레이저 axotomy 시간 – 저속 영상 뒤에 것은 분석의 돌연변이의 효과를 민감한 방법입니다<em> C. elegans</em> 축삭 재생에. 고품질하지만, 저렴한 가격, 레이저 박리 시스템은 쉽게 대부분의 현미경에 추가할 수 있습니다. 15시간 시간이 지남에 저속 영상은 웜주의 고정이 필요합니다.
시간이 경과 현미경에 의해 다음 레이저 axotomy는 C로 축삭 재생의 phenotypes에 민감한 분석입니다 elegans 1. 이 분석의 주요 어려움은 레이저 박리 시스템 2,3을 구현하는 데 필요한 인식 비용 ($ 25 100K) 및 기술 전문 지식이다. 그러나 겸손한 비용 (<$ 10K)의 솔리드 스테이트 펄스 레이저는 대상 axons은 조직의 표면에 "가까운"입니다 투명 준비의 레이저 절제를위한 강력한 성능을 제공할 수 있습니다. 시스템의 건설과 정렬은 하루에 수행할 수 있습니다. 초점 콘덴서에서 절제 레이저 빛을 제공하는 광학 경로는 편리한 정렬 가이드를 제공합니다. 제거된 모든 광학과 중간 모듈은 절제 레이저에 헌신되며 광학 요소, 레이저 박리 세션 동안 이동하지해야한다는 보장 수 있습니다. 중간 모듈에서 이색성은 동시 영상과 레이저 박리 수 있습니다. 레이저 빔 T를 중심으로O는 초점 현미경의 콘덴서 렌즈에서 나가는 빔은 시스템의 초기 정렬을 안내합니다. 렌즈의 다양한 상태로 사용하고 선택한 객관적인 렌즈의 뒤쪽 구멍을 채울 수있는 레이저 광선을 확장하고 있습니다. 최종 정렬 및 테스트는 앞 표면 미러 유리 슬라이드 목표로 수행됩니다. 레이저 파워는 최소 크기의 절제 자리를 (<1um) 제공하도록 조정됩니다. 절제 장소는 이미지 창에 고정 머리카락을 건너 마지막 kinematically 탑재 거울 미세 조정 중심이다. axotomy에 대한 레이저 전원이 대상 슬라이드 (이것은 여러분이 사용하는 대상과 다를 수 있습니다)에 최소 절제 장소에 필요한보다 높은 약 10X 것입니다. 웜는 아가로 오스 패드 (또는 microfluidic 실 4)에 장착하여 레이저 axotomy 및 시간 – 저속 영상에 대한 고정하실 수 있습니다. 아가로 오스 패드는 쉽게 전자 레인지에 녹인 균형 식염수에서 10 % 아가로 오스와 함께 만들어집니다. 용융 아가로 오스의 방울은 유리 슬라이드에 배치하고 서로 평평합니다패드에 유리 슬라이드 두께 약 200 음 (인접 슬라이드에 시간이 테이프의 단일 레이어는 스페이서로 사용됩니다.) "Sharpie"캡은 13mm의 군복을 입은 직경 원형 패드를 절단하는 데 사용됩니다. 마취 (1ul Muscimol 20mM)와 Microspheres (크리스 송곳니 엔 개인 통신) (1ul 2.65 % 폴리스티렌 0.1 음 … 물속에) 그들이 왼쪽 측면에 누워되도록 지향 3-5 웜 뒤에 패드의 중심에 추가됩니다. 유리 coverslip이 적용됩니다 그리고 바셀린는 coverslip을 봉인하고 샘플의 증발을 방지하는 데 사용됩니다.
