Summary

Mesure de γHV68 infection chez les souris

Published: November 22, 2011
doi:

Summary

γ-herpèsvirus (γ-HVS) établir long de la vie la persistance dans leur hôte. L'infection de souris avec γ-HV68 offre une tractable génétiquement<em> In vivo</em> Modèle pour la caractérisation du cycle de vie / pathogenèse de γHVs. Ce protocole décrit la détection et la quantification de l'infection au γHV68 phases aiguës et latentes après l'infection par le formant plage, centre infectieuses, et des essais qPCR.

Abstract

γ-herpèsvirus (γ-VH) sont remarquables par leur capacité à établir des infections latentes de cellules lymphoïdes 1. La gamme d'hôtes étroite humaine γ-HVS, comme l'EBV et KSHV, a gravement entravé les études détaillées pathogènes. Murin γ-herpèsvirus 68 (γHV68) part importante des similitudes génétiques et biologiques avec les humains et les γ-HVS est un agent pathogène naturel des rongeurs muridés 2. En tant que tel, l'évaluation des γHV68 infection de la souris des souches consanguines à différents stades de l'infection virale constitue un modèle important pour la compréhension du cycle de vie virale et la pathogénèse au cours γ-HVS infection.

Après inoculation intranasale, γHV68 résultats d'infection aiguë de la virémie dans les poumons qui est ensuite résolue en une infection latente des splénocytes et des autres cellules, qui peuvent être réactivées pendant toute la durée de l'hôte 3,4. Dans ce protocole, nous allons décrire la façon d'utiliser le dosage de la plaque d'ânestitre s de virus infectieux dans les poumons homogénats sur des monocouches de cellules Vero à un stade précoce (5 – 7 jours) de la post-infection intranasale (ppp). Alors que l'infection aiguë est largement effacé 2-3 après l'infection semaines, une infection latente de γHV68 est établi autour de 14 dpi et maintenue plus tard dans la rate des souris. L'infection latente affecte généralement une très petite population de cellules dans les tissus infectés, par lequel le virus reste dormant et s'éteint la plupart de son expression génique. Splénocytes latente infectée par le virus spontanément réactiver après explantation dans la culture tissulaire, qui peut être récapitulée par un centre infectieuses (IC) d'essai pour déterminer la charge virale latente. Afin d'estimer la quantité de copies du génome viral dans le aiguë et / ou des tissus infectés latents, quantitatifs PCR en temps réel (qPCR) est utilisé pour sa sensibilité maximale et précision. Les analyses combinées des résultats de dosage de qPCR et de la plaque, et / ou le dosage IC va révéler les profils spatio-temporelle des virusla réplication et l'infectiosité in vivo.

Protocol

Le protocole suivant décrira l'étude de titres de virus et les charges du génome viral dans le cycle d'infection lytique et latente des γHV68 chez la souris, qui peuvent théoriquement être utilisés pour évaluer l'infection par d'autres virus de partage de mode de vie semblable à celle de γHV68. 1. Amplification du γHV68 Dégeler une ampoule congelée d'γHV68 de 37 ° C l'eau de bain. Ajouter inoculums viraux pour NIH3T12 ou la culture …

Discussion

γHV68 a été largement utilisé comme un modèle pour comprendre la pathogenèse de l'humain γ-HVS 2,4,5. Dans ce protocole, nous avons décrit trois méthodes couramment utilisées, y compris essai de plaque pour titre viral infectieux, test de circuits intégrés pour la charge virale latente, et qPCR pour la charge du génome viral, pour évaluer l'infection aiguë et latente de γHV68 après inoculation intranasale chez des souris.

Le dosage de la plaque a été lar…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier les conseils techniques et le soutien de Ren Soleil (University of California, Los Angeles) et Seungmin Hwang (université de Washington). Ce travail a été financé par la Fondation Baxter, National Institutes of Health subventions (R01 et R21 CA140964 AI083841 à C. Liang).

