Summary

Биопробы для мониторинга резистентности к инсектицидам

Published: December 30, 2010
doi:

Summary

Эта рукопись демонстрирует и обсуждает методы, используемые для обследования пестицидов восприимчивость и обнаруживает сопротивление контакта и системных пестицидов в членистоногих вредителей.

Abstract

Вредителей устойчивости к пестицидам представляет собой растущую проблему, поскольку пестициды являются неотъемлемой частью высокодоходных сельскохозяйственного производства. Когда несколько маркировки продукции для отдельных вредителей в определенной системе культуры, варианты химического контроля ограничены. Таким образом, тот же продукт (ы) используются многократно и постоянное давление отбора размещается на вредителя. Есть как финансовые, так и экологические издержки, связанные с развитием устойчивых популяций. Стоимость пестицидов сопротивления, по оценкам, около $ 1,5 млрд в год в Соединенных Штатах. В настоящем документе будут описаны протоколы, используемые в настоящее время для контроля членистоногих (особенно насекомых) населения, для развития резистентности. Взрослый пробирку используется для измерения токсичности связаться инсектициды и модификация этого теста используется для завода-системных инсектицидов. В этих биопробы, насекомые подвергаются технического класса инсектицидов и ответы (смертность), записанные в определенном постконтактной интервала. Данных о смертности подвергаются Вход анализа дозы пробит для получения оценки смертельная концентрация, которая обеспечивает смертности на 50% (LC 50) из целевых групп населения и ряд доверительные интервалы (CL) в качестве оценки изменчивости данных. Когда эти данные собираются для целого ряда инсектицидов-уязвимых групп населения, ЛК 50 может использоваться в качестве исходных данных для будущих целей мониторинга. После населения были выставлены продукты, результаты можно сравнить с ранее определенным ЛК 50 использованием той же методологии.