다른 레이저 시스템 3,5-11와 레이저 미세 몇 가지 좋은 토론이 있습니다. Femtosecond IR 레이저가 영상 시설과 관련된 경우 12 편리한 subcellular 레이저 절제의 "금 표준"입니다,하지만 그들은 개별 사용자에 대해 종종 너무 비용이 많이 드는 있습니다. 이 때문에 화상의 깊이 화상 샘플을위한 femtosecond IR 레이저가 필요한 경우 그때는 아마 레이저 axotomy 하나가 필요합니다. 표면의 30-50 음 내의 대상 axons 투명한 조직은 아마 높은 NA의 침지 렌즈를 통해 대상 20 uJ / 펄스 범위의 파란색과 녹색 펄스 레이저로 가능 있습니다. 특히 대상 축삭 증가의 깊이로 femtosecond 레이저와 비교하여 나노 및 피코 초 레이저로 더 많은 피해있을 것입니다. C.이 elegans은 투명 모든 axons은 표면의 20-30 음 내에 있습니다. 우리는 정기적으로 표면의 5 음 내에있는 모터 axons를 잘라. 우리는 또한 쉽게 도끼를 차단표피 표면으로부터 약 20 음하는 신경 링 내에서 기능. 우리는 어른 벌레의 직경을 통해 약 30-50 음 … 수 axons를 절단에 대한 제한을 발견했습니다. 그것은 여기에 설명한 레이저 박리 시스템이 대상 axons의 투명성과 깊이의 기준에 맞게 여러 가지 준비를 잘 작동한다고 가능성이 높습니다. 아직도, 그것은 femtosecond IR 레이저, 그 나노 및 picosecond 355 NM 및 532 nm의 레이저의 이론적 장점을 감안할 때, 조금 놀라운 것은 C로 레이저 axotomy에 대해 너무 잘 수행 elegans 6,13. 우리는 nanosecond 440 NM, nanosecond 532 NM, 그리고 femtosecond 레이저와 IR 레이저 axotomy에 대한 응답으로 축삭 재생에 차이를 볼 수 없습니다.
솔리드 스테이트 355 나노미터 자외선 레이저는 532 nm의 다이오드는 수동적 Q – 스위치 고체 레이저 펌핑과 같은 비용에 대해 있지만, 효율적으로 이러한 짧은 파장을 통과 하나 높은 능력이나 광학을 필요로합니다. 대부분의 광학은 보이는 400과 잘 수행하기 위해 설계되었습니다 -700 NM 라이트. 355 나노미터 레이저는 6 등 감소 플라즈마 임계값, 작은 스폿 크기, 그리고 효율적으로 대상으로 절제 레이저의 100 %를 직접 샘플 신호의 손실없이 GFP의 동시 이미징을 허용 것이다 긴 통과 이색성 같은 장점을 제공합니다. 블루 440 나노미터 레이저는 가시 광선 레이저 (표준 광학 및 안전과 좋은 성능) 작업의 장점을 유지합니다. 불행히도, DPP Q – 스위치 고체 440 nm의 레이저의 가격은 현재와 비슷한 전력 355nm 또는 532 nm의 레이저의 3 배 비용입니다. 우리는 C.위한 새로운 시스템을 설계했다면 elegans은 대상 깊이는 최소한 어디에, 우리는 1 UV 투명 렌즈 (355nm에서 50-70%의 투과율과 비용 40X 1.3na 석유 렌즈에 대한 약 $ 3,000) 및 5-10 uJ / 맥박을 생산 355 나노미터 레이저을 선택 것입니다 -20에 kHz에서.
축삭의 박리는 플라즈마 형성에 의한 것으로 생각됩니다. 짧은 펄스는 낮은 전력과 플라즈마 볼륨 w에서 플라즈마 임계값을 생산합니다 병이 6 작은 수 있습니다. 목표는 가장 낮은 전원 펄스 에너지를 조정하여 가장 작고 짧은 – 살았 플라즈마를 생산하는 것입니다. 큰 긴 plasmas이 캐비테이션 거품을 생성하는 것으로 세포를 둘러싼 손상. 우리는 일반적으로 가장 높은 빈도 (예 : 2.5kHz)에서 50-100에 대한 펄스를 사용하는 것을 절제를 발견하면 최상의 결과를 제공합니다. 이것은 손상이 점차 더 손상의 정도를 제어하는 펄스의 연속을 통해 통합될 수 있습니다 제안합니다. 빔을 정렬하고 정확하게 확장하는 경우 여기에 설명된 레이저 박리 시스템은 매우 용서입니다. 우리는 10 % 레이저의 파워 (0.3 MW의 평균 2,500 Hz에서에서 측정 및 1 uJ / 펄스 예상)에서 성인 벌레에 axons 절단 시작하고 14 % 전력을 통해 제한된화된 손상 절약하실 수 있습니다. 당신은 15~39% 레이저 파워 피해의 큰 영역을 볼 수 있지만, 오직 40 % 전력 (약 1 MW의 평균 2,500 Hz에서에서 측정) 위에 벌레 대형 캐비테이션 거품과 벌레의 표피 손상에 의한 폭발 않습니다.
