Summary

En funktionell Motor enhet i Kultur Dish: Co-kultur av ryggmärg Explantat och muskelceller

Published: April 12, 2012
doi:

Summary

Odlade muskelceller är ett otillräckligt modell för att rekapitulera innerverad muskler<em> In vivo</em>. En funktionell motorenheten kan återges<em> In vitro</em> By innervation av differentierade humana primära muskelceller med råttembryo ryggmärgen explantat. Denna artikel beskriver hur co-kulturer av ryggmärgen explantaten och muskelceller är etablerade.

Abstract

Humana primära muskelceller odlade aneurally i monoskikt sällan kontraktet spontant, eftersom det i avsaknad av en nerv komponent, celldifferentiering begränsad och motor neuron stimulering saknas 1. Dessa begränsningar hämma in vitro-studie av många neuromuskulära sjukdomar hos odlade muskelceller. Viktigare är att de experimentella begränsningarna i monolayered, odlade muskelceller övervinnas genom funktionell innervation av myofibers med ryggmärgen explantat i samkulturer.

Här visar vi de olika stegen som krävs för att uppnå en effektiv, korrekt innervation av humana primära muskelceller, vilket leder till fullständig differentiering och fiber kontraktion enligt den metod som utvecklats av Askanas 2. För att göra detta är muskelceller samodlade med ryggmärgen explantat av råttembryon på ED 13,5, med dorsalrotsganglier fortfarande sitter i ryggmärgen skivor. Efter några dagar muskeln fimedlemmar börjar att dra ihop sig och så småningom bli över tvärstrimmig genom innervation av funktionella neurites skjuter från ryggmärgen explantat som ansluter till muskelcellerna. Denna struktur kan bibehållas under flera månader, helt enkelt genom regelbundet utbyte av odlingsmediet.

De tillämpningar av denna ovärderliga verktyg är många, eftersom det utgör en funktionell modell för tvärvetenskapliga analyser av människans muskler utveckling och innervation. I själva verket sker en fullständig de novo neuromuskulära förbindelsen installation i en odlingsskål, vilket tillåter en enkel mätning av många parametrar vid varje steg, i en fundamental och fysiologisk sammanhang.

Bara för att nämna några exempel, genomiska och / eller proteomik studier kan utföras direkt på de båda kulturerna. Dessutom kan pre-och postsynaptiska effekter specifikt och separat bedömas vid den neuromuskulära förbindelsen, eftersom båda delarna kommer från olika arter,råtta och människa, respektive. Den nerv-muskel samodling kan också utföras med humana muskelceller isolerade från patienter som lider av muskel-eller neuromuskulära sjukdomar 3, och således kan användas som ett screeningsverktyg för läkemedelskandidater. Slutligen krävs ingen speciell utrustning, men en vanlig BSL2 hjälpmedel som behövs för att återskapa en funktionell motorenhet i en kultur maträtt. Denna metod är således värdefullt för både muskel samt neuromuskulära samhällen forskning för fysiologiska och mekanistiska studier av neuromuskulär funktion, i en normal och sjukdom sammanhang.

Protocol

1. Beredning av primär Human Muscle Cell Culture Fastställa mänskliga kulturer muskel cell enligt explantation-RE-explantation tekniken 4. Först ta bort icke-muskelvävnad från biopsier. Sedan bädda 1 mm 3 muskel explantat i en koagel av plasma, vilket gör att fibroblaster att dyka från explantaten. De inbäddade Explantaten överförs till en plasma-gelatinbelagda skålen och låta dem växa i normalt tillväxtmedium (MEM kompletterat med 25% mediet 199, 10% fetalt bov…

Discussion

En fysiologisk in vitro verktyg för att studera funktionen muskelceller i normal och patologisk sammanhang är av högsta intresse för myologists, eftersom muskelceller cellkulturer vanligtvis inte rekapitulera vikten av multipla celler och cell-typ-anslutningar. Tillsats av renat motoriska nervceller till muskelcellerna är inte tillräckligt för att uppnå en funktionell motorenhet eftersom förekomsten av Schwann celler krävs för att innervation ska vara effektiv 5 och det är inte topologisk…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vårt arbete stöds av den schweiziska National Science Foundation (SNF), det schweiziska initiativet systembiologi (SystemsX.ch), den muskeldystrofi Association USA (MDA), Association francaise contre les Myopatier (AFM), Förenade mitokondriesjukdomar Foundation (umdf), den Gebert-Ruf Foundation sällsynta sjukdomar Programme (GRF), det schweiziska samhället för forskning av Muskelsjukdomar (SSEM / FSRMM), den Swiss Life "Jubiläumsstiftung für Volksgesundheit und Medizinische Forschung", den Roche Research Foundation och universitetet Basel.

Materials

Name of reagent Company Catalog Number
HBSS Gibco/Invitrogen 14170
MEM Gibco/Invitrogen 31095
Medium 199 Gibco/Invitrogen 31153
Fetal Bovine Serum Fetal Clone Perbio SH30066.03
Insuline Sigma I9278
Human EGF Sigma E9644
Human FGF Sigma F0291
Penicillin/streptomycin solution Gibco 15140

Referências

  1. Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions. Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).
  2. Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation. J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).
  3. Braun, S., Croizat, B., Lagrange, M. C., Warter, J. M., Poindron, P. Constitutive muscular abnormalities in culture in spinal muscular atrophy. Lancet. 345, 694-695 (1995).
  4. Askanas, V., Engel, W. K. A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture. Neurology. 25, 58-67 (1975).
  5. Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro. Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).
  6. Lefebvre, S. Identification and characterization of a spinal muscular atrophy-determining gene. Cell. 80, 155-165 (1995).
  7. Schrank, B. Inactivation of the survival motor neuron gene, a candidate gene for human spinal muscular atrophy, leads to massive cell death in early mouse embryos. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 9920-9925 (1997).
  8. Hsieh-Li, H. M. A mouse model for spinal muscular atrophy. Nat. Genet. 24, 66-70 (2000).
  9. Monani, U. R. The human centromeric survival motor neuron gene (SMN2) rescues embryonic lethality in Smn(-/-) mice and results in a mouse with spinal muscular atrophy. Hum. Mol. Genet. 9, 333-339 (2000).
  10. Sleigh, J. N., Gillingwater, T. H., Talbot, K. The contribution of mouse models to understanding the pathogenesis of spinal muscular atrophy. Dis. Model. Mech. 4, 457-467 (2011).
  11. Durbeej, M., Campbell, K. P. Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models. 12, 349-361 (2002).
  12. Schnabel, J. Neuroscience: Standard model. Nature. 454, 682-685 (2008).
  13. Benatar, M. Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS. Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).
  14. Dorchies, O. M. Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system. Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).
  15. McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies. Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).
check_url/pt/3616?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Arnold, A., Christe, M., Handschin, C. A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells. J. Vis. Exp. (62), e3616, doi:10.3791/3616 (2012).

View Video