Protocol

1. Введение Производство пищевых продуктов стало чрезвычайно важное значение с осознанием того, что к 2025 году мир достигнет населения 8040 миллионов человек 1. Там будет необходимо предоставить большее количество продовольственных культур, чем в настоящее время производится. Наличие достаточных пища не будет способна без применения средств защиты растений, таких как пестициды, чтобы увеличить количество урожайности сельскохозяйственных культур и поддержания качества. На основе исторических и текущих зависимости от пестицидов, экземпляры пестицидов сопротивление будет продолжать иметь место и быть представлены в научной литературе. Вредителей устойчивости к пестицидам проблематично, потому что продукты являются неотъемлемой частью высокодоходных и высокого качества продукции сельского хозяйства. Тем не менее, злоупотребление и / или неправильное использование пестицидов может привести к развитию резистентности, которая может иметь пагубные последствия для производства сельскохозяйственных культур. Вредители (например, насекомых, сорняков, патогенов и т.д.) развивается устойчивость с помощью различных механизмов, но основным движущим фактором для развития резистентности является отсутствие зарегистрированных пестицидов 1 с независимыми способами действия доступны для использования. Когда несколько маркировки продукции для отдельных вредителей в определенной системе культуры, варианты химического контроля ограничены. Таким образом, такие же химические (ы) используется многократно и постоянное давление отбора размещается на вредителя. Эта проблема усугубляется, когда вредитель имеет несколько поколений в один год, и каждое поколение подвергается воздействию пестицидов. Есть и финансовые, и enrivornmental расходы, связанные с сопротивлением 2. Пешт сопротивления ведет к повышению ставок и более частое применение пестицидов, необходимых для достижения удовлетворительного контроля. Потери урожая могут произойти даже после увеличения использования пестицидов из-за неспособности контролировать вредителя. Пиментел 2 оценкам эти затраты пестицидов сопротивления в Соединенных Штатах составляет примерно $ 1,5 млрд в год. Обследование пестицидов восприимчивость среди популяций вредителей является проактивный подход для обнаружения любой сдвиг в инсектицид производительности и обеспечения заблаговременного предупреждения изменить стратегию химического контроля. Изменяя общие стратегии ИПМ, жизнеспособность данного пестицида может быть продлен, что, в свою очередь, имеет важное значение для сельского хозяйства и впредь оказывать достаточно пищи и волокна для всего мира. Эта статья будет описывать протокол, который может быть использован для мониторинга инсектицид восприимчивости и обнаружить развитие устойчивых к инсектицидам групп населения, используя взрослых пробирку 3 для контактных инсектицидов и модификации этого теста на заводе системные инсектициды 4. 2. Методы 2,1 безопасности Заявление Использование надлежащих мер предосторожности очень важно при работе с инсектицидами. Проконсультируйтесь с данными по безопасности материалов (MSDS) для принятия соответствующих средств индивидуальной защиты (СИЗ) перед работой с пестицидами. Специальная подготовка лаборатории по обработке пестицидами в лаборатории должны быть необходимые персонала, прежде чем пытаться любой биопробы. 2.2 Создание исходного раствора Разработка исходного раствора известной концентрации от источника инсектицид активного ингредиента (AI). Все желаемой концентрации включены в качестве лечения в биопроб будут сделаны из оригинального исходного раствора. Для интереса этой статьи, 100mls от 100 мкг / мл раствора будет развиваться как маточный раствор, однако, любой концентрации может быть разбавлен с этой исходной концентрации. Настраивает количество технического ИИ класса следует оценивать на основе процентной чистоты. Сумма, подлежащая весил = (объем сделать) Х ([# мкг / мл] / [% purity/100]) Например, это потребует 10152.284 мкг технического ИИ, чтобы сделать 100 мл 100 мкг / мл раствора инсектицида технических степени 98,5% чистоты: (100 мл) Х ([100μg/ml] / 0,985) = 10152,284 мкг 2.2.1 взрослых флакон тест для контактными инсектицидами Частично заполнить мерную колбу с ацетоном и весят регулировать количество инсектицида AI. Промыть вес лодки с ацетоном в колбу, чтобы удалить все инсектицид из весят лодке. Заполните мерную колбу на выпуск линии с помощью ацетона. Большинство решений состоявшегося в холодильнике будет поддерживать деятельность без заметного снижения эффективности в течение приблизительно одного месяца. 