Un metodo per atterramento in modo condizionale espressione di una proteina bersaglio nella retina zebrafish adulto è descritto, che prevede l'iniezione di intravitreally Morpholinos antisenso e electroporating loro nella retina. La proteina risultante è abbattuto per diversi giorni, che consente di testare il ruolo della proteina nella rigenerante o retina intatta.
Molte malattie ereditarie degli occhi devastanti provocare cecità progressiva e irreversibile, perché gli esseri umani non possono morire o rigenerare i neuroni della retina malata. Al contrario, la retina zebrafish adulto possiede la capacità di rigenerare spontaneamente robusto qualsiasi classe neuronale che si perde in una varietà di differenti modelli danni alla retina, tra cui puntura di retina, ablazione chimica, concentrato ad alta temperatura, luce ed intenso trattamento 1-8. Il nostro laboratorio ampiamente caratterizzato la rigenerazione dei fotorecettori seguenti costante trattamento con luce intensa e interiore neuroni della retina dopo iniezione intravitreale ouabain 2, 5, 9. In tutti i casi, residenti glia Müller rientrare nel ciclo cellulare per la produzione di progenitori neuronali, che continuano a proliferare e migrare verso lo strato proprio della retina, dove si differenziano in neuroni carente.
Abbiamo caratterizzato cinque fasi diverse durante la rigenerazione della luce-damaged retina che sono stati evidenziati da specifici risposte cellulari. Abbiamo identificato diversi geni espressi in modo differenziale in ogni fase della rigenerazione della retina mediante l'analisi microarray mRNA 10. Molti di questi geni sono critici per lo sviluppo oculare. Per verificare il ruolo di ogni gene candidato / proteine durante la rigenerazione della retina, avevamo bisogno di sviluppare un metodo per limitare in modo condizionale l'espressione di una proteina candidato solo a volte durante la rigenerazione della retina adulta.
Oligo morfolino sono ampiamente utilizzati per studiare la perdita di funzione di proteine specifiche durante lo sviluppo di zebrafish, Xenopus, pulcino, mouse e tumori in xenotrapianti umani 11-14. Queste basepair modificato oligo con sequenza complementare di RNA per bloccare sia la giunzione o la traduzione del RNA bersaglio. Morpholinos sono stabili nella cellula e possono eliminare o espressione "knockdown" proteina da tre a cinque giorni 12.
Qui,descriviamo un metodo efficiente per l'espressione della proteina knockdown bersaglio nella retina zebrafish adulto. Questo metodo impiega lissamina-tagged Morpholinos antisenso che vengono iniettati nel vitreo dell'occhio zebrafish adulto. Utilizzando pinze elettrodo, il morfolino viene poi elettroporate in tutti i tipi di cellule della retina e dorsale centrale. Lissamina fornisce la carica sul morfolino per l'elettroporazione e possono essere visualizzati per valutare la presenza del morfolino nelle cellule della retina.
Knockdown condizionale nella retina può essere usata per esaminare il ruolo delle proteine specifiche in diversi momenti durante la rigenerazione. Inoltre, questo approccio può essere utilizzato per studiare il ruolo di specifiche proteine nella retina non danneggiato, in processi come la trasduzione visiva e di elaborazione visiva dei neuroni di secondo ordine.
Recentemente, due analisi microarray ha esaminato i cambiamenti di espressione genica che si sono verificati durante la rigenerazione sia della luce danneggiati retina o di una patch chirurgicamente asportato retina 10, 16. Entrambi gli studi hanno rivelato numerosi geni che mostravano significativi cambiamenti di espressione, sia aumentando o diminuendo, che probabilmente sono necessari per i diversi eventi che si verificano durante la rigenerazione della retina, come il rientro della glia Müller nel ciclo cellulare, ha continuato la proliferazione e la migrazione dei progenitori neuronali per lo strato di danneggiamento della retina, e la differenziazione dei progenitori neuronali nel tipo corretto delle cellule neuronali. Mentre un confronto diretto di questi due dati di microarray set rivelano geni candidati che possono essere coinvolte in questi eventi cellulari, in ultima analisi, questi geni e le proteine codificate devono essere testati per determinare se sono necessarie per la rigenerazione neuronale. Qui, descriviamo un potente perdita di funzione approccio alla conditionalmente knockdown proteine di interesse nella retina zebrafish adulto. Questa tecnica è stata utilizzata per studiare sia le proteine extracellulari e intracellulari, così come molecole di segnalazione, di fattori di trascrizione e proteine necessarie per la replicazione del DNA 17-19. Quindi, questo metodo ha notevolmente aiutato la nostra comprensione del meccanismo molecolare alla base adulto la rigenerazione della retina in zebrafish.
