Summary

Disseksjon og kultur av Chick Statoacoustic ganglion og Spinal Cord explants i Collagen Gels for neurite utvekst Assays

Published: December 20, 2011
doi:

Summary

Vi viser hvordan å dissekere og kultur chick E4 statoacoustic ganglion og E6 ryggmargen explants. Explants dyrkes i henhold til serum-frie forhold i 3D kollagen gels i 24 timer. Neurite respons er testet med vekstfaktor-supplert medium og med protein-belagt perler.

Abstract

Den sensoriske organer kylling indre øret er innerverte av perifere prosesser statoacoustic ganglion (SAG) nerveceller. Sensoriske organ innervasjon er avhengig av en kombinasjon av axon veiledning pekepinner 1 og overlevelse faktorer 2 ligger langs banen voksende axoner og / eller innenfor de sensoriske organ mål. For eksempel generert funksjonelle forstyrrelser med en klassisk axon veiledning signalveien, semaphorin-neuropilin, misrouting av otic axons 3. Også flere vekstfaktorer uttrykt i sensoriske mål i det indre øret, inkludert Neurotrophin-3 (NT-3) og Brain Avledet neurotrophic Factor (BDNF), har blitt manipulert i transgene dyr, igjen fører til misrouting av SAG axons fire. De samme molekylene fremme både overlevelse og neurite utvekst av chick SAG nerveceller in vitro 5,6.

Her beskriver vi og demonstrere in vitro metode er vi for tiden usynge for å teste responsen til chick SAG neurites til løselige proteiner, inkludert kjente morphogens som Wnts, samt vekstfaktorer som er viktige for å fremme SAG neurite utvekst og neuron overlevelse. Ved hjelp av denne modellen system, håper vi å trekke konklusjoner om effekter som utskilles ligander kan øve på SAG neuron overlevelse og neurite utvekst.

SAG explants er dissekert på embryonale dag 4 (E4) og kultivert i tredimensjonale kollagen gel henhold til serum-frie forhold i 24 timer. Først er neurite respons testet av dyrkning explants med protein-supplert medium. Så, for å spørre om punktkilder av utskilles ligander kan ha retningsbestemt effekter på neurite utvekst, er explants co-kultiverte med protein-belagt perler og analysert for evne til perle til lokalt fremme eller hemme utvekst. Vi inkluderer også en demonstrasjon av disseksjon (modifisert protokoll 7) og kultur av E6 ryggmargen explants. Virutinemessig bruk ryggmargen explants å bekrefte bioaktivitet av proteiner og protein-gjennomvåt perler, og for å verifisere arter kryssreaksjon med kylling vev, under samme kultur vilkår som SAG explants. Disse de vitro er praktisk for raskt screening for molekyler som utøver trofisk (overlevelse) eller tropic (retningsbestemt) effekter på SAG nervecellene, spesielt før du utfører studier in vivo. Videre tillater denne metoden testing av enkelte molekyler i henhold til serum-frie forhold, med høy neuron overlevelse 8.

Protocol

Oppskrifter Chick ringers 7,2 g NaCl 0,23 g CaCl 2 + 2H 2 O 0,37 g KCl 0,115 g Na 2 HPO 4 900 ml Vann (Tissue kultur grade) Merk: Juster pH til 7,4. Ta endelig volum til 1000 ml med vann. 10X PBS <table border…

Discussion

Vi presenterer en metode for å dissekere og kultur E4 SAG og E6 ryggmargen explants, fra kylling, under serum-free forhold. Denne prosedyren brukes i dag i vårt laboratorium for å studere effekter av ulike utskilles ligander på SAG neuron overlevelse og neurite utvekst. Novel aspekter av denne protokollen inkluderer bruk av et serum-free system for dyrking explants og bruk av perler dynket i vekstfaktorer for å studere effekter på SAG neurite utvekst. En perle metode som oss har blitt beskrevet for dama ryggmargen…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av National Institutes of Health Grant RO1DC002756 og Purdue Research Foundation. Vi takker Doris Wu og Wiese Chang for råd med eksperimenter og Rodney McPhail for hjelp med figurer.

Materials

Reagent Company Catalogue number Comment
Equipment

 

   
Dissection microscope

 

  We use a Leica M80 stereomicroscope with brightfield base illumination
Slide warmer

C.S. & E.