2.2.2 Модификация взрослых пробирку для системных инсектицидов Интоксикация насекомых с системными инсектицидами заметно отличается от этого контакта продуктов. Системные продукты как правило, должны поступать в организм насекомого, чтобы стать активными, а не насекомых, имеющих прямое exposurе продукт как с контактными инсектицидами. Таким образом, взрослый тест флакон был изменен для того, чтобы системные инсектициды для тестирования. Вес А. И. необходимые для маточного раствора рассчитывается аналогично, которые упомянуты в разделе 2.2. Методология аналогична, за исключением А. И. растворяют в 10% по весу меда: водный раствор. Это решение должно быть принято в течение 24 часов после начала биопроб. Если технический сорт материала не растворимые в воде, высокой концентрацией инсектицида решение может быть сделано с помощью ацетона, так что только небольшой объем инсектицида: ацетон добавляют мед: водный раствор 4. 2,3 Определение диапазоне концентраций и развитие концентрации Определение соответствующих концентрациях, необходимых для создания диапазон ответов для биопроб может быть затруднено. Несколько репликации могут быть необходимы для определения диапазона концентраций, и это делается методом проб и ошибок. Кроме того, диапазон может изменяться с течением времени, если население изменения уровня восприимчивости. Многие другие факторы следует учитывать при установлении окончательной концентрации и включают в себя: семейство насекомых, класс инсектицидов, размер насекомого, и т.д. Ранее были опубликованы результаты тестов взрослых флакона может помочь с изначального выбора инсектицида концентрациях. Биопробы были опубликованы для: Hemiptera: Aleyrodiidae 5-6, Aphididae 7, Pentatomidae 8-10 и 11-14 Miridae; Thysanaptera: Thripidae 15; Coleoptera: Brentidae 16, Curculionidae 17, 18-19 и Coccinellidae Cybocephalidae 19; Diptera: Culicidae 20; Lepidoptera: листоверток 21 и 3 совок, 22-26; Hymenoptera: Braconidae 7,18, Ichneumonidae 26-27, Aphidiidae 18, Encyrtidae 7 и Aphelinidae 18. Концентрации принимаются на основе «Х» мкг / мл. Однако, когда флаконы готовят к взрослой пробирку, только 0,5 мл будет добавлен в каждом флаконе, поэтому концентрация флакон наполовину концентрация сделаны. Как только концентрация выбраны, следующее уравнение может помочь в определении количества раствора добавлены, чтобы сделать нужной концентрации. (С1) (V1) = (C2) (V2) Где С1 концентрации исходного раствора; V1 является объем биржевых необходимы, чтобы сделать новый концентрации; С2 концентрации в стадии разработки; и V2-объем новых концентрации. Например, 5mls из 100μg/ml маточного раствора необходимо, чтобы сделать из 100mls 5μg/ml. Это 5μg/ml решение привело бы во флаконах покрытием при концентрации 2.5μg/vial. 5mls = [(5μg/ml) (100mls)] / (100μg/ml) 2.3.1 взрослых флакон тест для контактными инсектицидами Частично заполнить объемный flaks, и аликвоту расчетного количества исходного раствора необходимо сделать нужной концентрации. Заполните мерную колбу с ацетоном окончания строки и перейдите к разделу 2.4 или печать с парафильмом М (Alcan Inc, Нина, штат Висконсин) для хранения в холодильнике для последующего использования. Большинство решений хороши на 1 месяц. 2.3.2 Модификация взрослых пробирку для системных инсектицидов Этот процесс так же, как уже упоминалось в разделе 2.3.1, за исключением 10% по весу меда: водный раствор заменяется ацетоном. Смешайте мед достаточно: водный раствор, чтобы сделать все необходимые концентрации. Эти решения должны быть использованы в течение 24 часов после его приготовления. 2,4 Подготовка Флаконы 2.4.1 взрослых флакон тест для контактными инсектицидами Если концентрации были храниться в холодильнике, позволяют нагреться до температуры окружающей среды. Объем ацетона изменения в зависимости от температуры, которые могут повлиять инсектицид концентрации. Цветовой код 20 мл стеклянных флаконах (установленный для винтовых колпачков) для концентраций с использованием краски или маркерами. Отрегулируйте повторять дозаторов для доставки 0.5ml/concentration. Начало работы с ацетоном контроля, следующий с низкой концентрацией и продолжается с увеличением концентрации пока все концентрации были использованы. Налейте примерно половину объема раствора, как фактическое количество флаконов лечиться (то есть, 20mls на 40 флаконов) в небольшой стакан. Когда раствор не используется, закройте его, чтобы минимизировать испарения, которые могут вызвать изменения в концентрации. Ничья в раствор инсектицида повторять пипетки и обойтись 0,5 мл раствора в отдельных стеклянных флаконах. Сразу после лечения, стеклянные пузырьки размещаются на коммерческой горячим роликом собаки. Как свою очередь, ролики, стеклянные флаконы вращать и ацетон испаряется, оставляя внутри флакона покрыты техническими инсектицид класса. Тепло может гegrade инсектицид, поэтому важно, чтобы тепло быть выключен. Это может быть сделано либо путем отключения нагревательного элемента на модели, которая нагревает и рулонов одновременно и находится под контролем того же коммутатора или