e_content "> Steinmeyer 외. 2010이 종이, 레이저 박리 시스템을 구축을위한 훌륭한 리소스입니다. 리온 에이버리는 또한 저렴한 N2 가스 337 NM 레이저를 기반으로, 레이저 박리 시스템의 좋은 실용적인 설명을 이뤘고, 좋은 실천을 제공합니다 조언 (elegans.swmed.edu / Worm_labs / 애버리 /). 자신의 시스템을 설계할 때 먼저 현미경 목표로 절제 레이저를 대상으로하는 방법을 결정하기 위해 귀하의 현미경 담당자와 상담해야합니다. 귀하의 현미경이 진동 절연 테이블에 장착해야합니다 (뉴 포트, TMI, 토르). 브레드 보드의 상단 최적이지만, 견고한 스틸 맨은 여전히 자기 positioners와 함께 사용할 수 있습니다. 모든 광학 요소가 자리에 남아있을 수 있기 때문에 수직 범위에있는 전용 중개 모듈이 좋은 것입니다.하지만, 저렴하고 카메라 포트 (거꾸로) 또는 에피 형광등 포트에 연결된 "결합기"를 사용하기 더욱 편리있을 수 있습니다. 당신은 (에 다시 조리개와 투과율의 크기를 알아야 목적 렌즈의 blation 레이저 파장)은 당신이 사용하는 것입니다. 일단 레이저 (예 : Crylas, 가득하며, 크리스탈, 또는 CRC)는 정확한 광학 요소를 선택, 하드웨어 및 안전 장비와 관련하여 도움이 토르 또는 뉴 포트에 문의를 결정합니다. 우리는 공간을 절약하기 위해 이중 갈릴리 빔 확장기 결정하지만 간단 Keplerian의 확장기가 옵션 (f2/f1 = 팽창 계수)입니다. 사용자 정의 빔 확장기가 가장 비싼되지만, 뉴 포트, 토르, 그리고 레이저 제조 업체의 여러 우수한 품질의 상용 빔 확장기를 제공합니다. 일부 레이저 제조 업체는 비용 효율과 공간 절약있을 수 있습니다 설명서 및 전자 제어 attenuators를 제공하고 있지만, Glan – 톰슨 편광자 및 하프 웨이브 플레이트처럼 다목적 없습니다. 당신은 또한 레이저를 제어하는 방법을 결정해야합니다. 당신은 레이저 회사에서 제공하는 상업 TTL 발생기, 또는 소프트웨어를 사용, LabView 기반의 컨트롤러를 디자인할 수 있습니다. 특정 레이저 제조 업체 옵션을 논의. 십t "> 우리는 일반적인 가이드에만 사용이 하드웨어의 목록을 제공합니다. 시스템은 기존 이미징 시스템에 추가할 때 $ 15,000 달러의 비용이 여기에 설명된. 가까운 물리 부서에서 자주 실질적인 소개를 제공하기 위해 기꺼이 누군가를해야합니다 안전하게 무료 빔 레이저와 협력.고정 및 C. 시간 경과 영상을위한 대체 방법 elegans은 최근에 설명되어있다. 14
문제 해결