Materials

Material Name Preparation Procedure
Methylcellulose (MC) overlay medium for viral plaque assay
  1. Heat ~ 250 ml of distilled water in TC bottle to > 80°C (boiling for 3 min in microwave)
  2. Add gradually 2.5 g MC powder into heated water, stirring over low heat until dissolved.
  3. Autoclave immediately for 15 min at liquid cycle.
  4. Stirring the autoclaved MC media at 4°C overnight.
  5. Combine 250 ml MC media with 200ml 2 x MEM (Gibco-BRL) + 50 ml FBS to give 500 ml overlay media.
Fix/stain medium for plaque assay 0.2% (w/v) crystal violet in 20% ethanol.
ACK Lysis Buffer NH4Cl 0.15M, KHCO3 10mM, EDTA 0.1mM
Complete DMEM Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS; Invitrogen), 2 mM L-glutamine, and 1% penicillin-streptomycin (Gibco-BRL).

Table 1. Specific media used in this protocol

Name of the reagent Company Catalogue number
Ketamine Sigma-Aldrich K2753
Xylazine Sigma-Aldrich X1251
Methylcellulose Sigma-Aldrich M0512-250g
2 x MEM Life Technologies 11935
Cell strainer BD Faclon 352340
Omni tissue homogenizer OMNI International TH115
DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen 69504
iQTM SYBRH Green Supermix BioRad 170-8882
CFX96 real-time PCR system Bio-Rad 184-5072
Cell counter Bio-Rad 145-0001
Sorvall SA-600 Thermo Scientific 096-124022

Table 2. Specific reagents and equipment

Referências

  1. Damania, B., Choi, J. K., Jung, J. U. Signaling activities of gammaherpesvirus membrane proteins. J. Virol. 74, 1593-1601 (2000).
  2. Stevenson, P. G., Efstathiou, S. Immune mechanisms in murine gammaherpesvirus-68 infection. Viral. Immunol. 18, 445-456 (2005).
  3. Flano, E., Husain, S. M., Sample, J. T., Woodland, D. L., Blackman, M. A. Latent murine gamma-herpesvirus infection is established in activated B cells, dendritic cells, and macrophages. J. Immunol. 165, 1074-1081 (2000).
  4. Sunil-Chandra, N. P., Efstathiou, S., Nash, A. A. Murine gammaherpesvirus 68 establishes a latent infection in mouse B lymphocytes in vivo. J. Gen. Virol. 73, 3275-3279 (1992).
  5. Simas, J. P., Swann, D., Bowden, R., Efstathiou, S. Analysis of murine gammaherpesvirus-68 transcription during lytic and latent infection. J. Gen. Virol. 80, 75-82 (1999).
  6. Ganem, D. KSHV and the pathogenesis of Kaposi sarcoma: listening to human biology and medicine. J. Clin. Invest. 120, 939-949 (2010).
  7. Wen, K. W., Damania, B. Kaposi sarcoma-associated herpesvirus (KSHV): molecular biology and oncogenesis. Cancer. Lett. 289, 140-150 (2009).
  8. E, X. Viral Bcl-2-mediated evasion of autophagy aids chronic infection of gammaherpesvirus 68. PLoS. Pathog. 5, e1000609-e1000609 (2009).
  9. Marques, S., Efstathiou, S., Smith, K. G., Haury, M., Simas, J. P. Selective gene expression of latent murine gammaherpesvirus 68 in B lymphocytes. J. Virol. 77, 7308-7318 (2003).
  10. McCausland, M. M., Crotty, S. Quantitative PCR technique for detecting lymphocytic choriomeningitis virus in vivo. J. Virol. Methods. 147, 167-176 (2008).
  11. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. B cells regulate murine gammaherpesvirus 68 latency. J. Virol. 73, 4651-4661 (1999).
  12. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. Macrophages are the major reservoir of latent murine gammaherpesvirus 68 in peritoneal cells. J. Virol. 73, 3273-3283 (1999).

Play Video

Citar este artigo
Pirooz, S. D., Lee, J., Zhao, Z., Ni, D., Oh, S., Liang, C. Measurement of γHV68 Infection in Mice. J. Vis. Exp. (57), e3472, doi:10.3791/3472 (2011).

View Video