  Collagen polymerization
Chicken egg incubator

 

   
37°C/5% CO2 humidified cell culture incubator

 

   
 

 

   
Dissection Materials

 

   
Sylgard© coated petri dish

 

   
24-well cell culture plate

Corning

3526  
#5 Dumont forceps

Fine Science Tools

11252-30  
#55 Dumont forceps

Fine Science Tools

11295-51  
Stainless steel dissecting pins

Fine Science Tools

26002-10 Embryo pinning, fine dissection
Moria perforated spoon

Fine Science Tools

10370-17 Embryo harvest/transfer
200 µl wide mouth pipet tips

Dot Scientific Inc

118-96R Explant transfer
 

 

   
E4 and E6 chicken eggs

 

   
Chick Ringer’s solution

 

  Embryo harvest
HBSS

Sigma

H8264 SAG dissection
L15 medium

Sigma

L5520 Spinal cord dissection medium
Fetal calf serum

Atlanta Biologicals

S11150 Spinal cord dissection medium
Vannas Scissors

World Precision Instruments

501778 Spinal cord dissection
 

 

   
Collagen preparation

 

   
Rat-tail collagen Type I

BD Biosciences

354249 Explant culture
10X PBS (Sterile)

 

  To neutralize collagen
1N NaOH (Sterile)

 

  To neutralize collagen
Distilled water (Sterile)

 

  To neutralize collagen
pH indicator papers (6.0-8.1)

Whatman

2629-990 To check collagen pH
15 ml conical tubes

Dot Scientific Inc

818-PG  
500 µl wide mouth pipet tips

Dot Scientific Inc

119-R100 To pipet collagen
 

 

   
Explant culture

 

   
DMEM/F12 medium

Sigma

D8437 Explant culture medium
ITS+1

Sigma

I2521 Medium supplement
Penicillin-Streptomycin

Invitrogen

15140-122 Medium supplement
CNTF (rat)

Sigma

C3835 Medium supplement
NT-3 (human)

Sigma

N1905 Medium supplement
Purified mouse Wnt5a

R&D Systems

645-WN-010  
Affi-gel Blue gel beads

Bio-Rad

153-7302  
 

 

   
Immunohistochemistry

 

   
Paraformaldehyde

Sigma

P6148 Fixation
PBS

 

  Rinses
Triton X-100

Sigma

T9284 Blocking solution
Sodium azide

Sigma

S8032 Blocking solution
Calf serum

Invitrogen

16170-078 Blocking solution
Mouse monoclonal IgG2b anti-β Tubulin 1+II antibody

Sigma

T8535 Labels cell bodies and neurites
Alexa fluor 488 goat anti –mouse IgG2b antibody

Invitrogen

A21141 Detects β Tubulin antibody
Teflon micro spatula

VWR

57949-033 Release collagen gels from well

Referências

  1. Fekete, D. M., Campero, A. M. Axon guidance in the inner ear. Int. J. Dev. Biol. 51 (6-7), 549-549 (2007).
  2. Fritzsch, B. Development of inner ear afferent connections: forming primary neurons and connecting them to the developing sensory epithelia. Brain Res. Bull. 60 (5-6), 423-423 (2003).
  3. Gu, C. Neuropilin-1 conveys semaphorin and VEGF signaling during neural and cardiovascular development. Dev. Cell. 5 (1), 45-45 (2003).
  4. Tessarollo, L., Coppola, V., Fritzsch, B. NT-3 replacement with brain-derived neurotrophic factor redirects vestibular nerve fibers to the cochlea. J. Neurosci. 24 (10), 2575-2575 (2004).
  5. Avila, M. A. Brain-derived neurotrophic factor and neurotrophin-3 support the survival and neuritogenesis response of developing cochleovestibular ganglion neurons. Dev. Biol. 159 (1), 266-266 (1993).
  6. Bianchi, L. M., Cohan, C. S. Effects of the neurotrophins and CNTF on developing statoacoustic neurons: comparison with an otocyst-derived factor. Dev. Biol. 159 (1), 353-353 (1993).
  7. Juurlink, B. e. r. n. h. a. r. d. H. J. Chick Spinal Somatic Motoneurons in Culture. Protocols for Neural Cell Culture.. 59, (2001).
  8. Fantetti, K. N., Zou, Y., Fekete, D. M. Wnts and Wnt inhibitors do not influence axon outgrowth from chicken statoacoustic ganglion neurons. Hear. Res. , (2011).
  9. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-49 (1951).
  10. Bourikas, D. Sonic hedgehog guides commissural axons along the longitudinal axis of the spinal cord. Nat. Neurosci. 8 (3), 297-297 (2005).
  11. Charron, F., Tessier-Lavigne, M. Novel brain wiring functions for classical morphogens: a role as graded positional cues in axon guidance. Development. 132 (10), 2251-2251 (2005).
  12. Augsburger, A. BMPs as mediators of roof plate repulsion of commissural neurons. Neuron. 24 (1), 127-127 (1999).
  13. Lyuksyutova, A. I. Anterior-posterior guidance of commissural axons by Wnt-frizzled signaling. Science. 302 (5652), 1984-1984 (2003).
check_url/pt/3600?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Fantetti, K. N., Fekete, D. M. Dissection and Culture of Chick Statoacoustic Ganglion and Spinal Cord Explants in Collagen Gels for Neurite Outgrowth Assays. J. Vis. Exp. (58), e3600, doi:10.3791/3600 (2011).

View Video