Summary

Прижизненное микроскопия Селезенка: Количественный анализ паразитов Мобильность и кровотока

Published: January 14, 2012
doi:

Summary

Мы покажем, метод для выполнения прижизненной микроскопии селезенки использования GFP трансгенные малярийных паразитов и количественной оценки подвижности паразита и приток крови в этом органе.

Abstract

Появлением прижизненной микроскопии в экспериментальных моделях малярии грызунов позволило значительный прогресс в знании паразит-хозяин 1,2 взаимодействий. Таким образом, в естественных изображений малярийных паразитов во время пре-эритроцитарных этапы выявили активный вход паразитов в кожу лимфатических узлов 3, полного развития паразита в коже 4, и формирование гепатоцитов полученных merosome для обеспечения миграции и выпуск мерозоиты в кровь 5. Более того, развитие отдельных паразитов в эритроцитах был недавно документально использованием 4D визуализации и бросил вызов нашим текущим видом на белок экспорта в борьбе с малярией 6. Таким образом, прижизненных изображений радикально изменила наш взгляд на ключевые события в развитии Plasmodium. К сожалению, исследования динамических прохождения малярийных паразитов через селезенку, основных лимфоидных органов изысканно адаптированы, чтобы очистить зараженный красный бlood клеткам не хватает из-за технических ограничений.

Использование мышиной модели малярии Plasmodium yoelii в BALB / C мышей, мы внедрили прижизненной визуализации селезенки и сообщил дифференциальных реконструкции оно и соблюдение зараженных эритроцитов (pRBCs), чтобы барьер клетки фибробластов происхождения в красной пульпе при инфекции нелетального паразита линии P.yoelii 17X, в отличие от инфекций с P.yoelii 17XL смертельным паразитом строке 7. Для достижения этих выводов специальной методологии использования ImageJ свободного программного обеспечения был разработан, с тем характеристику быстрой трехмерной движение одного pRBCs. Результаты, полученные с этим протоколом позволяют определить скорость, направленность и время пребывания паразитов в селезенке, все параметры решения соблюдение в естественных условиях. Кроме того, мы сообщаем методология количественного кровотока использовании прижизненной микроскопии и использованием DIFразличным красители, чтобы разобраться в сложной структуре микроциркуляторного из селезенки.

Этика заявление

Все исследования на животных были проведены на животных объектах университета Барселоны в соответствии с руководящими принципами и протоколов утвержденным Комитетом по этике защиты животных эксперименты в Университете Барселоны CEEA-UB (Протокол № DMAH: 5429). Женский BALB / C мышей 6-8 недельного возраста были получены из Charles River Laboratories.

Protocol

Этот метод был использован в исследованиях сообщается в 7. 1. Животное инфекции зеленый флуоресцентный белок (GFP) паразиты трансгенных П. yoelii-GFP трансгенные линии 17XL и 17X были получены с использованием тех же векторов, стратегии таргетирования и протоколов…

Discussion

Реализация прижизненной микроскопии селезенки в этой модели малярии грызунов открыл возможность исследовать динамическое прохождение паразитов через этот орган, который до сих пор считается "черный ящик" из-за технических соображений. В здесь, основные усилия были поставлены н?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы особенно благодарны С. Graewe и В. Heussler для начальной подготовки и непрерывного ввода в прижизненной микроскопии малярийных паразитов, чтобы Бернс за благотворительный взнос GFP трансгенные паразитов, А. Bosch (конфокальной Unit, CCIT-UB, IDIBAPS) за помощь в анализе изображений и количественной оценки и П. Astola для оказания технической помощи. Мы благодарим Р. Tous и И. Caralt для видео производства. MF является получателем стипендий от Общность Каталонии. Компенсации является профессором ICREA исследований. Работа в лаборатории о компенсации финансируется Седьмой рамочной Европейского Сообщества Наций (FP7/2007-2013) в рамках грантового соглашения N ° 242095, в частный фонд Селлекс (Каталония, Испания), а также испанского министерства по науке и инновациям ( SAF2009-07760).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Leica TCS-SP5 confocal microscope Leica Microsystems, Heidelberg, Germany TCS-SP5 Serial no. 5100000419  
Ketamine (Ketolar 50 mg/ml) Pfizer 631028  
Midazolam 15 mg/3 ml Normon 838193  
70,000 MW Dextran, conjugated to Texas Red Molecular Probes D1830  
Fluorescein Isothiocyanate, isomer I (FITC) Sigma F7250  
Hoechst 33342 Sigma H1399  
Giemsa stain Sigma GS1 Working solution is at 10% in distilled water
Super Glue-3 Loctite Loctite 9975-0880  