с помощью модели горячим роликом собака, которая самостоятельно функционирует переключатели для нагревательного элемента и роликов. Избегайте лечения более чем флаконы ролик имеет место; ацетон может испариться, прежде чем стеклянные флаконы вращаются, и они не могут получить даже покрытие на стенах флакона. Разрешить флаконах вращаться, пока все ацетон испарился. Там, может быть, тонким слоем ацетона конденсата на стенах флакона, поэтому флаконы должны быть рассмотрены в индивидуальном порядке. Время, необходимое для рулона флаконах изменяется в зависимости от лабораторных условиях. Как только флаконы сухие, кепке и хранить их либо в охлажденном или темных условиях. Насекомые были замечены опираясь на крышки с коническими вкладышами или порванные лайнеров фольги, которые висят под губу флакон (то есть, избегая обрабатываемой поверхности), поэтому важно использовать ООН подкладке крышки. Любой оставшийся раствор не используется для подготовки флаконов следует утилизировать должным образом. Решение остаться в мерную колбу можно уплотнять парафильмом и хранить в холодильнике. Дата флаконах, когда они готовы, потому что различные инсектициды разные жизни полке. Например, пиретроид покрытием флаконах хорошо в течение приблизительно одного месяца, тогда как флаконы покрыты более нестабильной инсектицид, как и фосфорорганических, есть полки жизни двух недель или менее. 2.4.2 модифицированный тест взрослых флакон для системных инсектицидов Цветочные пены необходимо, чтобы служить в качестве субстрата для доставки раствор инсектицида для насекомых 4. Вырезать цветочные пены (12 мм Х 12 мм) части, используя пробку буром. Разместите один кусок цветочные пены в стеклянных флаконах описано выше. Заполните повторять пипетка скорректированы для доставки 0,5 мл раствора и обойтись на цветочной пены. Этот объем жидкости должен насытить часть цветочной пены, но не должна превышать уровень пены в флаконе. Снова работа в последовательности из-под контроля (10% по весу меда: водный раствор только) и самой низкой до самой высокой концентрации. 2.5. Хранение Флаконы 2.5.1 взрослых флакон тест для контактными инсектицидами При хранении инсектицид покрытием флаконы, знать свойства инсектицида. Различные инсектициды имеют разные требования хранения данных, такие как: пиретроиды являются светочувствительными и может храниться при комнатной температуре, но в темноте, однако, фосфорорганические инсектициды чувствительны к перепадам температур, и их необходимо хранить в морозильной камере. Если инсектициды должны храниться в морозильнике, то они должны быть прогреты до комнатной температуры, прежде чем подвергать насекомых. 2,6 биопроб Сбор насекомых для тестирования. Этот процесс может быть сделано с помощью феромонов наживкой ловушки, размах сети, или любых других средств массового захвата. Насекомые должны быть проведены в течение 8-24ч для обеспечения естественной смертности происходят пострадавшим во время процесса сбора, обеспечивают их продуктами питания и влаги источника в этот период. Испытание 10-25 насекомых в концентрации (10 минимум); большее количество насекомых испытания, более надежный набор данных будет. При выборе насекомых для биопроб, выберите здоровых, активных людей и выбросить вялыми или ненормальных людей. Место насекомых в флаконах, что они подвергаются полный спектр концентраций, а не только одной концентрации в то время. Эта процедура позволит предотвратить размещение самых здоровых и активных людей в одном или нескольких концентраций. Кроме того, если это не возможно провести эксперимент с минимум 10 насекомых в концентрации, выставить как можно больше для каждой концентрации. Затем собрать больше насекомых из той же области образца в течение короткого времени (две-три недели) и повторить эксперимент. Некоторые насекомые могут потерять чувствительность (сборка сопротивления), как прогрессирует сезоне урожай, поэтому реакция людей, собранных в начале весны могут отличаться от тех, собранные осенью 28. Разработка критериев для оценки смертности. Наиболее часто используемые критерии, используемые для классификации насекомых, умирающих или умерших отсутствие скоординированного движения. Эти наблюдения могут включать неспособность самого права, если их поместить на его спинной поверхности, не в состоянии поддерживать скоординированное полет 1м или отсутствие скоординированного движения при легком ткнул тупым предметом. Если человек может само право, но падает, нет скоординированного движения; насекомого следует считать мертвым. Насекомого могут испытывать трудности восстанавливающее себя на гладкой поверхности, поэтому, возможно, необходимо обеспечить насекомых поверхности так, чтобы он смог получить тягу необходимо само право. Запись числавыживших и умерших лиц для расчета выживаемости для каждой концентрации. 