가장 어렵고 중요한 단계는 현미경의 광축 중심으로 확대 빔을 정렬합니다. 일단 당신이 센터에 최종 정렬에 대한 운영 미러를 사용하기 전에 현미경의 광학 축의 5 음 내에서가 정렬하려면 열심히해야 갈릴리 렌즈를 통해 중심과 확장된 광선을합니다. 현미경으로 빔을 정렬 운영 거울 과도하게 사용이 빔을 통해 축을 벗어 이동합니다팽창기. 해당 ND 필터와 함께 레이저 빔을 감쇠와 직접 반사 대상 (전면 표면 거울)에 레이저 빔 프로파일을 볼 수 각별히 조심을 사용합니다. (그것이 당신이 레일의 높이를 조정하는 데 필요한 위 / 아래 범위에 중심 수없는 경우) 당신은 부드럽게 정확 센터보기의 목적 60X 필드에 광선을하기 위해 현미경을 슬쩍 찌르다 수 있습니다. 빔 프로파일이 정확하게 중심 원형이다 빔과 대칭 "플레어"를 제공하기 위해 현미경 광학 축을 정렬하는 데 사용할 수 있습니다. 비대칭 불을 현미경 축이 완벽하게 (또는 레일 레벨되지 않습니다) 정렬되지 나타냅니다. 마지막으로, L3를 조정하고 빔의도 및 대칭 확장과 수축이 나타납니다. 가장 작은 지점에 레이저 빔을 초점 L3 조정 후 대상 표면에 정확히 현미경을 집중합니다. 이제 LSCM 또는 CCD 시스템을 통해 몇 군데와 절제 자리 이내로 때 레이저 빔을가 중심의 5 음 사이는 것을 발견한다Z의 초점 1um.
당신이 찾아내는 경우에 당신은 벌레를 "폭파"또는 지속적으로 문제가 가장 가능성이 절제 레이저의 미세 정렬됩니다 axons를 잘라 대형 캐비테이션 거품을 생성하고 있습니다. 최소 (<500nm)가 절제 명소가 Z 초점 (L3 렌즈 컨버전스를 조정)하고 XY 신탁 지점 (마지막 kinematically 장착된 거울로 조정)에 현지되어 있는지 확인하십시오.
가까이 표면에 axons을 타겟팅하면 더 적은 레이저 전원을 필요합니다. 마찬가지로, 작은 동물 (L1 및 L2)은 성인에서 동일한 axons을 타겟팅에 비해 axotomy을위한 더 적은 레이저 전원을 필요합니다.
당신의 야생 유형 axons이 재생 또는 axons의 표백제하지 않으면 당신은 이미징 레이저 전원을 감소하거나 샘플링 속도를 감소 시도해야합니다. 당신의 벌레가 죽어거나 될 경우 병약한 1 % 단계에서 %의 아가로 오스를 줄여보십시오. 당 높은 사용하는 경우이 종종 그들이 죽는 원인이되므로이 장착 벌레 후 coverslip을 이동하지 있는지 확인centage 아가로 오스와 microspheres.
당신의 벌레가 시간 경과 세션 중에 파열 또는 죽으면 그것으로 인한 것입니다 : 1. 아가로 오스 비율이 너무 높습니다. 2. 절제 레이저로 표피 손상. 3. 장착 후 coverslip의 운동. 표피에 손상이 잘못에있다면 그것은 단지 절제 레이저 타겟으로 탑재된 웜 영향을 미칩니다.
당신의 벌레가 시간 경과 세션 중에 너무 많이 움직이면 0.5 % 단계의 비율 아가로 오스를 늘려보십시오. 건강한 웜의 건강한 axons는 항상 "적극적"이며 형광의 일관된 수준을 표시합니다. 이 형광 또는 활동에 갑자기 감소를 볼 경우 웜은 죽어 있거나 죽어있다. 여러 페르시 또는 조각 axons 죽어가는 혹은 죽은 벌레의 확인 서명이 있습니다.
