Summary

Une unité fonctionnelle du moteur dans la boîte de culture: La co-culture d'explants de la moelle épinière et les cellules musculaires

Published: April 12, 2012
doi:

Summary

Les cellules musculaires en culture sont un modèle inadéquat de récapituler les muscles innervés<em> In vivo</em>. Une unité fonctionnelle du moteur peut être reproduite<em> In vitro</em> Par l'innervation de l'homme les cellules musculaires différenciées primaires à l'aide de rats explants d'embryons de la moelle épinière. Cet article décrit comment les co-cultures d'explants de moelle épinière et les cellules musculaires sont établis.

Abstract

Homme cellules musculaires primaires en culture en monocouche aneurally rarement contrat spontanément en raison, en l'absence d'une composante du nerf, la différenciation cellulaire est limitée et la stimulation des neurones moteurs est une manquante. Ces limitations entravent l'étude in vitro de nombreuses maladies neuromusculaires dans les cellules musculaires en culture. Surtout, les contraintes expérimentales de monocouches, les cellules musculaires en culture peuvent être surmontés par l'innervation fonctionnelle des fibres musculaires avec des explants de moelle épinière dans les co-cultures.

Ici, nous montrons les différentes étapes nécessaires à la réalisation efficace, innervation correcte de l'homme des cellules musculaires primaires, menant à une contraction de la différenciation et la fibre selon la méthode développée par Askanas 2. Pour ce faire, les cellules musculaires sont co-cultivées avec des explants de moelle épinière d'embryons de rat chez ED 13,5, avec les ganglions de la racine dorsale encore attaché aux tranches de la moelle épinière. Après quelques jours, le muscle fibres de commencer à contrat et devenir contre-striée par innervation par neurites fonctionnels saillie à partir des explants de moelle épinière qui se connectent à des cellules musculaires. Cette structure peut être maintenue pendant de nombreux mois, tout simplement par un échange régulier du milieu de culture.

Les applications de cet outil précieux sont nombreux, car il représente un modèle fonctionnel pour des analyses multidisciplinaires de développement musculaire humaine et l'innervation. En fait, un complet de novo d'installation de la jonction neuromusculaire se produit dans une boîte de culture, ce qui permet une mesure facile de nombreux paramètres à chaque étape, dans un contexte fondamental et physiologique.

Pour ne citer que quelques exemples, génomique et / ou des études protéomiques peuvent être effectuées directement sur les co-cultures. En outre, les effets pré-et post-synaptique peut être évalué précisément et séparément à la jonction neuromusculaire, parce que les deux composants proviennent d'espèces différentes,rat et l'homme, respectivement. Le nerf-muscle de co-culture peut également être effectuée avec des cellules musculaires humaines isolées chez des patients souffrant de maladies neuromusculaires du muscle ou 3, et peut donc être utilisé comme un outil de dépistage pour les médicaments candidats. Enfin, aucun équipement spécial, mais un habitué BSL2 installation est nécessaire pour reproduire une unité motrice fonctionnelle dans une boîte de culture. Cette méthode est donc précieuse tant pour le muscle ainsi que les communautés de recherche neuromusculaire pour des études physiologiques et mécaniste de la fonction neuromusculaire, dans un contexte normal et la maladie.

Protocol

1. Préparation de la culture primaire de cellules musculaires humaines Mettre en place des cultures de cellules musculaires humaines, selon la technique explantation-re-explantation 4. Tout d'abord, éliminer les obstacles non-tissu musculaire à partir des biopsies. Puis, incorporer 1 mm explants musculaires 3 dans un caillot de plasma, ce qui permet de sortir de fibroblastes des explants. Les explants incorporés sont transférées sur un plat de plasma gélatine revêtu…

Discussion

Un outil physiologique de vitro pour étudier la fonction des cellules musculaires dans le contexte normal et pathologique est du plus haut intérêt pour les myologues, parce que les cultures de cellules musculaires ne sont généralement pas récapituler l'importance de plusieurs cellules et des cellules de type de connexions. L'ajout de purifier les neurones moteurs dans les cellules musculaires ne suffit pas pour parvenir à une unité motrice fonctionnelle puisque la présence de cellules …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Notre travail est soutenu par le Fonds national suisse (FNS), l'initiative suisse en biologie des systèmes (SystemsX.ch), la Muscular Dystrophy Association aux Etats-Unis (MDA), l'Association française Contre les Myopathies (AFM), le Royaume-mitochondrial Disease Foundation (UMDF), la Fondation Gebert Rüf-Programme des maladies rares (GRF), la Société suisse pour la recherche des maladies musculaires (SSEM / FSRMM), le Swiss Life "Jubiläumsstiftung für Forschung Volksgesundheit und medizinische", la Roche Research Foundation et l'Université de Bâle.

Materials

Name of reagent Company Catalog Number
HBSS Gibco/Invitrogen 14170
MEM Gibco/Invitrogen 31095
Medium 199 Gibco/Invitrogen 31153
Fetal Bovine Serum Fetal Clone Perbio SH30066.03
Insuline Sigma I9278
Human EGF Sigma E9644
Human FGF Sigma F0291
Penicillin/streptomycin solution Gibco 15140

Referências

  1. Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions. Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).
  2. Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation. J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).
  3. Braun, S., Croizat, B., Lagrange, M. C., Warter, J. M., Poindron, P. Constitutive muscular abnormalities in culture in spinal muscular atrophy. Lancet. 345, 694-695 (1995).
  4. Askanas, V., Engel, W. K. A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture. Neurology. 25, 58-67 (1975).
  5. Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro. Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).
  6. Lefebvre, S. Identification and characterization of a spinal muscular atrophy-determining gene. Cell. 80, 155-165 (1995).
  7. Schrank, B. Inactivation of the survival motor neuron gene, a candidate gene for human spinal muscular atrophy, leads to massive cell death in early mouse embryos. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 9920-9925 (1997).
  8. Hsieh-Li, H. M. A mouse model for spinal muscular atrophy. Nat. Genet. 24, 66-70 (2000).
  9. Monani, U. R. The human centromeric survival motor neuron gene (SMN2) rescues embryonic lethality in Smn(-/-) mice and results in a mouse with spinal muscular atrophy. Hum. Mol. Genet. 9, 333-339 (2000).
  10. Sleigh, J. N., Gillingwater, T. H., Talbot, K. The contribution of mouse models to understanding the pathogenesis of spinal muscular atrophy. Dis. Model. Mech. 4, 457-467 (2011).
  11. Durbeej, M., Campbell, K. P. Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models. 12, 349-361 (2002).
  12. Schnabel, J. Neuroscience: Standard model. Nature. 454, 682-685 (2008).
  13. Benatar, M. Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS. Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).
  14. Dorchies, O. M. Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system. Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).
  15. McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies. Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).
check_url/pt/3616?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Arnold, A., Christe, M., Handschin, C. A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells. J. Vis. Exp. (62), e3616, doi:10.3791/3616 (2012).

View Video