2.6.1 взрослых флакон тест для контактными инсектицидами Место насекомых (ы) в пузырек и безопасный колпачок свободно. Крышка должна предотвратить насекомых убежать, но быть достаточно свободной, чтобы поток воздуха. Для большинства насекомых биопробы, только одно насекомое находится в каждом флаконе, однако, мелких насекомых, например, белокрылки и трипсов, могут подвергаться в размере как минимум 30 особей на флакон 6, 15. Место флаконы вертикально при комнатной температуре до насекомых оцениваются на смертность в конечной точке биопроб. Выдержки раз может отличаться с видами и, возможно, инсектицид 3,5-27. В процессе создания начального уровня токсичности новых насекомых или химические, контролировать предметы в нескольких запланированных временных точках после заражения. Экзамены могут быть прекращены, когда смертность в наибольшей концентрацией на 100% при сохранении высокой выживаемости (<10% смертность) в не обработанных инсектицидом контроля. Если 100% смертность не будет достигнут на самых высоких концентраций с высокой выживаемости в контрольных, биопроб следует повторить с использованием целого ряда более высоких концентрациях. В идеале, уровни смертности должна возрастать по мере увеличения концентрации инсектицида. Некоторые насекомые, при воздействии в течение 24 часов, требуют источник влаги (например, небольшой кусочек растительного материала) 12. При работе с тонким насекомых, это выгодно, чтобы определить, как долго насекомых могут выжить в пузырек без источника влаги до инсектицидов воздействия на взрослого пробирку. Эта информация может быть определена путем размещения насекомое в флакон с и без влаги источника и контроля за его выживание в течение долгого времени, прежде чем проводить исследования фактических инсектицида. 2.6.2 модифицированный тест флакон для взрослых Системные Инсектициды До начала биопроб, определить, если насекомое может кормить и выжить на цветочной пены насыщенной медом: водный раствор при отсутствии инсектицида. Место насекомых во флаконах с цветочной пены насыщенной с медом: только вода (или мед: вода с большим объемом ацетона, использованные при подготовке концентраций с не-растворимые в воде технических инсектицид класса) и монитор выживаемости в течение нескольких дней. Эта модификация взрослых пробирку только были рассмотрены с Miridae 4 и Pentatomidae 29, поэтому определяющим продолжительность испытания требует больше экспериментов, чем для биопроб инсектицид контакта. Например, Lygus lineolaris (Palisot де Бовуа) была оценена на смертность в течение 24 часов после воздействия тиаметоксам, но в течение 72 часов имидаклоприд 4. Смертность Oebalus pugax F. был оценен в 96 часов под воздействием dinotefuran 29. Таким образом, насекомое выживаемости в контрольных флаконы должны быть стабильно высоким в течение нескольких дней до точной рейтинге смертности от инсектицидов интоксикации могут быть сделаны. Место насекомых (ы) в сцинтилляционный флакон с насыщенным цветочным пены. Вместо того, чтобы уплотнения флаконов с крышками, печать флаконах с ватным тампоном. Место флаконы вертикально при комнатной температуре до насекомых оцениваются на смертность. Как упоминалось ранее, уровень смертности на регулярной основе. Экспертиза может быть прекращено при наличии 100% смертности в наибольшей концентрации с высокой выживаемости (<10% смертность) в элементе управления. Это может быть необходимо для проверки дополнительной концентрации. 2.6.3 Анализ данных Правильный код для смертность в контрольной лечение с использованием формулы в соответствии с Abbott 30. Исправлено смертности (%) = ((контроль% выживания – выживания% лечение) /% выживаемости контроля) х 100 Анализ данных с использованием пробит Вход Доза для определения летальной концентрации, не дождавшись ответа 50% населения (LC 50) и установить 95% доверительный интервал (CL). Много программ для определения того ЛК 50 (SAS: PROC пробит 31, Поло-Плюс 32). 3. Примечания Работа с ацетоном и инсектициды под отрицательным потоком воздуха капотом. При заполнении мерные колбы, то лучше иметь два мыть бутылки ацетона. Один вымыть бутылку, которая была приспособлена для быстрой доставки жидкостей и один для медленной доставки. Удалите часть доставки руку, чтобы создать большее открытие и эта бутылка может быть использована для доставки больших объемов быстро. Как только ацетон приближается к окончанию строки перейдите бутылки и использовать вымыть бутылку с медленной доставки, чтобы иметь больше контроля над сумма, которую разливают. Если колба заполнена выше окончания линии, оставьте довершение и позволяют ацетона испариться до окончания линии. Обратите внимание на количество урожденнойДед из маточного раствора, необходимые для подготовки концентрации, т. е., если вы заполните колбу ¾ путь, но нужно добавить 30 мл, вы можете перейти окончания линии.