당신은 전체 시간 저속 세션 동안 초점에 axons를 지키는 문제가있다면 여러 가지 문제가있을 수 있습니다. 처음 10 H 이상의 유리 슬라이드에 영상에 의해 불활성 샘플을 당신의 무대 드리프트를 확인RS. 몇 미크론 드리프트는 열 불안정으로 인해 수도 있지만 이상 5 음 아마도 현미경으로 기계적 문제로 인해 발생합니다. 장착에 문제가 더 일반적입니다. 시간의 경과를 시작하기 전에 마운트 웜 30 분 동안 현미경 스테이지와 평형합시다. 귀하의 바셀린의 인감이 시간 저속 세션 과정 중에 누출을 개발하지 않았 있는지 확인하십시오.
The authors have nothing to disclose.
이 연구는 국립 과학 재단 (National Science Foundation), 신경 과학에 대한 일행 기증 기금, 크리스토퍼와 다나 리브 재단과 Amerisure 자선 재단에 의해 지원되었다.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
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535 nm Laser | Crylas | FDSS532Q3 | (TEEM, Crystal, and CRC also offer comparable lasers) |
All optics and hardware | (Thor offers comparable optics and hardware) | ||
SUPREMA Optical Mount, 1.0-in diameter | Newport | SS100-F2KN | 2 |
1″ diameter post, 1″ height | Newport | PS-1 | 1 |
1″ diameter post fork | Newport | PS-F | 1 |
Achromatic Zero-Order Wavel Plate, ½ Wave Retardation, 400-700nm | Newport | 10RP52-1 | 1 |
Rotation Stage, 1″ Aperature | Newport | RSP-1T | 1 |
1″ diameter post, 1″ height | Newport | PS-1 | 1 |
1″ diameter post fork | Newport | PS-F | 1 |
Glan-Laser Calcite Polarizer, 430-700nm | Newport | 10GL08AR.14 | 1 |
Polarizer Rotation Mount | Newport | RM25A | 1 |
¼” spacer for 1″ diameter post | Newport | PS-0.25 | 1 |
½” height, 1″diameter post | Newport | PS-0.5 | 1 |
Fork, 1″ diameter post | Newport | PS-F | 1 |
Beam Dump | Newport | PL15 | 1 |
Microscope Objective Lens Mount | Newport | LH-OBJ1 | 1 |
1″ diameter post, 1″ height | Newport | PS-1 | 1 |
1″ diameter post fork | Newport | PS-F | 1 |
High-Energy Nd:YAG Laser Mirror, 25.4 mm Diameter, 45°, 532 nm | Newport | 10Q20HE.2 | 4 |
SUPREMA Optical Mount, 1.0 inch diameter, clearance mounting hole | Newport | SN100C-F | 2 |
High Precision Knob Adjustment Screw, 12.7mm travel, 100TPI | Newport | AJS100-0.5K | 4 |
Thread adaptor, ¼-20 male, 8-32 female | Newport | SS-1-B | 2 |
Rod Clamp for 1.5 inch diameter rod | Newport | 340-RC | 2 |
Rod, 14 inch (35.5 cm) tall | Newport | 40 | 1 |
Rail carrier for X26, square 40mm length | Newport | CN26-40 | 4 |
Steel Rail, 384mm (15″) length | Newport | X26-384 | 1 |
Rod Platform for 1.5 inch diameter rod | Newport | 300-P | 2 |
Rod, 14 inch (35.5 cm) tall | Newport | 40 | 2 |
Plano-Concave Lens, 12.7mm diameter, -25mm EFL, 430-700nm | Newport | KPC025AR.14 | 2 |
Plano-Convex Lens, 25.4mm diameter, 50.2mm EFL, 430-700nm | Newport | KPX082AR.14 | 1 |
Plano-Convex Lens, 25.4mm diameter, 62.9mm EFL, 430-700nm | Newport | KPX085AR.14 | 1 |
Fixed Lens Mount, 0.5″ diameter, 1.0″ Axis height | Newport | LH-0.5 | 2 |
Fixed Lens Mount, 1.0″ diameter, 1.0″ Axis height | Newport | LH-1 | 2 |
Microspheres 0.1um | Polysciences | 00876 | |
Agarose | RPI | A20090 | EEO matters |
Muscimol | Sigma | M1523 |