Referências

  1. Amino, R., Menard, R., Frischknecht, F. In vivo imaging of malaria parasites–recent advances and future directions. Curr. Opin. Microbiol. 8, 407-414 (2005).
  2. Heussler, V., Doerig, C. In vivo imaging enters parasitology. Trends. Parasitol. 22, 192-195 (2006).
  3. Amino, R., Thiberge, S., Blazquez, S., Baldacci, P., Renaud, O., Shorte, S. Imaging malaria sporozoites. in the dermis of the mammalian. 2, 1705-1712 (2007).
  4. Gueirard, P., Tavares, J., Thiberge, S., Bernex, F., Ishino, T., Milon, G. Development of the malaria parasite in the skin of the mammalian host. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 18640-18645 (2010).
  5. Sturm, A., Amino, R., van de Sand, C., Regen, T., Retzlaff, S., Rennenberg, A. Manipulation of host hepatocytes by the malaria parasite for delivery into liver sinusoids. Science. 313, 1287-1290 (2006).
  6. Gruring, C., Heiber, A., Kruse, F., Ungefehr, J., Gilberger, T. W., Spielmann, T. Development and host cell modifications of Plasmodium falciparum blood stages in four dimensions. Nat. Commun. 2, 165-165 (2011).
  7. Martin-Jaular, L., Ferrer, M., Calvo, M., Rosanas-Urgell, A., Kalko, S., Graewe, S. Strain-specific spleen remodelling in Plasmodium yoelii infections in Balb/c mice facilitates adherence and spleen macrophage-clearance escape. Cell. Microbiol. 13, 109-122 (2011).
  8. Linden, M. v. a. n. d. e. r., R, . A Plasmodium berghei reference line that constitutively expresses GFP at a high level throughout the complete life cycle. Mol. Biochem. Parasitol. 137, 23-33 (2004).
  9. Cormack, B. P., Valdivia, R. H., Falkow, S. FACS-optimized mutants of the green fluorescent protein. 173, 33-38 (1996).
  10. Dunn, K. W., Sandoval, R. M., Kelly, K. J., Dagher, P. C., Tanner, G. A., Atkinson, S. J. Functional studies of the kidney of living animals using multicolor two-photon microscopy. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 283, C905-C916 (2002).
  11. Zhong, Z., Petrig, B. L., Qi, X., Burns, S. A. In vivo measurement of erythrocyte velocity and retinal blood flow using adaptive optics scanning laser ophthalmoscopy. Opt. Express. 16, 12746-12756 (2008).
  12. Miller, M. J., Wei, S. H., Parker, I., Cahalan, M. D. Two-photon imaging of lymphocyte motility and antigen response in intact lymph node. Science. 296, 1869-1873 (2002).
  13. Bowdler, A. J. . The complete spleen. , (2002).
  14. Grayson, M. H., Hotchkiss, R. S., Karl, I. E., Holtzman, M. J., Chaplin, D. D. Intravital microscopy comparing T lymphocyte trafficking to the spleen and the mesenteric lymph node. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 284, H2213-H2226 (2003).
  15. Khandoga, A. G., Khandoga, A., Reichel, C. A., Bihari, P., Rehberg, M., Krombach, F. In vivo imaging and quantitative analysis of leukocyte directional migration and polarization in inflamed tissue. PLoS. One. 4, 4693-4693 (2009).
  16. Weiss, L., Geduldig, U., Weidanz, W. Mechanisms of splenic control of murine malaria: reticular cell activation and the development of a blood-spleen barrier. Am. J. Anat. 176, 251-285 (1986).
  17. Swirski, F. K., Nahrendorf, M., Etzrodt, M., Wildgruber, M., Cortez-Retamozo, V., Panizzi, P. Identification of splenic reservoir monocytes and their deployment to inflammatory sites. Science. 325, 612-616 (2009).
  18. Grayson, M. H., Chaplin, D. D., Karl, I. E., Hotchkiss, R. S. Confocal fluorescent intravital microscopy of the murine spleen. J. Immunol. Methods. 256, 55-63 (2001).
  19. Bajenoff, M., Glaichenhaus, N., Germain, R. N. Fibroblastic reticular cells guide T lymphocyte entry into and migration within the splenic T cell zone. J. Immunol. 181, 3947-3954 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Ferrer, M., Martin-Jaular, L., Calvo, M., del Portillo, H. A. Intravital Microscopy of the Spleen: Quantitative Analysis of Parasite Mobility and Blood Flow. J. Vis. Exp. (59), e3609, doi:10.3791/3609 (2012).

View Video