Discussion

ЛК 50 значение может быть использовано для признания в качестве базовой восприимчивость целевой группы населения (с). Значение этого данные могут быть в будущих опросах мониторинга или для непосредственной целью сравнения текущих результатов, что и ранее определенных ЛК 50 для определения восприимчивости целевой группы населения сместился. Фактические значения ЛК 50 можно сравнить среди групп населения, путем исследования 95% доверительный интервал: если верхний и нижний пределы не перекрываются, то вполне вероятно, что население испытывает значительные изменения в восприимчивости и в некоторых ситуациях является показателем сопротивления 33. LC 50 с также может быть использован для изучения сезонных изменений в инсектицид esusceptibilitye 28, или сравнить ответы между видами или инсектициды И. С. Значительная работа также использовать эти данные для сравнения ответов мужчин и женщин 10 или между взрослыми и незрелых стадиях, 10,34. Иногда доверительные интервалы широкой или не могут быть рассчитаны. Чтобы получить жесткий доверительными интервалами проводить биопробы с большим количеством насекомых и / или более концентрациях.

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить Хлопок Объединенной Программы государственной поддержки # 08-317MO, USDA / CSREES SR-IPM Грант 2009-34103-20018 и Landis Международной для финансирования научных исследований, относящихся к этой публикации.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
50-100 ml glass beaker        
Volumetric flask with stoppers (can use the amber colored flasks for light sensitive pesticides such as pyrethroids)        
20ml glass scintillation vials with un-lined lids        
A method for color coating vials (paint or markers)        
Acetone        
Commercial hotdog roller (heat element disconnected)        
2 wash bottles (one modified such that the opening is large for fast delivery of the liquid and one so that the spout opening is small for slow delivery of the liquids)        
Small weigh boat (make sure all plastic materials acetone safe)        
Access to a balance with 0.001g readability or a higher precision.        
Parafilm M        
Repeater pipettor        
Appropriate tips        
Glass pipettes that fit in the volumetric flask.        
Hood (used to remove the acetone smell)        
A place to store insecticide solutions and vials [refrigerator (solutions), dark room or freezer depending on the chemical (vials)]        