Abbiamo testato i parametri di elettroporazione multipli (tensione, numero di impulsi, il tempo tra gli impulsi) prima di un protocollo di successo è stato raggiunto. Un rapporto precedente di electroporating Morpholinos nella pinna caudale rigenerante zebrafish utilizzate 10 impulsi a bassa tensione (15 V) 20. Poiché la retina zebrafish adulto è circondata da più strati di cellule e non è facilmente accessibile agli elettrodi pinzetta, i parametri utilizzati nella pinna non hanno avuto successo in modo efficiente electroporating Morpholinos nella retina adulta. Al contrario, un alto voltaggio (100 V) spesso resulted nella morte ai pesci. Recentemente, 5 impulsi di 80 V è stato descritto per electroporate DNA plasmidico nella retina topo neonato cucciolo 21. Abbiamo trovato che un po 'meno intenso 2 impulsi di 75 V portato a elettroporazione successo del Morpholinos nella retina zebrafish adulto con la sopravvivenza del 100% del pesce trattata. Inoltre, abbiamo scoperto che la rimozione del più esterno (o esterno-la maggior parte), componente della cornea notevolmente aumentato l'efficienza elettroporazione. Aumentare il numero di impulsi può eliminare la necessità per la rimozione di questo tessuto, ma possono anche causare danni ai tessuti più grande. Studi ampio controllo hanno dimostrato che questi parametri non ha causato alcun decesso significativo delle cellule della retina o alterare le risposte specifiche cellulari osservato durante la rigenerazione dei fotorecettori 19. Guadagno di funzione studi non sono attualmente possibile usare questa tecnica in vivo, a causa della nostra incapacità di electroporate costantemente grandi acidi ribonucleico in tutte le rcellule etinal. Tuttavia, il successo di electroporating plasmidi nella retina del mouse in vivo e la retina zebrafish in espianti suggerisce che è ancora una possibilità in zebrafish 21, 22.
Uno dei punti di forza di questa tecnica è l'elettroporazione sembra introdurre efficacemente il morfolino in tutti i diversi tipi di cellule della retina. Tuttavia, un potenziale punto debole è che l'elettroporazione in modo efficiente consegnato il morfolino nel solo le regioni dorsali e centrale della retina. Un evento elettroporazione secondo verso la metà ventrale della retina risultati in termini di orientamento del bene a tutti i livelli, ma spesso provoca danni. Questa restrizione spaziale probabilmente era dovuto alla forma e il posizionamento degli elettrodi. L'uso di custom-designed elettrodi a forma di coppa che potrebbe essere collocato intorno agli occhi può migliorare questa debolezza. Questa limitazione spaziale della consegna morfolino limita l'uso di questa tecnica e preclude l'uso di un suc testh come l'analisi ERG che richiederebbe una valutazione globale della retina. Va notato che, come per qualsiasi esperimento morfolino, si consiglia di confermare i risultati con un secondo, non si sovrappongono morfolino per l'mRNA bersaglio. In alcuni casi, è possibile electroporate anche due Morpholinos diversi contemporaneamente per knockdown l'espressione di due proteine diverse. Abbiamo dimostrato questa abbattendo l'espressione sia del Pax6a Pax6b e proteine, individualmente e in combinazione 18.
Anche se abbiamo dimostrato l'utilizzo di questa tecnica con il nostro modello di danno luce, potrebbe probabilmente essere utilizzati per studiare la rigenerazione di altri modelli di danno 2-8 o utilizzato per esaminare la funzione delle proteine nella retina danneggiata. Per esempio, elettroporazione di Morpholinos potrebbero essere utilizzati per knockdown l'espressione di specifici canali o molecole di trasduzione del segnale nelle cellule gangliari e amacrine e quindi studiare la funzione di queste segnalazionipercorsi di elaborazione visiva. Tuttavia, come Morpholinos riguardano solo la traduzione di nuova proteina, si dovrebbe attendere fatturato proteina endogena si verifica prima che un test possa essere eseguito. A seconda della stabilità della proteina, che può variare da ore a giorni 18.
The authors have nothing to disclose.
Gli autori desiderano ringraziare la Vita Freimann Science Center e il Centro per il personale di ricerca Zebrafish per la loro cura e manutenzione del pesce zebra.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments |
CUY21-EDIT or CUY21-SC Square wave electroporator | Protech International | CUY21EDIT or CUY21SC | Both units work for this protocol |
3-mm diameter paddle electrodes | Protech International | CUY 650-P3 | |
Morpholino | GeneTools, LLC | Morpholino should be custom designed to your protein of interest | |
2-Phenoxyethanol | Sigma | 77861-1L | Anesthesia; dilute 1:1000 in fish system water for procedure, 1:500 for euthanasia |
Dumont #5 tweezers | World Precision Instruments | 14095 | Any #5 tweezers with work |
Dumont #5B tweezers with angled tips | World Precision Instruments | 500234 | Used to enucleate eye following euthanasia |
Sapphire blade, double edge lance, 1 mm wide, with Sapphire knife handle | World Precision Instruments | Blade: 500314 Handle: 500317 |
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Hamilton syringe with removable 33 gauge blunt-end needle | Hamilton company | Syringe: 87930 Needle: 7762-06 |
Remove needle that comes with syringe and replace with 33-gauge blunt-end needle |