cautery Unit | Geiger | 150-S/150A-S | |
TCU Replacement Tip, Straight Fine Loop | Geiger | 214 | |
Surgical Scissors | |||
10% Neutral Buffered Formalin | Sigma | HT501128 | |
Formic Acid | Fisher | A119P-4 | Mix 426 mL formic acid into 1047 mL tap water, then add 45 mL Rexyn 101 (H) |
Rexyn 101 (H) | Fisher | R231-500 | |
Tissue-Tek VIP E150/E300 | Sakura | ||
Rotary Microtome | Leica | RM2255 | |
Mayer’s Hematoxylin | Sigma | MHS16-500ML | |
Gill No.1 Hematoxylin | Sigma | GHS116 | |
Eosin B | Sigma | 2853 | |
Microtainer Serum Separator | BD Medical | 365956 | |
Phosphate Buffered Saline | 100 mM NaH2PO4, 140 mM NaCl, pH 7.4 | ||
Protease Inhibitor Cocktail, EDTA-free | Thermo Scientific | 78415 |