Referências

  1. Yu, S. J. . The Toxicology and Biochemistry of Insecticides. , (2008).
  2. Pimentel, D. Environmental and Economic Costs of the Application of Pesticides Primarily in the United States. Environ. Dev. Sustain. 7, 229-252 (2005).
  3. Plapp, F. W., McWhorter, G. M., Vance, W. H., H, W. Monitoring for pyrethroid resistance in the tobacco budworm in Texas-1986. Proceedings Beltwide Cotton Production Research Conferences. , (1987).
  4. Prabhaker, N., Toscano, N. C., Henneberry, T. J., Castle, S. J., Weddle, D. Assessment of two bioassay techniques for resistance monitoring of silverleaf whitefly (Homoptera: Aleyrodidae) in California. J. Econ. Entomol. 89, 805-815 (1996).
  5. Sivasupramaniam, S., Johnson, S., Watson, T. F., Osman, A. A., Jassim, R. A. glass-vial technique for monitoring tolerance of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) to selected insecticides in Arizona. J. Econ. Entomol. 90, 66-74 (1997).
  6. Shean, B., Cranshaw, W. S. Differential susceptibilities of green peach aphid (Homoptera: Aphididae) and two endoparasitoids (Hymenopera: Encyrtidae and Braconidae) to pesticides. J. Econ. Entomol. 84, 844-850 (1991).
  7. Willrich, M. M., Leonard, B. R., Cook, D. R. Laboratory and field evaluations of insecticide toxicity to stink bugs (Heteroptera Pentatomidae). J. Cotton Sci. 7, 156-163 (2003).
  8. Snodgrass, G. L., Adamczyk, J., Gore, J. Toxicity of insecticides in a glass-vial bioassay to adult brown, green, and southern green stink bugs (Heteroptera: Pentatomidae). J. Econ. Entomol. 98, 177-181 (2005).
  9. Nielsen, A. L., Shearer, P. W., Hamilton, G. C. Toxicity of insecticides to Halyomorpha halys (Hemiptera: Pentatomidae) using glass-vial bioassays. J. Econ. Entomol. 101, 1439-1442 (2008).
  10. Dennehy, T. J., Russell, J. S. Susceptibility of Lygus bug populations in Arizona to acephate (Orthene) and bifenthrin (Capture) with related contrasts of other insecticides. Proceedings Beltwide Cotton Conferences. , (1996).
  11. Snodgrass, G. L. Glass-vial bioassay to estimate insecticide resistance in adult tarnished plant bugs. Heteroptera: Miridae). J. Econ. Entomol. 89, 1053-1059 (1996).
  12. Snoddgrass, G. L., Scott, W. P. A discriminating-dose bioassay for detecting pyrethroid resistance in tarnished plant bug ( Heteroptera: Miridae) populations. Southwest. Entomol. 24, 301-307 (1999).
  13. Lopez, J. D., Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. Adult vial bioassay of insecticidal toxicity against cotton fleahopper, Pseudatomoscelis seriatus (Hemiptera: Miridae). J. Pest. Sci.. 33, 261-265 (2008).
  14. Lopez, J. D., Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. Evaluation of toxicity of selected insecticides against thrips on cotton in laboratory bioassays. J. Cotton Sci. 12, 188-194 (2008).
  15. Smith, T. P., Hammond, A. M. Comparative susceptibility of sweetpotato weevil (Coleoptera: Brentidae) to selected insecticides. J. Econ. Entomol. 99, 2024-2029 (2006).
  16. Kanga, L. H. B., Wall, M. L., Plapp, F. W., Gardiner, E. M. M. Pyrethroid resistance in field-collected boll weevils from southeast Arkansas in 1994. Southwest. Entomol. 20, 247-253 (1995).
