Cette vidéo décrit une méthode pour disséquer, fixer et monter la jambe adulte de Drosophila tout en préservant sa neuromusculature intacte pour l’analyse d’imagerie.
Protocol
Ce protocole est un extrait de Guan et coll.,Visualize Drosophila Leg Motor Neuron Axons Through the Adult Cuticle, J. Vis. Exp. (2018). 1. Dissection et fixation des jambes Prenez une plaque en verre multi-puits et remplissez le nombre approprié de puits avec 70 % d’éthanol. Ajouter 15-20 mouches anesthésiées au CO 2 (de sexe ou de tout âge) à chaque puits et à l’aide d’une brosse, tamponner doucement les mouches dans la solutiond’étha…
Representative Results
Figure 1 : Procédure de montage des jambes sur des toboggans au microscope. S’il vous plaît cliquez ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Materials
Ethanol absolute
Fisher
E/6550DF/17
Absolute analytical reagent grade
nonionic surfactant detergent
Sigma-Aldrich
T8787
Triton X-100, for molecular biology
Fine forceps
Sigma-Aldrich
F6521
Jewelers forceps, Dumont No. 5
Glass multi-well plate
Electron Microscopy Sciences
71563-01
9 cavity Pyrex, 100 mm x 85 mm
PFA
Thermofisher
28908
Pierc 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free
Glycerol
Fisher BioReagents
BP 229-1
Glycerol (Molecular Biology)
Spacers
Sun Jin Lab Co
IS006
iSpacer, four wells, around 12 μL working volume per well, 7 mm diameter, 0.18 mm deep
Processing Insect Legs for Fluorescence Microscopy: A Method to Preserve Neuromuscular Structures for Imaging. J. Vis. Exp. (Pending Publication), e20121, doi: (2023).