  17. Bayoun, I. M., Plapp, F. W. J. r., Gilstrap, F. E., Michels, G. J. Toxicity of selected insecticides to Diuraphis noxia (Homoptera: Aphidiae) and its natural enemies. J. Econ. Entomol. 88, 1177-1185 (1995).
  18. Smith, T. R., Cave, R. D. Pesticide susceptibility of Cybocephalus nipponoicus and Rhyzobius Iophanthae (Coleoptera Cybocephalidae, Coccinellidae). Fla. Entomol. 89, 502-507 (2006).
  19. Sukontason, K., Olson, J. K., Hartberg, W. K., Duhrkopf, R. E. Organophosphate and pyrethroid susceptibilities of Culex salinarius adults from Texas and New Jersey. J Am. Mosquito Contr. 14, 477-480 (1998).
  20. Kanga, L. H. B., Plapp, F. W. J. r., Wall, M. L., Elzen, G. W., Lopez, J. Monitoring for resistance to organophosphorus, carbamate, and pyrethroid insecticides in the oriental fruit moth (Lepidoptera: Torticidae). Canadian Entomol. , 131-441 (1999).
  21. Plapp, F. W., Jackman, J. A., Campanhola, C., Frisbie, R. E., Graves, J. B., Luttrell, R. G., Kitten, W. F., Wall, M. Monitoring and management of pyrethroid resistance in the tobacco budworm (Lepidoptera: Noctuidae) in Texas, Mississippi, Louisiana, Arkansas, and Oklahoma. J. Econ. Entomol. 83, 335-341 (1990).
  22. Mink, J. S., Boethel, D. J., Leonard, B. R. Monitoring permethrin resistance in soybean looper (Lepidoptera: Noctuidae) adults. J. Entomol. Sci. 28, 43-50 (1993).
  23. Cook, D. R., Leonard, B. R., Gore, J., Temple, J. H. Baseline responses of bollworm, Heliocoverpa zea (Boddie), and tobacco budworm, Heliothis virescens (F.), to indoxcarb and pyridalyl. J. Agricul. Urban Entomol. 22, 99-109 (2005).
  24. Temple, J. H., Pommireddy, P. L., Cook, D. R., Maçon, P., Leonard, B. R. Arthopod management: Susceptibility of selected lepidopteran to pests Rynaxypyr, a novel insecticide. J. Cotton Sci. 13, 23-31 (2009).
  25. Plapp, F. W., Vinson, S. B. Comparative toxicities of some insecticides to the tobacco budworm and its ichneumonid parasite, Campoletis sonorensis. Environ. Entomol. 6, 381-384 (1977).
  26. Xu, J., Shelton, A. M., Cheng, X. i. a. N. i. a. n. Variation in susceptibility of Diadegma insulare (Hymenoptera: Ichneumonidae) to permethrin. J. Econ. Entomol. 94, 541-546 (2001).
  27. Snodgrass, G. L., Scott, W. P. Seasonal changes in pyrethroid resistance in tarnished plant bug (Heteroptera: Miridae) populations during a three year period in the delta area of Arkansas, Louisiana and Mississippi. J. Econ. Entomol. 93, 441-446 (2000).
  28. Miller, A. L. E., Way, M. O., Bernhardt, J., Stout, M. J., Tindall, K. V. Multi-state resistance monitoring of rice stink bug with a new and old insecticide. , (2010).
  29. Abbott, W. S. A method for computing the effectiveness of an insecticide. J. Econ. Entomol. 18, 265-267 (1925).
  30. . . User’s Manual version 8.0. , (2002).
  31. . . A user’s guide to Probitor Logit analysis. , (2002).
  32. Preisler, H. K., Robertson, J. L. . Pesticide bioassays with arthropods. , (1992).
  33. Hollingsworth, R. G., Steinkraus, D. C., Tugwell, N. P. Responses of Arkansas population of tarnished plant bugs (Heteroptera: Miridae) to insecticides, and tolerance differences between nymphs and adults. J. Econ. Entomol. 90, 21-26 (1997).

Play Video

Citar este artigo
Miller, A. L., Tindall, K., Leonard, B. R. Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance. J. Vis. Exp. (46), e2129, doi:10.3791/2129 (2010).

View Video